Download estandarizacion de la tecnica hplc/ms para la determinación de
Document related concepts
no text concepts found
Transcript
División Ciencias de la Vida Campus Irapuato-Salamanca XII CONGRESO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA DE ALIMENTOS Jueves 27 y Viernes 28 de Mayo de 2010 Guanajuato, Gto. ESTANDARIZACION DE LA TECNICA HPLC/MS PARA LA DETERMINACIÓN DE CUATRO METABOLITOS DE NITROFURANOS FURALTADONA (AMOZ), FURAZOLIDONA (AOZ), NITROFURAZONA (SEM), NITROFURANTOÍNA (AHO), EN CARNE DE BOVINO EN NUEVO LEÓN MÉXICO Cantú-Martínez M. A.a*, Avalos-Ramírez R.b , Roig-Sagués A. X.c, Pérez-Fernández B.d , Morales-Loredo A.e. Silva Páez M. L.f, a*, b, f Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autónoma de Nuevo León, México Av. Francisco Villa s/n Col. Ex Hacienda el Canadá Escobedo, Nuevo León, México C. P. 66050 . C, d Departament de Ciència Animal I dels Aliments, Facultad de Medicina Veterinaria de la Universidad Autónoma de Barcelona España Bellaterra 8193 Cerdanyola del Vallès, Campus de la UAB Edificio V e Laboratorio Central Regional de Monterrey Comité de fomento y Protección Pecuaria Terrenos de la Exposición Ganadera Guadalupe, Nuevo León C. P. 67100 * macantum@hotmail.com RESUMEN: Los nitrofuranos han sido una preocupación a nivel mundial por su impacto en la salud pública debido al potencial efecto carcinogénico de los metabolitos de Nitrofuranos. La detección y el monitoreo de nitrofuranos en tejido de bovinos es muy importante. Sin embargo, los límites de detección para estos nitrofuranos en tejido animal no están Normatizado en México. El objetivo del trabajo, es poner a punto la determinación cuantitativa de los metabolitos de nitrofuranos AMOZ, AHD, AOZ y SEM mediante HPLC-MS y para la detección de metabolitos en muestras de músculo de bovino. Se normalizó el procedimiento del HPLC-MS encontrándose que el tiempo de retención de los analitos fue para AMOZ de 1.34 a 1.38 min, para AHD 2.19 a 2.23 min, mientras que para AOZ y SEM fueron 2.54 a 2.59 min y 2.05 a 2.10 min respectivamente; Los valores de linealidad fueron superiores a 0.995 con alta reproducibilidad. La técnica HPLC-MS fue rápida, sensible y altamente repetible. La técnica, se aplico a 32 muestras de músculo de bovino de 32 lotes de engordas diferentes. Las muestras, fueron de rastros TIF de Nuevo León. Los resultados fueron negativas a los derivados de nitrofuranos. Demostrando tener una baja frecuencia. ABSTRACT: Nitrofurans have been a global concern for its impact on public health due to the potential carcinogenic effect of metabolites of nitrofurans. The detection and monitoring of nitrofurans in tissue of cattle is very important. However, the detection limits for these nitrofurans in animal tissue are not normalized in Mexico. The aim of this work is to develop the quantitative determination of metabolites of nitrofuran AMOZ, AHD, AOZ and SEM by HPLC-MS and detection of metabolites in samples of bovine muscle. The procedure was standardized HPLC-MS was found that the retention time of analytes was for AMOZ 1.34 to 1.38 min for AHD 2.19 to 2.23 min, while for AOZ and SEM were 2.54 to 2.59 to 2.10 min and 2.05 min respectively ; linearity values were higher than 0995 with high reproducibility. HPLC-MS technique was rapid, sensitive and highly repeatable. CA40 1 División Ciencias de la Vida Campus Irapuato-Salamanca XII CONGRESO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA DE ALIMENTOS Jueves 27 y Viernes 28 de Mayo de 2010 Guanajuato, Gto. The technique was applied to 32 bovine muscle samples of 32 different feedlots. The samples were traces of Nuevo Leon TIF. The results were negative for nitrofuran derivatives. Proving to have a low frequency. Palabras clave: Estandarización, Nitrofuranos, Cromatografía, HPLC MS/MS, INTRODUCCIÓN En México, la detección de estos compuestos en animales destinados para consumo humano no está regida por la Normas Mexicanas, sea cual sea su límite. La falta de control sobre su uso, su aplicación de forma fraudulenta, indiscriminada, abusiva y sin atender los principios básicos de la buena práctica veterinaria posibilita el riesgo de aparición de residuos de estos medicamentos o sus metabolitos en el animal y en productos y subproductos consumibles por el humano. (Pérez et al, 1999) Los nitrofuranos han sido ampliamente utilizados en producción animal para el tratamiento de infecciones bacteriana del ganado bovino, porcino y aves de corral y además como aditivos, entre este grupo se encuentran Nitrofurazona (SEM), Furazolidona (AOZ), Furaltadona (AMOZ), Nitrofurantoína (AHO), Nifuraldezona, Nifupirazina.(L. Meyer Jones, 1969 Sumano, 1999). Estudios toxicológicos, realizados in vivo e in vitro, en el año 1993 demostraron el riesgo potencial de los nitrofuranos para la salud pública. Las características observadas incluyeron su potencial como agentes mutagénicos, carcinogénicos y teratogénicos. No obstante, los metabolitos de nitrofuranos son difícilmente identificables y cuantificables dada su naturaleza de permanecer ligados a otras moléculas por largos periodos (European Commission 2003, Anónimo 2008). La Unión Europea, y la Organización Mundial de la Salud (OMS), establece tolerancia CERO para estos compuestos y sus metabolitos a través del reglamento 2377/90 EC, Anexo IV, considerándose violatoria la aparición de residuos en cualquier matriz biológica (RPE 1990). Dado lo anterior, los objetivos del presente trabajo fueron en primera instancia poner a punto la determinación cuantitativa de los metabolitos de nitrofuranos AMOZ, AHD, AOZ y SEM mediante HPLC-MS/MS y la aplicación subsecuente de esta técnica para la detección de estos metabolitos en muestras de músculo de bovino sacrificados en mataderos “Tipo Inspección Federal” de Nuevo León. METODOLOGÍA El estudio se realizó en el Laboratorio Regional del Comité para el Fomento y Protección Pecuaria para el Estado de Nuevo León A. C. Se estandarizó el método de Cromatografía Liquida de Alta Resolución con detector de masa (HPLC MS/MS) para la determinar la presencia de Nitrofuranos y sus metabolitos (Nitrofurazona (SEM), Nitrofurantoína (AHD), Furaltadona (AMOZ), Furazolidona (AOZ),). Además, se analizaron 32 muestras de músculo de bovino obtenidos de CA40 2 División Ciencias de la Vida Campus Irapuato-Salamanca XII CONGRESO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA DE ALIMENTOS Jueves 27 y Viernes 28 de Mayo de 2010 Guanajuato, Gto. diferentes mataderos Tipo Inspección Federal (TIF) del estado de Nuevo León y procedentes de 32 distintos lotes de engorda; El muestreo se realizó al azar, de acuerdo al sistema de números aleatorios indicado en el apéndice C de la NOM004-ZOO. La preparación de la muestra y su procedimiento se baso en la técnica de extracción recomendada por la FDA U.S. (2004) Food and Drug Administration para la determinación de metabolitos de Nitrofuranos en muestras de camarón, y en los procedimientos descritos por Pereira et al. (2004), Kelly et al (2005). Se peso 1 + 0.01g de tejido previamente molido dentro de un tubo de centrifugadora de polietileno de 15 ml. Se preparo un blanco de vidriería, un blanco de solventes, y un blanco de tejido. Además se preparó una curva de estándares pero sin matriz, con cada serie se fortificaron con 0.30, 0.50, 1.0, 2.0, 4.0 ng/ml. Se preparo dos recuperaciones, las cuales se fortificaron con la concentración de 1.0 ng/ml (ppb). Se le adicionó a todas las muestras 20 µl de la mezcla de estándares de trabajo (estándar interno AMOZ d5 AOZ, SEM, AHD) con una concentración de 0,05 ng/µl. Se le agregó 5 ml de la solución de Ácido Clorhídrico (HCl) 0,2 M a cada tubo. Posteriormente se le adicionó 50 µl del derivatizante Nitrobenzaldehído (NBA) 100 mM. Se agitaron por 10 minutos. Se incubaron los tubos A 370C. ± 20 C. durante un periodo de 16 h. después se le agregó a cada tubo 2 ml de solución de Fosfato de Potasio (K2 HPO4 0,3 M) y se agitaron, luego se lleva a un pH de 7 con la solución de Hidróxido de Sodio (NaOH) 2M. Se le adicionó a cada tubo 4 ml de Acetato de Etilo y se mezcló en el agitador por 30 min. Se centrifugaron a 3,500 rpm durante 10 min. y se transfirió la fase orgánica a otro tubo de vidrio, luego se llevo a evaporar a sequedad en un evaporador de nitrógeno con baño de maría a 450C, posteriormente se disolvió el residuo seco con 500µl de la solución para reconstituir (10 ml. de Acetonitrilo en 100 ml. con agua HPLC con 0,1 ml. de Ácido Acético Glacial) después se agito en un vortex durante 20 s. y se transfirió la muestra a un tubo Eppendorf de 2 ml y se centrifuga a 4,000 rpm durante 10 min a una temperatura de 50C (solo las muestras con matriz). Después se tomo la fase no turbia de la muestra con una jeringa de 1 ml y se paso la muestra a través de un filtro PTFE de 13mm y 0,45µm, y se recolecto en un vial de 2 ml con un inserto y se inyecto al Cromatógrafo de líquidos de alta resolución con detector de masas. RESULTADOS Y DISCUSIÓN Las condiciones cromatografías se basaron en la utilización de diferentes fases móviles compuestas de una mezcla de solventes A y B. El tiempo de la carrera total para la determinación de los analitos de nitrofuranos se fijo a 8 minutos y con una temperatura de 300C en el termostatizador de columna con un volumen de flujo de inyección de 0,3ml/min. CA40 3 División Ciencias de la Vida Campus Irapuato-Salamanca XII CONGRESO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA DE ALIMENTOS Jueves 27 y Viernes 28 de Mayo de 2010 Guanajuato, Gto. Se utilizó un flujo constante de 0,3 ml /minuto utilizando una gradiente de la fase móvil A de 60% y 40% de la fase móvil B en el tiempo de 1.34–1.38 minutos apareció el pico correspondiente a Furaltadona 3-amino-5-morpholinomethyl-1,3oxazolidin-2-one (AMOZ). Con un coeficiente de correlación de r= 0.995019. por otro lado con el Flujo de 0,3 ml /minuto con un flujo de fase móvil de la solución A de 50% y 50% de la solución de la fase B se encontró que en el tiempo de 2.19– 2.23 minutos apareció Nitrofurantoína 1-aminohydanto (AHD). Encontrándose un coeficiente de correlación de r= 0.997701. Con el mismo flujo constante de 0,3 ml /minuto con un fase móvil de A de 50% y 50% de la fase móvil B con un tiempo de 2.54–2.59 minutos apareció Furazolidona 3-amino-2-oxazolidinone (AOZ). Encontrando un coeficiente de correlación de r= 0.99642. a si mismo con un flujo constante de 0,3 ml /minuto con una fase móvil A de 50% y 50% de la fase móvil B se encontró que en el tiempo de 2.05 – 2.10 minutos apareció Nitrofurazona Semicarbacida (SEM). Teniendo un coeficiente de correlación de r= 0.993629. En el presente estudio se encontró que el tiempo de retención de los analitos fue para AMOZ de 1.34 a 1.38 min, para AHD 2.19 a 2.23 min, mientras que para AOZ y SEM fueron 2.54 a 2.59 min y 2.05 a 2.10 min respectivamente ver tabla 1; mientras que en el estudio realizado por Verdon et al (2007) los tiempos de retención variaron de 7.8 a 9.1 min para los mismos analitos. Posiblemente las variaciones observadas en tiempos de retención se deban o están influenciados por el tipo de fase y la gradiente que se uso en el presente estudio. Tiempos de retención de los analitos de Nitrofuranos Analito Fase móvil 0,3 ml/min Tiempo de retención del analito A% 60 B% 40 1.34 a 1.38 minutos Nitrofurantoina AHD 50 50 2.19 a 2.23 minutos Furazolidona AOZ 50 50 2.54 a 2.59 minutos Semicarbacida SEM 50 50 2.05 a 2.10 minutos Furaltadona AMOZ Tabla 1 tiempo de retención de los analitos de nitrofuranos en minutos y el porcentaje de fase que se utiliza Pereira et al (2004) en su estudio de análisis de tres metabolitos de Nitrofuranos en carne de pollo determino que la linealidad de su curvas de calibración con 5 niveles (n = 5), y utilizando los rangos de entre 0.3 - 5 ng/g, encontró un rango de los coeficientes de correlación entre R2> 0.980 a 0.997. de los cuales r2> 0.997 correspondió para AMOZ. r2> 0.936 para SEM y r2>0.980 para AHD. Bock et al CA40 4 División Ciencias de la Vida Campus Irapuato-Salamanca XII CONGRESO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA DE ALIMENTOS Jueves 27 y Viernes 28 de Mayo de 2010 Guanajuato, Gto. (2007) encontraron parámetros similares en muestras de camarón y pollo, en AMOZ, SEM, AHD y AOZ (r2 de 0.99 a 0.98). En el presente estudio, utilizando igualmente cinco niveles (n= 5) pero con rangos de 0.3 – 4 ng/g, se determinaron coeficientes de correlación (r) de 0.9975 para AMOZ, 0.9974 para AHD, 0.9901 para AOZ y 0.9905 para SEM. ver figura 1 Estos resultados muestran que el método aquí empleado mostró una sensibilidad comparable a lo obtenido por otros investigadores, mismos que se encuentran dentro de los parámetros que menciona la Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO) en su proyecto TCP/RLA/3013 (A). Figura 1 Representación de la linealidad de los diferentes analitos de nitrofuranos REPRODUCIBILIDAD: La reproducibilidad del método se realizo como lo indica la FAO TCP/RLA/3013(A) (2005), se hicieron varias reproducciones de las curvas en distintos tiempos (2 curvas el primer día, 1 el tercer día y 2 curvas el quinto día) encontrándose un coeficiente de correlación para cada una de las curvas en sus cinco niveles (0.3, 0.5, 1.0, 2.0, 4.0 ng/ml). El promedio del coeficiente de correlación (r) es de 0.9975 para AMOZ, un 0.9974 para AHD, un 0.9957 para AOZ y un 0.9952 para SEM ver tabla 2. CA40 5 División Ciencias de la Vida Campus Irapuato-Salamanca XII CONGRESO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA DE ALIMENTOS Jueves 27 y Viernes 28 de Mayo de 2010 Guanajuato, Gto. Tabla 2.- Linealidad de las curvas 1, 2, 3, 4, 5, para demostrar la reproducibilidad de la prueba con promedios de coeficiente de correlación superior a 0.99 Se realizo un muestreo de 32 lotes distintos de dos rastros TIF que existen en el Estado de Nuevo León, encontrándose que las 32 muestras de músculo fueron negativas a la presencia de los cuatro analitos de Nitrofuranos (Nitrofurazona (SEM), Furazolidona (AOZ), Furaltadona (AMOZ), Nitrofurantoína (AHO)). Previamente, en un estudio realizado en el 2006 por la Secretaria de Agricultura, Ganadería, Desarrollo, Rural, Pesca y Alimentos en su programa Mexicano de Monitoreo y Control de Residuos Tóxicos y Contaminantes en Alimentos de Origen Animal (PMMCRT 2007), encontraron una prevalencia muy baja en diferentes especies animales mientras que en bovinos de 300 muestras tomadas a nivel Nacional de Músculo de bovinos, 8 fueron positivas a Nitrofuranos (AMOZ), mientras que en otro estudio realizado en el 2006 por el National Residue Program Data de la “Food SAFETY and Inspection Service” publico, de 21,479 muestras analizadas se encontró 1 muestra positiva a nitrofuranos. Así mismo, Chedy (2005), en Chile encontró 157 bovinos, 25 porcinos, 25 aves, 15 pavos, 4 ovejas, dando un total de 226 animales, positivos a residuos de Nitrofuranos. Un año después (2005) el Ministerio de Agricultura y Ganadería en su Programa de Control de Residuos del Gobierno de Chile, encontró a 180 bovinos, 25 aves y 15 pavos dando un total de 220 animales positivos a Nitrofuranos (PCR 2005). Esto muestra que aparentemente el uso de nitrofuranos en bovinos de lotes de engorda de esta región es muy limitado, también puede ser que las explotaciones ganaderas cumplen con los programas de buenas prácticas de manejo e inocuidad alimentaria. No obstante es necesario realizar subsecuentes estudios para validar las observaciones mostradas en este trabajo. CONCLUSIONES La Cromatografía Liquida de Alta Resolución con detector de Masa (HPLCMS/ MS), permite el análisis simultáneo de cuatro metabolitos del Nitrofuranos (AOZ, CA40 6 División Ciencias de la Vida Campus Irapuato-Salamanca XII CONGRESO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA DE ALIMENTOS Jueves 27 y Viernes 28 de Mayo de 2010 Guanajuato, Gto. AMOZ, AHD y SEM) en un tiempo relativamente rápido y con alto nivel de confiabilidad. Este método puede usarse como método de prueba diagnostica para determinar residuos de nitrofuranos en musculo de bovino así como de otros animales. La presencia de nitrofuranos en músculo de bovinos en los rastros TIF aparentemente tiene una baja frecuencia, lo que implica que estos compuestos no son empleados o su uso es muy limitado. No obstante será necesario realizar análisis posteriores para determinar la existencia en otros rastros que no cuenten con la inspección federal para saber la presencia de los analitos de nitrofuranos. REFERENCIAS: Anónimo 13 de octubre 2008. Informe de la Comisión de Emergencia Sanitaria Apícola que funciona en el ámbito de la SAGPyA y en el SENASA. http://www.sada.org.ar/Noticias/nitrofuranos_en_miel.htm Anónimo 08 de noviembre del 2004. Norma Oficial Mexicana-004-ZOO-1994 Control de residuos tóxicos en carne, grasa, hígado de bovinos, equinos, porcinos y ovinos. http://www.sagarpa.gob.mx/ganaderia/NOM/004zoo.pdf Bock Claudia, Petra Gowik, Carolin Stachel 2007. Matrix-comprehensive in-house validation and robustness check of a confirmatory method for the determination of four nitrofuran metabolites in poultry muscle and shrimp by LC–MS/MS Journal of Chromatography B, 856:178–189. Commission Decision 2002/657/EC. Official Journal of the European Communities (2002), L 221, 8. Chedy Núñez, M.V. 2005. Salud animal e inocuidad de los alimentos División de Protección Pecuaria, Resultados del Programa de Control de Residuos en Productos Pecuarios del año 2004, Ministro de Agricultura gobierno de chile Boletín Oficial Veterinario No. 3 Marzo Abril. European Commission health & consumer protection directorate-general 2003. Update of the opinion of the scientific committee on animal nutrition on the safety of product nifursol®. http://ec.europa.eu/food/fs/sc/scan/out119_en.pdf FAO.- Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación 2005. Proyecto TCP/RLA/3013 (A) “Desarrollo de un sistema integral de aseguramiento de calidad para laboratorios de análisis de alimentos en América del Sur, Bogotá, Colombia. CA40 7 División Ciencias de la Vida Campus Irapuato-Salamanca XII CONGRESO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA DE ALIMENTOS Jueves 27 y Viernes 28 de Mayo de 2010 Guanajuato, Gto. FDA U.S. 2004. Food and Drug Administration Center for Food Safety and Applied Nutrition. http://vm.cfsan.fda.gov/~comm/methnf.html Kelly Finzi Jane, Donato Jose Luiz, Sucupira Mauro, Nucci Gilberto De. 2005. Determination of nitrofuran metabolites in poultry muscle and eggs by liquid chromatography-tandem mass spectrometry Journal of Chromatography B, 824 pp. 30–35. L. Meyer Jones, A.B. 1969 Veterinary Pharmacology and Therapeutics the lowa State College Press Ames Iowa,USA. pp.455. O.M.S. Organización Mundial de la Salud 1992. Evaluación de ciertos residuos de fármacos en alimentos. Serie de informes técnicos 832. 40º Informe del Comité Mixto FAO/OMS de Expertos en Aditivos Alimentarios. ISBN: 92 4 320832 2. Pereira A. S., Pampana L. C., Donato J.L., Nucci G, 2004. Analysis of nitrofuran metabolic residues in salt by liquid chromatography–tandem mass spectrometry Analytica Chimica Acta 514 pp 9–13. Pérez de Ciriza J.A. Huerte A., Saiz I., Ozcáriz M. T., Purroy 1999. Residuos de Sustancias Inhibidoras en Carne Instituto de Salud Pública ANALES del sistema Sanitario de Navarra Vol. 22 Suplemento 3. Programa de Control de Residuos del año 2005 Ministerio de Agricultura y Ganadería Gobierno de Chile. Programa Mexicano de Monitoreo y Control de Residuos Tóxicos y Contaminantes en Alimentos de Origen Animal 2007 y Resultados del 2006 SAGARPA. http://senasicaw.senasica.sagarpa.gob.mx/portal/html/inocuidad_agroalimentaria/i nocuidad_acuicola/inocuidad_acuicola.html Reglamento del parlamento Europeo (RPE) y del consejo 1990., establecen procedimientos comunitarios para la fijación de los limites de residuos de las sustancias farmacológicamente activas en los alimentos de origen animal y se derogan el Reglamento (CEE) n0 2377/90 EC. http://eurlex. europa.eu/LexUriServ/LexUriServ.do Sumano López Héctor, Ocampo Camberos Luis, 1999 Farmacología Veterinaria Editorial McGRAW-HILL pp170-171. Verdon Eric, Couedor Pierrick, Sanders Pascal., 2007. Multi-residue monitoring for the simultaneous determination of five nitrofurans (furazolidone, furaltadone, nitrofurazone, nitrofurantoine, nifursol) in poultry muscle tissue through the detection of their five major metabolites (AOZ, AMOZ, SEM, AHD, DNSAH) by liquid chromatography coupled to electrospray tandem mass spectrometry— CA40 8 División Ciencias de la Vida Campus Irapuato-Salamanca XII CONGRESO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA DE ALIMENTOS Jueves 27 y Viernes 28 de Mayo de 2010 Guanajuato, Gto. Inhouse validation in line with Commission Decision 657/2002/EC. Analytica Chimica Acta 586 pp. 336–347. Vroomen L.H.M., Berghmans M.C.J., Van Leeuwen P., Van der Struijs T.D.B., De VriesP.H.U., Kuiper H.A.,1986. Food Addit. Contam. 3:331–334. CA40 9