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Perfil de expresión genética en el carcinoma no microcítico de pulmón: utilidad de las biopsias endoscópicas, correlación con la histología y predicción pronóstica en pacientes operables. FIS 04/2641 Objetivo principal del proyecto Metodología de trabajo de microarrays Ejemplos aplicaciones en pulmón Resultados OBJETIVO PRINCIPAL Analizar los perfiles de expresión génica de carcinomas de pulmón no microcítico operables ( biopsias endobronquiales y piezas quirúrgicas) mediante microarrays de oligonucleótidos de genoma humano completo. Ajustar un modelo multidimensional con la información molecular obtenida de los perfiles de expresión y la información clínica para predecir niveles de TLE y supervivencia. Principales alteraciones genético-moleculares RB p53 CPM LOH 3p CPNM CPM p53(mutación) RB (inactivación) K-ras (mutación) EGFR (sobreexpresión) HER-2/ neu (sobreexpresión) p16 INK4 (inactivación) P27 (inactivación) FHIT (delecciones) RASSFA1 (metilación) CPNM 80% 50% 80-100% 30% 1% 20% 0% 60% 0% 30% 0-10% 70% 100% 70% 80% 40% 100% 30-40% SCC ADC * 70% 25% 30% 40% * Aplicación de la genómica funcional al cáncer Un alto porcentaje de los genes descubiertos son de función desconocida Genómica funcional: Asignar función a cada uno de los genes de un organismo y hacerlo mediante análisis sistemáticos a gran escala ARRAYS EXPRESIÓN “ variaciones en la expresión de miles de genes de forma simultánea” CITACIONES DESDE 1995-2002 Citaciones encontradas en MEDLINE por 'microarray' (amarillo, 396) o por 'microarray+cancer‘ (rojo, 1325). MICROARRAYS Definición Tipos Ventajas y desventajas Metodología: Diseño y fabricación de un microarray Hibridación de las muestras Procesamiento de datos cDNA / Oligo - microarrays Sondas de DNA inmovilizadas y ordenadas espacialmente en superficies planas (cristales). - + Sondas: oligonucleótidos Productos de PCR: cDNA MICROARRAYS Formato miniaturizado Impresión ordenada de cientos o miles de genes en un formato estándar que consiste en un porta convencional similar al utilizado para inmunohistoquímica. SONDAS: cDNA, oligos GEN 1 GEN 2 cDNA (fragmentos de DNA de 500-1000 pdb ) Oligonucleótidos (fragmentos de DNA de 40-70 pdb ) GEN 3 PLATAFORMAS DE ARRAYS DE cDNA/OLIGOS Arrays Oligonucleotidos cDNA Arrays Alta densidad Baja densidad Alta especificidad Hibridación cruzada no puede ser determinada Requiere poca cantidad de muestra Requiere gran cantidad de muestra Perfil de expresión y alteraciones genéticas/polimorfismos Mayoritariamente perfil de expresión Alto coste Bajo coste Difícil de realizar, petición de oligos Poca flexibilidad Arrays de propia generación Alta flexibilidad VENTAJAS DE LAS NUEVAS TECNOLOGÍAS : MICROARRAYS DE cDNA /OLIGOS •Los métodos tradicionales sólo permiten el análisis de expresión simultáneo de un número de genes reducido (1-10), insuficiente para entender un escenario biológico complejo donde la activación génica es mucho mayor. •Los Microarrays permiten la integración e inmovilización, ordenada y conocida, de una alta densidad de material biológico (genoma completo) Metodología Diseño y fabricación de un microarray Preparación de la muestras Hibridación Competitiva Escaneado y obtención de datos Análisis de los datos Diseño y fabricación de un microarray Cristal ARRAYER Colección de genes blanco Siembra de 1000-1500 ng generando spots de entre 120-140 μm diámetro. K-ras p53 RB Cada círculo contiene el cDNA / oligo de un gen PREPARACION DE LAS MUESTRAS EXTRACCIÓN ARNT (ARNm 1%) mRNA mRNA AAAAA TTTTTT PROMOTOR AAAAA TTTTTT PROMOTOR RT RT T7P Cy3 Cy3 cDNA T7P Hibridación con poly( dT) Cy5 Cy5 cDNA cDNA (Retrotranscripción inversa) AMPLIFICACIÓN DE LAS MUESTRAS MARCAJE CON FLUOROCROMOS A A Tipos de Hibridación HIBRIDACIÓN COMPETITIVA HIBRIDACIÓN NO COMPETITIVA Agilent Affymetrix HIBRIDACION COMPETITIVA DE LAS MUESTRAS HIBRIDACIÓN COMPETITIVA Cy3 REFERENCIA TUMOR ARNm Cy5 Marcaje cDNA -marcado HIBRIDACIÓN 1) Marcaje fluorescente referencia tumoral A A B B C C 2) Hibridación 3) Cuantificación y análisis del resultado 1,8 cm A B C A B C ESCANEADO DEL MICROARRAY láser 1 Cy3 láser 2 Cy5 EMISION www.broad.mit.edu/chembio/lab_schzeiber/anims/videos/microarray.html PROCESAMIENTO DE LA IMAGEN Puntos VERDES representan genes downregulados en el tumor Cy5 Puntos AMARILLOS representan genes no modificados Puntos ROJOS representan genes sobreexpresados en el tumor Cy3 TRANSFORMANDO IMÁGENES EN DATOS Análisis: GenePixPro 6.0 Intensidad: nivel de expresión Muestra problema marcada con rojo (Cy5) Muestra de referencia marcada con verde(Cy3) Rojo Verde = Ratio de expresión 2 = 2x sobre-expresado 0.5 = 2x downregulado RATIOS DE EXPRESIÓN ARRAYS /CASOS GENES COMPARACIÓN DE VARIAS MUESTRAS RESULTADOS RDC-1: (A,1) Genes 1 Código de colores según el nivel de expresión 2 3 1 2 3 4 ... 4 Muestras Perfil de expresión transcripcional PROCESAMIENTO DE DATOS Array Escaneado, Procesamiento imágen Normalización DNMAD Selección de genes GEPAS CLUSTERING No Supervisado Supervisado Clasificación muestras Expresión diferencial: predictor PROCESAMIENTO DE DATOS Array Escaneado, Procesamiento imágen Normalización DNMAD Normalización Hay muchas fuentes de error que pueden afectar seriamente a la interpretación de los resultados. Diferencias en la eficiencia de hibridación, marcaje, efectos locales, etc. La Normalización de los datos es un paso necesario antes al procesamiento y análisis. BoxPlots PREPROCESADO DE DATOS Array Escaneado, Procesamiento imágen Normalización DNMAD Selección de genes GEPAS Rojo/verde: ratio de expresión 2 = 2x sobre-expresado 0.5 = 2x downregulado log rojo/verde: log ratio 1 = 2x sobre-expresado -1 = 2x downregulado 1. Transformación logarítmica en base 2 2. Quitar replicados 3. Fusionar duplicados que existan tomando como único valor resultante la media de todos ellos para cada condición. 4. Eliminar los genes de los que se disponga menos del 70% de los datos. 5. Imputar valores desconocidos utilizando los 15 registros más parecidos (KNN). 6. Filtrar aquellos registros en los que no se observa una diferencia de +/1.0 para cada condición experimental, tratándose de registros con un perfil plano. 7. Filtrar genes desconocidos PROCESAMIENTO DE DATOS Array Escaneado, Procesamiento imágen Normalización DNMAD Selección de genes GEPAS CLUSTERING No Supervisado Supervisado Clasificación muestras Expresión diferencial: PERFIL DE EXPRESIÓN FIRMA MOLECULAR APLICACIÓN DE MICROARRAYS EN PULMON CLASIFICACIÓN MOLECULAR DE LOS TUMORES : DESCUBRIMIENTO DE CLASES Estudio de la existencia de nuevos subgrupos específicos definidos según su patrón de expresión. Heterogeneidad dentro de un mismo tipo tumorales PREDICCIÓN DE CLASES (RESPUESTA A TRATAMIENTO, METASTASIS) Estudio comparativo de clases predefinidas basando en el perfil de expresión diferencial de genes previamente seleccionados: PREDICTOR Aplicado al análisis de numerosas situaciones clínicas (diagnostico, selección del tratamiento) APLICACIÓN DE MICROARRAYS EN PULMON CLASIFICACIÓN MOLECULAR DE LOS TUMORES : DESCUBRIMIENTO DE CLASES Estudio de la existencia de nuevos subgrupos específicos definidos según su patrón de expresión. Heterogeneidad dentro de un mismo tipo tumorales PREDICCIÓN DE CLASES (RESPUESTA A TRATAMIENTO, METASTASIS) Estudio comparativo de clases predefinidas basando en el perfil de expresión diferencial de genes previamente seleccionados: PREDICTOR Aplicado al análisis de numerosas situaciones clínicas (diagnostico, selección del tratamiento) Oncogene, 2005 48 SCC, 9 AD, 30 normales ‘Down en SCC’ ‘Different en SCC’ ‘Up en SCC’ SCC-B: adhesión, invasión, metástasis SCC-A: transducción de señales Clustering supervisado Entre SCC-A, y SCC-B no existe una correlación significativa con ningún parámetro clínico-patológico, incluyendo estadios y grado de diferenciación tumoral 432 genes PNAS, 2001 72 muestras Group 1: 19 casos Grado 2 Group 2: 7 casos Grado 2-3 Group 3: 9 casos Grado 3 CLUSTERS: A.- 918 genes modificados con respecto a la referencia B.- Genes marcados por su implicación en AD Se definen 3 grupos de adenocarcinomas, cuyo perfil de expresión se puede correlacionar con grado de diferenciación tumoral y supervivencia APLICACIÓN DE MICROARRAYS EN PULMON CLASIFICACIÓN MOLECULAR DE LOS TUMORES : DESCUBRIMIENTO DE CLASES Estudio de la existencia de nuevos subgrupos específicos definidos según su patrón de expresión. Heterogeneidad dentro de un mismo tipo tumorales PREDICCIÓN DE CLASES (RESPUESTA A TRATAMIENTO, METASTASIS) Estudio comparativo de clases predefinidas basando en el perfil de expresión diferencial de genes previamente seleccionados: PREDICTOR Aplicado al análisis de numerosas situaciones clínicas (diagnostico, selección del tratamiento) Cancer Res., 2002 NSCLC: 39 Lobectomías parciales o totales 2899 genes se encontraron modificados al menos 2 veces en >80% de las muestras. Análisis estadístico: firma molecular asociada a recaída (>1 año) local y/o metástasis. Perfil génico sin recidiva (15 muestras): - up Cluster A - down Cluster B y Cluster C Perfil génico recidiva local /distancia (24 muestras): - down Cluster A - up Cluster B y Cluster C APLICABILIDAD EN MUESTRAS NO QUIRURGICAS Clin. Cancer Res., 2003 47 FNAs: únicamente de 17 se obtuvo material necesario para el análisis de expresión : 17 FNAs / 17 tej. nomal / 17 tej. Tumoral La mayoría de las FNAs muestran un perfil de expresión similar a la muestra tumoral El perfil de expresión de FNAs de NSCLC puede determinar malignidad, y podrá ser utilizado como método alternativo a la muestra quirúrgica PCA PCA Perfil de expresión génica en carcinoma no microcítico de pulmón: Utilidad de las biopsias endoscópicas Correlación con la histología Predicción pronostica en pacientes operables Metodología Resultados Objetivo principal PERFILES EXPRESIÓN 200 pacientes (230 muestras) 30 pacientes muestra quirúrgica vs. muestra endoscópica METODOLOGÍA A SEGUIR Marcaje cDNA e HIBIRIDIZACION ADQUISICION MUESTRA ANALISIS SUPERVISADO Expresión diferencial entre dos o más clases Predictor de clases EXTRACCION RNA TOTAL ANALISIS NO SUPERVISADO METODOLOGÍA A SEGUIR Marcaje cDNA e HIBIRIDIZACION ADQUISICION MUESTRA ANALISIS SUPERVISADO Expresión diferencial entre dos o más clases Predictor de clases EXTRACCION RNA TOTAL ANALISIS NO SUPERVISADO Extracción del RNA total Cantidad Calidad RNA CANTIDAD Cantidad mínima necesaria para hibridar con microarrays (Agilent (500 ng ARN total)) Caso con T < 50% Caso con T > 50% RNA CALIDAD 28 S 28 S 18 S 18 S Buena calidad MUESTRAS MARC P11, P12, P13, P13b, P14a, P14b,P14c, P15a, P15b Degradado CONTROLES M14, M12-1, M31, M77, M5 RNA CALIDAD Agilent Bioanalyzer 2100 25 28 S 20 18 S Fluorescence 15 10 0 19 24 29 34 39 Time (seconds) 28S 18S 5 44 49 54 59 3.0 2.5 1.5 1.0 15 20 25 4 - 28S 0.0 23 - 1 8 S 0.5 1 Análisis de 1μl de muestra Nivel de detección: picogramos Proceso completo: 30 minutos (12 muestras) F lu o r e s c e n c e 2.0 30 35 40 Time (seconds) 45 50 55 METODOLOGÍA A SEGUIR Amplificación / marcaje e HIBIRIDIZACION ADQUISICION MUESTRA ANALISIS SUPERVISADO 27 muestras Expresión diferencial entre dos o másRNA clases suficiente en 13 8 no degradadas Predictor de clases EXTRACCION RNA TOTAL ANALISIS NO SUPERVISADO 8 muestras no degradadas 6 tenían T> 50% Resultados-Hibridación AGRADECIMIENTOS Hospital 12 de Octubre Hospital Severo Ochoa Grupo de Cáncer mamario y ginecológico del CNIO Banco de Tumores