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Optimization of an RT-PCR test for diagnosis of avian leukosis virus. Optimización de una prueba de RT-PCR para el diagnóstico del virus de leucosis aviar (ALV) M. Calderón., L.Rodriguez, V. J Vera*, G.CRamírez1 1 Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia. Departamento de Salud y Producción Animal. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá. Summary The presence of Avian leukosis virus was established in Colombia in 1998 by ELISA without virus isolation. Due to the necessity for a right diagnosis and differentiation between ALV subtypes, an RT-PCR was optimized. Two pairs of primers against the gp85 glicoprotein were used. 47 serum samples from a field outbreak were evaluated using the RT-PCR. From a previous ELISA test conducted at the ICA (Instituto Colombiano Agropecuario) 33 out of the 47 samples were diagnosed as positive, without subgroup differentiation. The RT-PCR for the same serum samples indicated 39 positive to ALV A-D and 8 negative. With specific primers for ALV-J 14 positive and 33 negative results were obtained. According to that 12 samples were positive for ALV-J as for ALV-D. Introducción La leucosis aviar (ALV) caracterizada por ser una entidad inmunosupresora, es causada por un retrovirus - oncovirus tipo C, el cual agrupa enfermedades comunes que inducen neoplasias benignas y malignas. Los virus del género ALV que afectan usualmente a las aves son los subgrupos A,B,C,D, E y J los cuales ocasionan importantes pérdidas económicas en integraciones avícolas. Los trabajos sobre leucosis han sido dirigidos a la obtención de métodos diagnósticos sensibles y específicos, que aseguren la detección certera del virus y a su vez orienten los planes de control y erradicación a nivel mundial. Pensando en esto se han desarrollado varias pruebas diagnósticas entre las cuales se encuentran la prueba de ELISA, COFAL, el aislamiento viral y la RT-PCR. El uso de PCR es justificado por ser rápido, especifico y mas sensible que las pruebas diagnósticas convencionales para la detección de ALV. Objetivo Normalizar una prueba de RT-PCR , para el diagnóstico y diferenciación de la infección por virus de leucosis aviar subgrupo J. Material y método Se evaluaron 47 muestras de suero provenientes de brotes de Leucosis Aviar presentados en 1998 en Colombia, pertenecientes al banco de sueros del laboratorio de Proceedings of the 10th International Symposium on Veterinary Epidemiology and Economics, 2003 Available at www.sciquest.org.nz patología aviar en el Instituto Colombiano Agropecuario (ICA), los cuales fueron analizados previamente por prueba de ELISA directa para determinar antígeno de ALV (IDEXX ALV-Ag). Los sueros se trataron con buffer lisis TRIZOLReagent (Life Technologies) en relación de 2:3, se centrifugaron a 12.000g a 4°C (centrífuga refrigerada BECKMAN J2-21) por 10 minutos, luego se tomó el sobrenadante y se agregaron 200µl de cloroformo; se centrifugó a 12.000g a 4°C (centrífuga BECKMAN J2-21) por 15 minutos; se tomó el sobrenadante (fase acuosa) y se le adicionaron 250µl de isopropanol y 250µl de una solución de NaCl 1.2M y citrato de sodio 0.8M, se centrifugó bajo las mismas condiciones, se eliminó el sobrenadante y al pellet de RNA, se le agregó 1 ml de etanol, se centrifugó a 7500g (centrífuga BECKMAN J221) por 5 minutos, se retiró el sobrenadante y el pellet fue llevado a baño maría a 68°C y posteriormente se resuspendió en 60µl de agua DEPC a 68°C. Como control positivo se emplearon muestras de sobrenadante de cultivo celular CEF (fibroblastos de embrión de pollo) de virus de leucosis aviar de los subgrupos A, B, C, D y J, provenientes del banco de virus de la Universidad de Athens en Georgia. Como control negativo se usó sangre completa de pollos SPF y el virus de leucosis bovina VLB. Se emplearon los primers H5, H7, AD1. El par de primers H5-AD1 reconoce los virus de leucosis aviar subgrupos A-D, y el H7-H5 reconoce virus del subgrupo J. Se tomaron 5 µl de RNA a los cuales se le adicionaron 5 µl de random primer (500ng) y 10 µl de agua DEPC y se calentaron a 70°C por 5 minutos, a esta solución se le agregó una premezcla para RT de acuerdo con Smith, 1998. Se tomaron 5 µl del producto obtenido en la RT (cDNA), 10µl de Buffer A Taq DNA Polymerase, PROMEGA, (50 mM de Tris HCl (pH 8.0), 100 mM NaCl, 0.1 mM EDTA, 1 mM DTT, 50% Glicerol y 1% Triton X-100) MgCl2 3 mM, 10 mM dNTPs, 100 pmol de cada primer, 5 U de Taq polimerasa y se completaron 50 µl de reacción final con agua DEPC. Se emplearon las siguientes condiciones de amplificación: denaturalización inicial a 94 °C por 4 minutos seguido de 35 ciclos con temperatura de denaturación de 94 °C por 30 segundos, annealing 58°C por un minuto, extensión de 72°C por 90 segundos y una extensión final a 72 °C por 10 minutos. Resultados y Discusión Al evaluar las 47 muestras de brotes locales se hallaron 39 sueros positivos a leucosis aviar de los subgrupos A-D y 14 sueros positivos al ALV-J, encontrándose que 12 muestras fueron positivas tanto para ALV A-D como para ALV-J. Lo anterior sugiere la presencia de infecciones mixtas como causantes del brote de leucosis aviar presentado en 199 en Colombia. Como se demostró, en el brote de leucosis, la prueba de ELISA de captura de antígeno diagnostica la enfermedad más no el subgrupo actuante; en el caso de RT- PCR, cuando se emplea con primers específicos para los subgrupos, permite diferenciar la presencia del subgrupo J de los restantes, lo cual desde el punto de vista de acciones sanitarias en el manejo de la enfermedad es importante. Por otra parte, el empleo del RT-PCR permite detectar el virus aún en casos en los cuales se presentan infecciones persistentes. Proceedings of the 10th International Symposium on Veterinary Epidemiology and Economics, 2003 Available at www.sciquest.org.nz Teniendo en cuenta que en ésta investigación no se dispuso de un número de muestras suficiente para llevar a cabo comparaciones de sensibilidad y especificidad entre las pruebas evaluadas se recomienda llevar a cabo dicha evaluación aumentando el número de muestras analizadas. Así mismo, es importante establecer la secuencia del cDNA del producto obtenido en la amplificación, con el fin de establecer mapas genéticos que permitan determinar en un momento dado variaciones en el genoma del virus, las cuales son importantes desde el punto de vista de epidemiología molecular y finalmente determinarán el diseño de estrategias de control y eventualmente erradicación de la enfermedad más efectivas. Referencias 1. Bai. J., Payne. L. N., Skinner. M. A.,. 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