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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS FASE I, Unidad Didáctica: BIOQUÍMICA MÉDICA 2º AÑO, CICLO DE KREBS, CADENA RESPIRATORIA. Dr. Mynor A. Leiva Enríquez Dr. M. Leiva 2013 Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. PROCEDENCIA Y DESTINO DE ACETIL-CoA Proteínas Glucosa TAG Glicerol Aminoácidos Piruvato Ác. Grasos Esteroides Acetil-CoA Colesterol Cetogénesis Ciclo de Krebs Citrato Acetil-CoA Ác. grasos C. Respiratoria TAG ATP+CO2+H2O Dr. M. Leiva Ciclo del ácido Cítrico (KREBS) 10 reacciones enzimáticas 2 reacciones irreversible Genera 3 NADH+H, 1 FADH2 y 1 ATP a nivel del sustrato Dr. M. Leiva Mitocondria Dr. M. Leiva Esquema general del ciclo de Krebs Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica. , BAYNES ET AL. 2ª. Edición. Editorial. Elsevier. ENZIMA 1- CITRATO SINTASA 2- ACONITASA 3- ISOCITRATO DESHIDROGENASA 4- ALFA-CETO-GLUTARATO DESHIDROGENASA 5- SUCCINATO TIO-CINASA 6- SUCCINATO DESHIDROGENASA 7- FUMARASA 8- MALATO DESHIDROGENASA SUSTRATO 12 CITRATO 23 ISOCITRATO 34 ALFA CETOGLUTARATO 45 SUCCINIL-CoA 56 SUCCINATO 67 FUMARATO 78 MALATO 81 OXALACETATO Dr. M. Leiva 1. Formación del Citrato El citroil-CoA es un intermediario transitorio de reacción • La hidrólisis del enlace tioéster del intermediario hace que la reacción sea exergónica Dr. M. Leiva 2. Formación de isocitrato vía cis-aconitato La aconitasa contiene un centro hierro-azufre que actúa como centro de fijación de sustratos y centro catalítico. Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica. , BAYNES ET AL. 3ª. Ed. Editorial. Elsevier. Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. 3. Oxidación del isocitrato a α-cetoglutarato y CO2 Existen dos formas diferentes de isocitrato deshidrogenasa: • NAD dependiente (matriz mitocondrial) • NADP dependiente (matriz mitocondrial y citosol) Dr. M. Leiva 4. Oxidación del α-cetoglutarato a succinil-CoA y CO2 El complejo de la α-cetoglutarato deshidrogenasa es muy parecido al complejo piruvato deshidrogenasa, tanto en estructura como en función, requiere difosfato de tiamina, lipoato, NAD, FAD y CoA Dr. M. Leiva Fuente: Fundamentos de Bioquímica, VOET ET AL. 2ª. Ed. Ed. Interamericana. a Cetoglutarato deshidrogenasa • Localizado en la mitocondria • Complejo multienzimatico que actúa de la misma forma que el Complejo Piruvato-deshidrogenasa. • Sustrato: alfa-ceto-glutarato. • Producto: Succinil-CoA – 3 enzimas • Alfa cetoglutarato deshidrogenasa (E1) • Dihidrolipoil transsucciniilasa(E2) • Dihidrolipoil deshidrogenasa (E3) – 5 coenzimas • • • • • Pirofosfato de tiamina Acido lipoico CoA FAD NAD Dr. M. Leiva El complejo a cetoglutarato deshidrogenasa utiliza 5 coenzimas diferentes Difosfato de tiamina NAD (niacina) Lipoamida FAD (Riboflavina) Dr. M. Leiva CoA (A. Pantotenico) 5. Conversión del succinil-CoA en succinato La formación acoplada de GTP (o ATP) a expensas de la energía liberada por la decarboxilación oxidativa del α-ceto-glutarato es otro ejemplo de fosforilación a nivel del sustrato. Dr. M. Leiva Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. 6. Oxidación del succinato a fumarato En eucariotas, la succinato deshidrogenasa se encuentra unida a la membrana mitocondrial interna, contiene tres centros hierro-azufre diferentes y una molécula de FAD unida covalentemente. Dr. M. Leiva El malonato es un fuerte inhibidor competitivo de esta enzima 7. Hidratación del fumarato y producción de malato La enzima FUMARASA es específica para el fumarato y el L-malato Dr. M. Leiva 8. Oxidación del malato a oxalacetato Dr. M. Leiva Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Balance energético Dr. M. Leiva Vías Anapleróticas • Ana: arriba, • Plerotikos: llenar • Son reacciones que reponen intermediarios del ciclo • Piruvato carboxilasa: produce oxalacetato Dr. M. Leiva Reacciones Anapleróticas • Son reacciones que proveen la cantidad necesaria de un metabolito intermediario importante. • La reacción de la enzima piruvato carboxilasa es un ejemplo, al ser necesario Oxalacetato. • Piruvato + CO2 + ATP + H2O Oxalacetato + ADP + Pi + 2H+ malato para gluconeogénesis… Dr. M. Leiva Principales vías biosintéticas y anapleróticas Dr. M. Leiva Fuente: Fundamentos de Bioquímica, VOET ET AL. 2ª. Ed. Ed. Interamericana. Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Los Carbonos de los aminoácidos (luego de la transaminación) entran al ciclo de Krebs en diferentes puntos Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica. , BAYNES ET AL. 3ª. Ed. Editorial. Elsevier. Principales vías biosintéticas y anapleróticas Dr. M. Leiva Regulación del ciclo de Krebs • Disponibilidad de sustratos • Necesidad de intermediarios como precursores biosintéticos • Demanda de ATP • El factor regulador más importante es la relación intramitocondrial de [NAD+] / [NADH] Dr. M. Leiva Regulación del ciclo de Krebs • 1. Disponibilidad de sustratos • 2. Inhibición por acumulación de productos • 3. Regulación de las siguientes enzimas: – Citrato sintasa • Inhibidores: NADH, succinilCoA, citrato, ATP • Activadores: ADP – Isocitrato deshidrogenasa • Inhibidores: NADH • Activadores: Ca++, ADP – α-cetoglutarato deshidrogenasa • Inhibidores: succinil-CoA, NADH • Activadores: Ca++ Dr. M. Leiva Fuente: Fundamentos de Bioquímica, VOET ET AL. 2ª. Ed. Ed. Interamericana. Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Dr. M. Leiva • El Ciclo de KREBS es un punto de convergencia en el metabolismo intracelular. • Carbohidratos, grasas y proteínas son fuentes de Acetil- CoA • Desde aquí, la obtención de ATP sigue la misma ruta. • El requisito para su acción es la presencia de oxígeno. Dr. M. Leiva Fuente: Fundamentos de Bioquímica, VOET ET AL. 2ª. Ed. Ed. Interamericana. C. Krebs: proceso anfibólico Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica. , BAYNES ET AL. 3ª. Ed. Editorial. Elsevier. Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica. , BAYNES ET AL. 3ª. Ed. Editorial. Elsevier. Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica. , BAYNES ET AL. 3ª. Ed. Editorial. Elsevier. GLUCONEOGÉNESIS LIPOGÉNESIS SÍNTESIS PROTÉICA HEM y Ácidos Nucleicos Proceso ANFIBÓLICO Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Mathews 3ª Edición. Dr. M. Leiva A nivel del sustrato 4 ATP Lanzadera de Malato 6 ATP Descarboxilación del piruvato 6 ATP Ciclo de Krebs 24 ATP total 40 ATP Dr. M. Leiva LANZADERAS DE GLICEROFOSFATO Y MALATO Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Dr. M. Leiva Reacción Mecanismo moles ATP/mol Glucosa Hexocinasa Fosforilación -1 Fosfofructocinasa Fosforilación -1 Glicerol-3-P Deshidrogenasa Fosfoglicerato cinasa Piruvato cinasa Piruvato deshidrogenasa Isocitrato deshidrogenasa α-cetoglutarato deshidrogenasa Succinil-CoA sintetasa Succinato deshidrogenasa Malato deshidrogenasa Fosforilación oxidativa del NADH Fosforilación a nivel del Sustrato Fosforilación a nivel del Sustrato Fosforilación oxidativa del NADH Fosforilación oxidativa del NADH Fosforilación oxidativa del NADH Fosforilación a nivel del sustrato (GTP) Fosforilación oxidativa del FADH2 Fosforilación oxidativa del NADH Dr. M. Leiva TOTAL +6 (+4)* 2 2 6 6 6 2 4 6 38 (36) • CADENA RESPIRATORIA MITOCONDRIAL • FOSFORILACIÓN OXIDATIVA Dr. M. Leiva La fosforilación oxidativa se produce en la membrana interna de la mitocondria La mitocondria posee dos sistemas de membrana, que rodean a la matriz. Matriz • Ciclo del ácido cítrico y oxidación de los ácidos grasos Membrana interna • Es impermeable a casi todos los iones Se pliega en crestas. Contiene los componentes de la cadena de transpote de e• Y la ATP sintasa Membrana externa • Es bastante permeable a iones y moléculas pequeñas Dr. M. Leiva Mitocondria Cadena Respiratoria y Fosforilación Oxidativa • Cadena Respiratoria: Transporte en secuencia ordenada de los equivalentes reducidos desde los sustratos donadores (reduciendo al NAD o al FAD) hasta la formación final de AGUA. • Fosforilación Oxidativa: Sistema de conversión o captura de la energía liberada en la cadena respiratoria (68%), para unir ADP + Pi y formar ATP. Dr. M. Leiva Cadena Respiratoria y Fosforilación Oxidativa • Las enzimas de la cadena respiratoria están en la cara interna de la membrana interna, agrupadas en complejos que producen potenciales electroquímicos transmembrana. • Varias ATP-sintasa utilizan la energía del gradiente de protones para sintetizar ATP, perdiéndose una parte como calor. Dr. M. Leiva Dr. M. Leiva Conservación de la energía por acoplamiento con el ATP • Casi la mitad de la energía obtenida en la oxidación de los combustibles metabólicos es canalizada hacia la síntesis de ATP • La membrana mitocondrial interna es impermeable a ATP, coenzimas, fosfato, protones, varios iones y moléculas pequeñas. • Se acepta que 1 mol de NADH tiene un rendimiento aproximado de 2.5 moles de ATP Dr. M. Leiva Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica de BAYNES et. Al. 3ª. Edición, Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Dr. M. Leiva Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Sustratos que transfieren electrones a NAD por enzimas deshidrogenasas • Puede haber acoplamiento directo al NAD de la Cadena Respiratoria. • Piruvato y alfa-cetoglutarato usan complejos dishidrogenasa + FAD + Lipoato NAD. • Producen 3 ATP • Producen 2.5ATP Dr. M. Leiva Sustratos que transfieren electrones por enzimas dependientes de Flavoproteína. • FeS: Sulfoproteína férrica (Fe++Fe+++) • TFE: Flavoproteína transferidora de electrones. • Fp: Flavoproteína • FAD Producen 2 ATP • FAD Producen 1.5ATP Dr. M. Leiva Sustratos que transfieren electrones por enzimas dependientes de Flavoproteína. • La enzima succinato deshidrogenasa se ubica en la superficie interna de la membrana interna mitocondrial. • El potencial redox de estos sustratos es más positivo. Dr. M. Leiva Dr. M. Leiva Enzimas ligadas a NAD+ Alfa- cetoglutarato DH Malato DH Piruvato DH Gliceraldehido- 3 -fosfato DH Lactato DH Beta- hidroxiacil- CoA DH Ligadas a NAD+ o NADP+ Glutamato DH Ligadas a FAD Acil CoA DH (F) Succinato DH (II) Glicerol3 P DH (G) Ligadas a FMN NADH DH Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica de BAYNES et. Al. 3ª. Edición, Complejo I. Función de NADH Deshidrogenasa (FeS y FMN) • La energía proveniente de la oxidación NADH+H, traslada protones al exterior de la membrana interna (bomba de protones) • Transfiere electrones a la uniquinona. Dr. M. Leiva El complejo II define la función ubicuinona-oxidorreductasa •La coenzima Q recibe equivalentes reductores de componentes más positivos. •Lipofílica, parecida a la vit. K •La coenzima Q une a las flavoproteínas con el Citocromo b (el de menor potencial redox) •Componente móvil que colecta equivalentes de Complejos I y II y los lleva al Complejo III. Dr. M. Leiva El coenzima Q es paso obligatorio de los electrones procedentes de varias vías Espacio intermembrana Succinato Flavoproteína de transferencia de electrones Matriz Dr. M. Leiva Complejo III: ubicuinona:ferrocitocromo c oxidorreductasa. •El ciclo de la Coenzima Q incluye la captación de 2 H+ de la matriz mitocondrial y su bombeo hacia el espacio intermembrana, •Traslada electrones del cit. b al c1 y finalmente al cit. c. Dr. M. Leiva Oxidación de la primera QH2 Oxidación de la segunda QH2 El citocromo c transporta electrones del completo III al IV. Si llega al citosol, puede inducir apoptosis. Dr. M. Leiva Complejo IV: Ferrocitocromo c oxidorreductasa • Cit.c es soluble, conecta complejos fijos III y IV. • C-aa3 “citocromo oxidasa”: combinación irreversible de equivalentes reductores conducidos hacia el oxígeno: da dirección. • Tercera bomba de protones que impulsa a la ATP sintasa. Genera AGUA. • Inhibida por Monóxido de Carbono y Cianuro. Espacio Intermembrana Matriz (del sustrato) Dr. M. Leiva (bombeados) Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica de BAYNES et. Al. 3ª. Edición, La oxidación se acopla estrechamente a la fosforilación para satisfacer las necesidades de energía de la célula. Espacio Intermembrana Succinato Fumarato Matriz Dr. M. Leiva Si el recorrido de los equivalentes reductores empieza en el complejo I, se cumplirán 3 “bombeos” de protones. Si empieza en el complejo II, se cumplirán 2 “bombeos”. A mayor bombeo, mayor gradiente de protones y mayor actividad de la ATP-sintetasa. Dr. M. Leiva Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Teoría Quimiosmótica de la Fosforilación Oxidativa La membrana interna es impermeable a los protones. Cuando son bombeados fuera de la matriz, acidifican y positivizan el espacio intermembrana. La fuerza protón motriz (Δp) es la energía almacenada en el gradiente de concentración de protones que al regresar por la ATP-sintasa, generan la energía para producir ATP. Dr. M. Leiva El hidrógeno y los electrones fluyen a lo largo de la cadena en etapas, a partir de los componentes de mayor potencial redox negativo hacia los componentes de mayor potencial redox positivo, a través de un intervalo de 1.1 V que abarca desde el NAD+/NADH hasta el O2 / 2 H2O. Dr. M. Leiva Complejo V: ATP Sintasa • Fo es el motor y poro de protones. • El F1 componente rotatorio. Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica de BAYNES et. Al. 3ª. Edición, Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica de BAYNES et. Al. 3ª. Edición, ATP sintasa: Fuente: Bioquímica de HARPER. 17ª. Edición, • Los protones que pasan por las subunidades C y g causan su rotación. • Las subunidades b captan ATP+Pi y liberan ATP. • Se forman 3 moléculas de ATP por cada giro completo del complejo Dr. M. Leiva F0: bomba de H+ •Segmento hidrofóbico que atraviesa la membrana interna mitocondrial •Contiene conducto de H + del complejo •Formado por -10-14 subunidades c -1 subunidad a en la periferia del anillo Matriz M. Espacio Intemembrana Dr. M. Leiva F 1 : Unidad catalítica: formada por: -5tipos de cadenas polipeptídicas: -3 cadenas α -3 cadenas β -1 cadenas γ δ ε -α y β alternadas en anillo hexámerico -miembros de la familia de NTPasas -ambas unen nucleótidos, solo β participa en la catálisis• -γ y ε forman el tallo central de la estructura.• Dr. M. Leiva Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica de Harvey 5ª. Ed. Inhibición del Complejo I Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica de BAYNES et. Al. 3ª. Edición, Inhibición del Complejo III Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica de BAYNES et. Al. 3ª. Edición, Inhibición del Complejo IV Dr. M. Leiva Fuente: Bioquímica Médica de BAYNES et. Al. 3ª. Edición, Inhibidores de cadena respiratoria, Inhibidores de fosforilación oxidativa y desacopladores ADP atractilósido ATP 2,4-di-nitrofenol, termogenina, oligomicina malonato barbitúricos Fuente: Bioquímica de HARPER. 17ª. Edición, Antimicina A y Dimercaprol Dr. M. Leiva H2S, CO y CN Proteínas Desacopladoras Fuente: Bioquímica Médica de BAYNES et. Al. 3ª. Edición, Dr. M. Leiva Dr. M. Leiva • GRACIAS