Download “CARACTERIZACIÓN BIOINFORMÁTICA DE LA
Document related concepts
Transcript
INFORME FINAL DE INVESTIGACIÓN “CARACTERIZACIÓN BIOINFORMÁTICA DE LA RAMNOGALACTURONANO B LIASA DE Bacillus cereus ASOCIADA A LA DEGRADACIÓN DE PECTINA” Responsable del Estudio Dr. Gustavo Adolfo Sandoval Peña LIMA – PERÚ 2015 Resumen Objetivo: Caracterizar la estructura inicial y el modelamiento de la enzima Ramnogalacturonano B liasa de Bacillus cereus y su comparación con las de otras especies del mismo género. Material y métodos: Para llevar a cabo esta caracterización se realizó la búsqueda de las secuencias de esta enzima provenientes de B. cereus (CUB24579.1), B. subtilis (2ZUX_A) y B. licheniformis (4CAG_A) en el GenBank. A partir de estas secuencias se determinaron sus principales parámetros bioquímicos, dominios conservados, predicción de estructuras secundarias y modelamiento por homología, empleando las herramientas ProtParam, Prosite, PHD Secondary Structure Prediction y SWISS-MODEL, respectivamente. Adicionalmente, para el análisis filogenético se utilizó el método NJ empleando la interfaz MEGA 7. Resultados: La enzima en estudio presenta 614 aminoácidos, con un peso molecular de 66.75 kDa y un punto isoeléctrico de 5.48. De la predicción de dominios se encontraron regiones altamente conservadas, caracterizadas por los residuos His357, Asp395, Arg446, Thr528, Lys529 y Tyr589. A partir de la predicción de su estructura secundaria, se determinó que su conformación presenta 11.56% de alfa hélices y 33,06% de láminas beta, siendo su estructura tridimensional del tipo mixta (alphabeta). Finalmente, el alineamiento y árbol NJ generado, mostraron una alta conservación de la enzima dentro del género Bacillus. Conclusión: La enzima ramnogalacturonano B liasa de Bacillus cereus, es una biomolécula ácida de mediano peso molecular y con una alta conservación de sus dominios, lo cual representa un interés biotecnológico para la industria de alimentos. Palabras claves: Bacillus cereus, Ramnogalacturonano B liasa, B. subtilis, in silico. Introducción En la industria de los zumos de fruta, la disponibilidad de enzimas degradadoras de la pared celular, resulta capital en la actualidad, ya que su función es principalmente la de descomponer polisacáridos complejos de los tejidos vegetales a moléculas mucho más simples que puedan solubilizar con mucha mayor rapidez, de manera que reduce en gran proporción la turbidez y amargura. En tanto en la industria textil estas enzimas tienen un papel fundamental para la buena calidad de papel; las aplicaciones en otros campos comerciales están el tratamiento de aguas residuales de industrias de procesamiento de cítricos, extracción de petróleo, recuperación de aceites de la cáscara [1]. Dentro de toda la variedad de estructuras del tejido vegetal, la pectina es una de ellas que se encuentra en gran proporción, en la pared primaria y lamina media de planta dicotiledóneas [2]. La pectina es un heteropolisacárido muy heterogéneo conformado por homogalacturonano (HG), ramnogalacturonano I (RGI), y ramnogalacturonano II, de ahí que recientemente se han realizado trabajos enfocados en la degradación selectiva de estos oligosacáridos a través de una reacción de β-eliminación del enlace α (1,4) entre la ramnosa y el ácido galacturónico mediada por la enzima ramnogalacturonano B liasa [3]. Las poligalacturonasas, pectina liasas, y las pectato liasas fragmentan a las regiones homogalaturonanos de la pectina, mas no la degradan; en tanto la enzima ramnogalacturonano liasa B, presenta la potencial capacidad de degradarlos, he allí su importancia a nivel fisiológico, otorgando valor para la elucidación estructural de la pared celular de las plantas. Además de la utilidad de estas enzimas en el tratamiento de la fruta [4,6,7]. Las ramnogalacturonano B liasas son un grupo de enzimas de origen bacteriano, responsables de la degradación de las paredes celulares vegetales, específicamente los dominios ramnogalacturonanos presentes en las pectinas [5]. En la actualidad son utilizadas en la industria de alimentos, ya que participan en los procesos de solubilización e hidrólisis de regiones ramificadas de la pectina, que de otra forma permanecerían como polímeros insolubles imposibilitando las etapas de filtración y aclaramiento [6]. Por este motivo, en el presente trabajo se realizó la caracterización estructural inicial de la enzima ramnogalacturonano B liasa de Bacillus cereus y su comparación con las de otras especies del mismo género. Si bien son enzimas de suma importancia en diversos procesos, no se conoce al detalle su mecanismo de acción molecular, de ahí la necesidad de resolver el mecanismo de acción de la enzima a nivel estructural y funcional para mejorar su utilización en estos procesos. Materiales y métodos Obtención de la secuencia aminoacídica de la proteína Dpr Se obtuvieron las secuencias primarias correspondiente a la enzima Ramnogalacturonano B Liasa provenientes de B. cereus, B. subtilis y B. licheniformis por medio de la base de datos del GenBank con códigos de accesión (CUB24579.1), (2ZUX_A) y (4CAG_A) respectivamente. Dicha secuencia fue utilizada para las posteriores predicciones in silico y obtención de la información estructural de dicha proteína. Determinación de parámetros bioquímicos y dominios conservados Para determinar los principales parámetros bioquímicos de la enzima Ramnogalacturonano B Liasa se empleó la herramienta ProtParam del ExPASy (http://web.expasy.org/protparam/) [8], mientras que los dominios conservados presentes en dicha proteína fueron analizados mediante la herramienta Prosite del ExPASy (http://prosite.expasy.org/) [9]. Predicción de estructuras secundarias El análisis de predicción de estructuras secundarias presentes en la enzima Ramnogalacturonano B Liasa de B. cereus fue realizada empleando la herramienta PHD Secondary Structure Prediction Method (http://npsa-prabi.ibcp.fr) [10]. Modelamiento por homología El modelo tridimensional de la enzima Ramnogalacturonano B Liasa de B. cereus se obtuvo empleando la herramienta SWISS-MODEL (http://swissmodel.expasy.org) [11], a partir de la información depositada en la base de datos del Protein Data Bank. La visualización del modelo obtenido se realizó empleando el programa PyMol Molecular Graphics System (versión 1.3). Predicción de la interacción proteica La red de interacción de proteínas se obtuvo usando el programa STRING [12] Resultados Del análisis de la secuencia primaria de la enzima Ramnogalacturonano B Liasa de B. cereus se obtuvieron un total de Bacillus cereus presenta 614 aminoácidos, con un peso molecular de 66.75 KDa, un punto isoeléctrico de 5.48 y una proporción de 73 aminoácidos ácidos versus 65 aminoácidos básicos. Esto define a la enzima Ramnogalacturonano B Liasa como una proteína ácida de alto peso molecular. Por otro lado, de la predicción de dominios se observó la presencia de regiones altamente conservadas, caracterizadas por los residuos His357, Asp395, Arg446, Thr528, Lys529 y Tyr589 del sitio activo, correspondiente a la superfamilia de proteínas RGL1 (Fig. 1). Con respecto a la predicción de su estructura secundaria, se determinó que su conformación presenta 11.56% de alfa hélices y 33,06% de láminas beta, siendo su estructura tridimensional del tipo mixta (alpha-beta). Del modelamiento por homología mostró que la proteína Ramnogalacturonano B Liasa de B. cereus presenta una estructura monomérica, y un rearreglo tridimensional típico de una enzima, caracterizado por un core de alfa hélice rodeada de láminas beta (Fig. 2). Del alineamiento y árbol NJ generado, mostraron una alta conservación de la enzima dentro del género Bacillus (Fig.3). Finalmente, de la red de patrones de interacción proteica, con fines prácticos se tomó un score superior o igual 0.818 solo de las proteínas que tiene una estructura resuelta tridimensionalmente y se determinó la relación filogenética entre la enzima Ramnogalacturonano B Liasa (yesX) con yesZ, yesY, yesO, yesP, yesR, rhgT, yteR y YesQ con identidades de homología de 21.3%, 25.8%, 23.1%, 26.1%, 26.2%, 26.6%, 100% y 24.4% respectivamente; así como también la fusión de genes de yesX con yesY y rhgT; la colocalización de yesX y yesZ, yesY, yesO, yesP y rhgT; en tanto no hubo coexpresión de genes yesX de B. licheniformis (Fig. 4). Fig. 1. Regiones conservadas del sitio activo de la Ramnogalacturonano B liasa de Bacillus cereus Fig. 2. Modelado tridimensional por homología de la enzima Ramnogalacturonano B liasa de Bacillus cereus. Las estructuras secundarias, α hélice son de color rojo, las láminas β son de color amarillo y los loops se muestran de color verde. Fig. 3. Árbol filogénico de 20 especies bacterianas del género Bacillus Fig. 4. Red de patrón de interacción de la enzima Ramnogalacturonano B Liasa (yesX) con yesZ, yesY, yesO, yesP, yesR, rhgT, yteR y YesQ con identidades de homología de 21.3%, 25.8%, 23.1%, 26.1%, 26.2%, 26.6%, 100% y 24.4%, respectivamente. Discusión En el presente artículo se han determinado las principales características in silico de la proteína Dpr de Streptococcus mutans. En estudios previos, se ha demostrado que la enzima Ramnogalacturonano B liasa es una proteína catalítica similar a la familia de las pectinas, la cual está vinculada con la degradación de regiones ramificadas de ramnogalacturonano I [3]. Considerada como una enzima esencial para la virulencia de algunos hongos que puede ser utilizada biotecnológicamente a nivel industrial en la elaboración de zumos de fruta y otros procesos comerciales [1]. Con respecto a su estructura primaria y secundaria, se encuentra que esta proteína es de naturaleza ácida y de mediano peso molecular, mientras que con respecto a su estructura tridimensional, esta proteína presenta una conformación monomérica, donde este está compuesto de un core de hélices α, rodeados de láminas β. Este hallazgo es corroborado por ensayos de difracción de rayos X, los cuales muestran que esta enzima presenta una estructura monomérica con una alta afinidad del sitio activo, altamente conservado, por el enlace α (1,4) entre la ramnosa y el ácido galacturónico, y cuya actividad es muy semejante al de otras enzimas de la familia pectinolíticas [3,13,14]. La predicción de patrones de redes de interacción permite visualizar y analizar de manera precisa la relación filogenética, co-expresión de genes y proteínas relacionadas en algunas u otras especies. En nuestro resultado cuando se observa el Gene Neighborhood, los genes que se encuentran interactuando se ubican repetidamente y se localizan cercanamente entre ellas con una homología menor del 30% entre las proteínas yesX con yesZ, yesY, yesO, yesP, yesR, rhgT, yteR y YesQ respectivamente, es decir estas enzimas no se encuentran conservadas y la red de interacción es única [15]. Se observó una gran cantidad de reportes experimentales de las proteínas yesZ, yesY, yesO, yesP, yesR, rhgT, yteR y YesQ con un alto grado de score. A pesar de que no existe una semejanza en homología, funcionalmente estas enzimas cumplen un rol muy conservado, el de la degradación de regiones de ramnogalacturonano de la pectina [3,4,6,7]. Conclusiones La enzima ramnogalacturonano B liasa de Bacillus cereus, es una biomolécula ácida de mediano peso molecular y con una alta conservación de sus dominios, lo cual representa un interés biotecnológico para la industria de alimentos. Literatura citada 1. Kashyap, D. R., Vohra, P. K., Chopra, S., & Tewari, R. Applications of pectinases in the commercial sector: a review. Bioresource technology. 2001; 77(3), 215-227. 2. Willats WGT, Gilmartin PM, Mikkelsen JD, Knox JP (1999) Cell wall antibodies without immunization: generation and use of deesterified homogalacturonan block-specific antibodies from a naïve phage display library. Plant J 18:57–65 3. Heredia A, Jiménez A, Guillén R (1995) Composition of plant cell walls. Z Lebensm Unters Forsch 200:24–31. 4. Enzymic degradation of apple pectins. De Vries JA, Rombouts FM, Voragen AGJ, Pilnik W. Carbohydr Polym. 1982;2:25–33. 5. Different populations of pectic hairy regions occur in apple cell walls. Schols HA, Vierhuis E, Bakx EJ, Voragen AGJ. Carbohydr Res. 1995b;275:343–360. 6. Characterization of residual pectins from raspberry juices. Will F, Dietrich H. Carbohydr Polym. 1994;25:155–160 7. Mutter, M., Colquhoun, I. J., Beldman, G., Schols, H. A., Bakx, E. J., & Voragen, A. G. (1998). Characterization of Recombinant Rhamnogalacturonan α-l-Rhamnopyranosyl-(1, 4)-α-dGalactopyranosyluronide Lyase from Aspergillus aculeatus An Enzyme That Fragments Rhamnogalacturonan I Regions of Pectin. Plant physiology, 117(1), 141-152. 8. Gasteiger E, Hoogland C, Gattiker A, Duvaud S, Wilkins MR, Appel RD, et al. Protein identification and analysis tools on the ExPASy Server. In: Walker JM, editor. The Proteomics Protocols Handbook. Humana Press; 2005. p. 571-607. 9. de Castro E, Sigrist CJ, Gattiker A, Bulliard V, Langendijk-Genevaux PS, Gasteiger E, et al. ScanProsite: detection of PROSITE signature matches and ProRule-associated functional and structural residues in proteins. Nucleic Acids Res. 2006 Jul 1;34(Web Server issue):W362-5. 10. Rost B, Sander C. Prediction of protein secondary structure at better than 70% accuracy. J Mol Biol. 1993 Jul 20;232(2):584-99. 11. Biasini M, Bienert S, Waterhouse A, Arnold K, Studer G, Schmidt T, et al. SWISS-MODEL: modelling protein tertiary and quaternary structure using evolutionary information. Nucleic Acids Res. 2014 Jul;42(Web Server issue):W252-8. 12. Szklarczyk, D., Franceschini, A., Wyder, S., Forslund, K., Heller, D., Huerta-Cepas, Simonovic, N., Roth, A., Santos, A., Tsafou, KP., Kuhn, M. Bork, P., Jensen, LJ., von Mering, C. (2014). STRING v10: protein–protein interaction networks, integrated over the tree of life. Nucleic acids research, gku1003. 13. Structural determinants responsible for substrate recognition and mode of action in family 11 polysaccharide lyases. Ochiai A, Itoh T, Mikami B, Hashimoto W, Murata K J.Biol.Chem. (2009) 284 p.10181 14. Design of thermostable rhamnogalacturonan lyase mutants from bacillus licheniformis by combination of targeted single point mutations. Silva IR, Jers C, Otten H, Nyffenegger C, Larsen DM, Derkx PMF, Meyer AS, Mikkelsen JD, Larsen S Appl.Microbiol.Biotechnol. (2014) 98 p.4521. 15. Pozsgai, E. R., Blair, K. M., & Kearns, D. B. (2011). Modified mariner transposons for random inducible-expression insertions and transcriptional reporter fusion insertions in Bacillus subtilis. Applied and environmental microbiology, AEM-07098.