Download Hidrólisis enzimática de vísceras de pescado utilizando
Document related concepts
Transcript
Hidrólisis enzimática de vísceras de pescado utilizando pepsina y pancreatina Enzymatic hydrolysis of fish viscera using pepsin and pancreatin Jesús Alberto Ramírez U.1, Manuel Guillermo Mora U.1, Henry Alexander Váquiro H.2 y José Fernando Solanilla D.2 RESUMEN ABSTRACT Subproductos del pescado como las vísceras son un problema creciente, si se contemplan los volúmenes cada vez mayores de consumo. Se determinó el análisis proximal (contenido de proteína, humedad, grasa y cenizas) de un aislado de proteínas (AP), obtenido a partir de vísceras de tilapia (Oreochromis sp.), el cual se hidrolizó con enzimas gastrointestinales. Las curvas de grados de hidrólisis (GH) contra el tiempo fueron establecidas para cada enzima, incluyendo su combinación, y se lograron los valores máximos de hidrólisis en las reacciones efectuadas. La proteína en las vísceras estuvo cerca del 28% (base húmeda). Los valores de GH alcanzados tras finalizar las reacciones con pepsina, pancreatina y la combinación fueron: 5,25; 22,22 y 23,83%, respectivamente. Fish by-products such as viscera are a growing problem, if the increasing consumption volumes are contemplated. Proximate analysis was determined (protein, wet, fat and ash contents) of an isolate protein (IP) obtained from viscera tilapia (Oreochromis sp.), which was hydrolyzed with gastrointestinal enzymes. The curves of hydrolysis degrees (DH) versus time were established for each enzyme, including its combination, and the highest values in the hydrolysis reactions carried out were achieved. Protein in viscera was about 28% (wet basis). The DH values achieved after finishing the reactions with pepsin, pancreatin, and the combination were 5.25, 22.22, and 23.83%, respectively. Palabras clave: subproductos, AP, enzimas gastrointestinales, proteína. Key words: by-products, PI, gastrointestinal enzymes, protein. Introducción Materiales y métodos Ante el inminente desarrollo de la producción piscícola en Colombia y en el Tolima, los actores de la cadena deben establecer programas de manejo de los subproductos que generan. Las vísceras son un material aprovechable rico en proteína (aproximadamente 90% de proteína en materia seca libre de grasa) (Raa y Gilberg, 1975). Su uso en la producción de hidrolizados enzimáticos puede exhibir propiedades mejoradas de las proteínas, de acuerdo al tipo de manejo (Fan et al., 2012). Dichos hidrolizados se componen de aminoácidos libres y péptidos de cadena corta que son nutracéuticos o alimentos funcionales por su perfil de aminoácidos (Chalamaiah et al., 2012). En un tratamiento enzimático con pepsina y pancreatina, se hidrolizó un aislado de proteínas y se determinó el rompimiento de enlaces, generado por el grado de hidrólisis y sus condiciones. El presente trabajo condujo a una alternativa de manejo de las vísceras, lo cual contribuye a una mayor productividad de la cadena mediante procesos de investigación. Se empleó material recolectado en la Asociación Acuícola Tecnológica del Tolima (Ibagué, Colombia). Las vísceras liofilizadas fueron caracterizadas según métodos de la AOAC: 952.45 para humedad en un horno de secado (DiES, Thermolab 53); 981.10 para nitrógeno total en una unidad automatizada (Velp Scientifica – DKL 8 y UDK 159), con el factor 6,25 para la proteína hallada; 945,16 para grasa cruda en un extractor Soxhlet y 945,46 para cenizas en una mufla (Selecta). Los mismos protocolos se aplicaron en un AP, el cual fue previamente desengrasado por extracción continua Soxhlet. La hidrólisis enzimática se realizó en las condiciones óptimas para cada enzima (Tab 1.). Se trabajó una relación enzima/sustrato 1/100 (p/p), con sustrato al 4% (p/v). En cuanto al sistema secuencial, las variables fueron iguales, inactivando la pepsina con cambio de pH transcurridos 30 min y luego, se adicionó pancreatina. Las reacciones se mantuvieron durante 390 min con agitación constante de 150 rpm. El GH se midió de acuerdo con el ISSN: 0120-9965 Fecha de recepción: 13-06-2016 Aceptado para publicación: 21-09-2016 Doi: 10.15446/agron.colomb.v34n1supl.58030 1 Facultad de Ingeniería Agronómica, Universidad del Tolima. Ibagué (Colombia). mgmorau@ut.edu.co Departamento de Producción y Sanidad Vegetal, Universidad del Tolima. Ibagué (Colombia). 2 Agronomía Colombiana 34(1Supl.), S1013-S1015, 2016 TABLA 1. Condiciones para hidrólisis de AP. Enzima Buffer pH Temperatura (ºC) Pepsina 0,1 M Glicina-HCl 2,0 37 Pancreatina 0,1 M Fosfato de sodio 7,5 40 Resultados y discusión El contenido de proteína encontrada en las vísceras fue alto (Tab 2.), comparado con la composición de diferentes fracciones de subproductos en otras especies (Rustad, 2007). Asimismo, el porcentaje de grasa señalado en AP indica que es un polvo prácticamente inodoro e insípido (Vidanarachchi et al., 2014). El uso de las proteínas de la masa visceral de pescados puede tener varias aplicaciones, dependiendo solo del camino que se elige para darles valor. Por ejemplo, los APs han sido empleados como sustitutos de carne en beef y albóndigas de pescado listos para comer, resultando productos con un porcentaje de proteína aumentado, contenidos de carbohidratos y grasas reducidos, y de mayor índice de aminoácidos esenciales (Ibrahim, 2015). TABLA 2. Análisis proximal de vísceras y AP de tilapia (n=3, ± desvia- ción estándar). 1 contenido de péptidos en el producto, favoreciendo su uso en la alimentación. El efecto sinérgico de las enzimas empleadas (endopeptidasa y exopeptidasa), por su parte, permitió posiblemente la generación de una combinación de polipéptidos y péptidos, con la exposición del terminal amino y carboxilo de residuos de aminoácidos aromáticos y grupos carboxilo de residuos de lisina o arginina (Polanco-Lugo et al., 2014). Se halló diferencia significativa a un nivel de 0,05 entre los valores de medias de los GH finales logrados entre los tratamientos con pancreatina y pepsina-pancreatina, poniendo de manifiesto que existe un GH superior en el sistema. Esto quizás debido a que la pancreatina, en el efecto sinérgico, sigue con la rotura de aminoácidos de los extremos de las cadenas de polipéptidos más cortas formadas por la pepsina, durante la digestión de las proteínas en los primeros 30 min previos a su adición. 25% Grado de hidrólisis (GH) método del ácido trinitrobenceno-sulfónico, preparando una curva estándar con L-Leucina 0-1,6 mmol L-1, leyendo a 340 nm (Adler-Nissen, 1979). El análisis estadístico y gráfico del trabajo se desarrolló con Microsoft Excel 2010. 20% 15% 10% 5% 0% 0 Material % Humedad % Proteína % Grasa cruda % Cenizas Vísceras1 6,12±0,002 53,76±0,010 21,61±0,005 0,26±0,002 AP 5,03±0,001 78,50±0,005 0,42±0,001 4,72±0,010 Contenido inicial de humedad fue del 51,13%. 30 60 90 120 150 180 210 240 270 300 330 360 390 420 Tiempo (min) Pancreatina Pepsina Pepsina-Pancreatina FIGURA 1. Curva de hidrólisis de AP con pepsina, pancreatina y pepsina- pancreatina. Las barras de error indican una desviación estándar (n=3). Dado que la hidrólisis de proteínas es objeto de un interés cada vez mayor, porque de esta se pueden generar péptidos bioactivos, la comprensión del comportamiento del hidrolítico de las enzimas es relevante a la hora de fijar las características deseadas en los productos obtenidos. Para las condiciones de pH y temperatura antedichas, el efecto del tiempo de incubación en la reacción con pepsina, pancreatina y el sistema, los máximos valores de GH, 5,25%, 22,22% y 23,83% se obtuvieron a 390 min, respectivamente (Fig 1.). Según estos resultados, la pepsina no logró romper las proteínas en cadenas de polipéptidos más cortas a las condiciones ensayadas en más de un GH del 10%, aun así, con el tratamiento probablemente se mejoraron sus propiedades funcionales. La pancreatina, en cambio, hidrolizó las proteínas por encima del 10%, lo cual incrementó el S1014 El GH es un parámetro generalmente usado para controlar la proteólisis y es el indicador más extensamente utilizado para comparar diferentes hidrolizados de proteínas. La cantidad de péptidos esperados, que se producen por la escisión de enlaces peptídicos con enzimas proteasas, se generan por una actividad proteolítica más grande (Onuh et al., 2013). El GH alto obtenido con el sistema muestra que el AP resistente menos a la acción conjunta de la digestión gastrointestinal, con las enzimas pepsina y pancreatina. Por otro lado, las temperaturas óptimas a las cuales se ensayaron las enzimas suministradas por el fabricante, representan un bajo consumo energético desde el punto de vista calórico, lo cual es llamativo para el escalamiento preindustrial e industrial de estos procesos. Agron. Colomb. 34(1Supl.), 2016 Conclusiones antioxidant activities and applications: A review. Food Chem. 135(4), 3020-3038, Doi: 10.1016/j.foodchem.2012.06.100 Se pudo establecer los valores de GH máximo, finalmente logrados a través del tratamiento con preparados de enzimas gastrointestinales en la materia prima (vísceras), lo cual derivó en hidrolizados de bajo para pepsina y alto GH para pancreatina y el sistema. También la composición de las vísceras tilapia y del AP indicaron que son materiales que cuentan con componentes de alto valor que pueden ser aprovechados, con el objeto de maximizar su utilización y en consecuencia, reducir la cantidad de subproductos que son desechados al medioambiente. Agradecimientos Los autores agradecen la Comité Central de Investigaciones de la Universidad del Tolima, por su colaboración económica para el desarrollo de este trabajo derivado del proyecto de investigación “Obtención de péptidos a partir de vísceras de pescado mediante hidrólisis enzimática” que está siendo desarrollado por los autores-estudiantes. Literatura citada Adler-Nissen, J. 1979. Determination of the degree of hydrolysis of food protein hydrolysates by trinitrobenzenesulfonic acid. J. Agric.l Food Chem. 27(6), 1256-1262. Doi: 10.1021/jf60226a042 th AOAC. 2005. Official method of analysis. 18 ed. Association of Official Analysis Chemists, Washington DC. Chalamaiah, M., R. Hemalatha y T. Jyothirmayi. 2012. Fish protein hydrolysates: Proximate composition, amino acid composition, Fan J., J. He, Y. Zhuang y L. Sun. 2012. Purification and identification of antioxidant peptides from enzymatic hydrolysis of Tilapia (Oreochromis niloticus) frame protein. J. Mol.17, 12836-12850. Doi: 10.3390/molecules171112836 Ibrahim, H.M. 2015. Chemical composition, minerals content, amino acid bioavailability and sensory properties of meat and fish balls containing fish protein isolate. Int. J. Curr. Microbiol. Appl. Sci. 4(4), 917-933. Polanco-Lugo, E., G. Dávila-Ortiz, D.A. Betancur-Ancona y L.A. Chel-Guerrero. 2014. Effects of sequential enzymatic hydrolysis on structural, bioactive and functional properties of Phaseolus lunatus protein isolate. J. Food Sci. Technol. 34(3), 441-448. Doi: 10.1590/1678-457x.6349 Onuh, J.O., A.T. Girgih, R.E. Aluko y M. Aliani. 2013. Inhibitions of renin and angiostensin converting enzyme activities by enzymatic chicken skin protein hydrolysates. Food Res. Int. 53, 260-267, Doi: 10.1016/j.foodres.2013.05.010 Raa, J. y A. Gildberg. 1975. Studies of fish viscera: composition, preservation, autolysis and utilisation. pp. 238-248. En: Raa, J. y A. Gildberg (eds.). Sixt Meeting of the West-European Fish Technologists Association (WETFA), Oostende, Bélgica. Rustad, T. 2007. Physical and chemical properties of protein seafood by-products. pp. 3-21. En: Shahidi, F. (ed.). Maximizing the value of marine by-products. Woodhead Publishing, Cambridge, UK. Doi: 10.1533/9781845692087.1.3 Vidanarachchi, J. K., C.S. Ranadheera, T.D. Wijarathen, R.M.C. Udayangani, S.M.C. Himali y J. Pickova. 2014. Applications of seafood by-products in the food industry and human nutrition. pp. 463-528. En: Kim, S.W. (ed.). Seafood processing by-products: Trends and applications. Springer, New York, NY. Doi: 10.1007/978-1-4614-9590-1_23 Ramírez U., Mora U., Váquiro H. y Solanilla D.: Hidrólisis enzimática de vísceras de pescado utilizando pepsina y pancreatina S1015