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PECU-34 Potencial Prebiótico de la Inulina para el Crecimiento In Vitro de Lactobacillus Salivarius y Enterococcus Faecium Gómez-Hernández Juan L.1, Crosby-Galván María M.1, Ramírez-Bribiesca Efrén1, PintoRuiz René2, Arand-Ibáñez Emilio1,*Hernández-Sánchez David1 RESUMEN. El uso de antibióticos como medida preventiva para las enfermedades diarreicas es común, pero desarrolla problemas de resistencia a los antibióticos. Las bacterias ácido lácticas (BAL) son habitantes comunes del tubo digestivo y crean un efecto antagónico contra enteropatógenos. El control de la flora gastrointestinal por la alimentación pude dares a través del uso de prebióticos como al inulina. El objetivo de esta investigación fue evaluar la influencia de la inulina en el crecimiento in vitro de Lactobacillus casei (Lc), Lactobacillus salivarius (Ls) y Enterococcus faecium (Ef). Se realizaron incubaciones in vitro a 37 ° C, sustituyendo la glucosa del medio MRS por inulina. Los Tratamientos (T) fueron: T1=MRSglucosa+Ls, T2=MRS-glucosa+Ef, T3=MRS-glucosa+ Lc, T4=MRS-inulina+Ls, T5=MRSinulina+Ef, T6=MRS-inulina+Lc, T7=MRS-inulina+Ls+Ef, T8=MRS-inulina+Ls+Lc, T9=MRS-inulina+Ef+Lc y T10=MRS-inulina+Ls+Ef+Lc. Se evaluó la cuerva de crecimiento, pH, producción de ácido láctico, amonio, resistencia a ácido clorhídrico y sales biliares y antagonismo contra Escherichia coli y Salmonella Typhimurium. Los datos se analizaron en un diseño completamente al azar y la comparación de medias con la prueba de Tukey. Se determinó que la inulina tiene un efecto estimulante en el crecimiento de las cepas bacterianas evaluadas, presentando los más altos (P<0.05) valores de absorbancia en medios con MRS-inulina que en MRS-glucosa (2.35d, 2.28d, 2.30d, 2.83abc, 2.67c, 2.64c, 2.75abc, 2.93ª, 2.72bc and 2.88ab, para T1 a T10, respectivamente) y altos (P<0.05) conteos bacterianos al final de la fase exponencial (10.98d, 10.76d, 11.29d, 13.11c, 13.63b, 13.77ª, 12.93c, 12.74c, 12.43c y 12.92c Log 10 UFC mL-1 para T1 a T10, respectivamente); asimismo, se observaron valores de resistencia a ácido y sales superior al 90% y efecto antagónico contra E. coli y Salmonella Typhimurium, sin efecto en otras variables evaluadas. Se concluye que las cepas Ls y Ef son capaces de fermentar inulina, produciendo un efecto estimulante en el crecimiento bacteriano sin afectar su potencial probiótico 1 *Colegio de Postgraduados (*Autor de correspondencia: sanchezd@colpos.mx) 2 Universidad Autónoma de Chiapas PALABRAS CLAVE. Lactobacillus salivarius, Enterococcus faecium, inulina, rumiantes. INTRODUCCION. Algunas de las alternativas con las cuales se busca hacer eficiente al organismo animal y reducir el estrés causado por las prácticas pecuarias, incluyen el uso de productos biotecnológicos tales como enzimas, ionóforos, levaduras, hormonas, probióticos y prebióticos. De éstos últimos, sobresale la inulina debido a los beneficios que otorga al organismo que lo consume. Algunos autores han descrito el efecto benéfico de la inulina en el crecimiento in vitro de bacterias ácido lácticas de interés para la salud humana. A este respecto, Donovan et al. (2002) y Verdonk y van Leeuwen (2004) reportaron el uso de inulina en becerros destetados precozmente, con efecto similar al uso de antibiótico. La evidencia indica un efecto estimulante de la inulina sobre la flora benéfica del tubo digestivo, situación que representaría una ventaja al evitar alteraciones digestivas y metabólicas en becerras lactantes y destetadas precozmente. Por lo tanto, el objetivo del presente estudio fue evaluar el estímulo de la inulina en el crecimiento in vitro de Lactobacillus salivarius y Enterococcus faecium con capacidad probiótica para becerras destetadas precozmente.El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto de la inulina en el crecimiento in vitro de Lactobacillus salivarius y Enterococcus faecium, descritos como probióticos para becerras destetadas precozmente. MATERIALES Y METODO. Un ensayo in vitro fue desarrollado en el Laboratorio de Nutrición Animal y en el Laboratorio de Microbiología Ruminal y Genética Microbiana, pertenecientes al Posgrado de Ganadería del Colegio de Postgraduados, localizado en Montecillo, Estado de México, México. Se utilizaron las cepas de Lactobacillus salivarius (Ls) y Enterococcus faecium (Ef) con potencial probiótico para ruminantes, y Lactobacillus casei ATCC (Lc) como control positivo. La glucosa presente en el medio MRS fue sustituida por inulina en la misma proporción (Tabla 1). Tabla 1: Composición del medio cultivo líquido. Tabla 2: Tratamientos experimentales. Se realizaron monocultivos y cocultivos de bacterias ácido lácticas, las cuales se describen en el Tabla 2. Curva de crecimiento Las cepas de Lactobacillus salivarius y Enterococcus faecium fueron reactivadas e inoculadas, 12 mL (108 UFC mL-1) de cada una en 108 mL of medio de cultivo, de acuerdo al tratamiento (1/10; Tabla 2). Los cultivos bacterianos fueron incubados a 37 °C por 36 y 60 h para los tratamientos con MRS-glucosa y MRS-inulina, respectivamente. El crecimiento bacteriano se determinó por densidad óptica (DO), usando espectrofotometría, con una longitud de onda de 630 nm (Varian Spectrophotometer UV-Vis Cary 1E, USA) (Smetanková et al., 2012). La absorbancia fue medida de acuerdo a los tratamientos MRS-glucosa (0, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 12, 24, 30 y 36 h) y MRS-inulina (0, 3, 6, 12, 24, 30, 36, 48, 54 y 60 h). Al inicio y final de la fase de crecimiento exponencial se realizaron diluciones seriadas y cultivos en placa para determinar las poblaciones bacterianas. Resistencia bacteriana a ácido clorhídrico y sales biliares Las cepas bacterianas de Lactobacillus salivarius (Ls) y Enterococcus faecium (Ef) fueron colocadas en un medio con pH ácido y sales biliares, de acuerdo a lo descrito por Rodríguez et al. (2008) y Caballero (2014). Producción de ácido láctico La determinación de ácido láctico fue desarrollada por colorimetría (570 nm; Varian Spectrophotometer UV-Vis Cary 1E, USA) descrita por Taylor (1996), al final de la fase de crecimiento exponencial y al concluir la incubación de cada tratamiento. Inhibición del crecimiento de Escherichia coli y Salmonella typhimurium Se desarrolló una prueba de antagonismo de acuerdo a lo descrito por Zinedine y Faid (2007) y Das et al. (2010). Las cepas de E. coli ATCC 25972 (Ec) y S. typhimurium ATCC 14028 fueron utilizadas para evaluar la actividad antagónica de Lactobacillus salivarius (Ls) y Enterococcus faecium (Ef). Los datos fueron analizados en un diseño completamente al azar y las medias de tratamientos fueron comparadas con la prueba de Tukey (P<0.05). RESULTADO. En la Tabla 3 se presentan los resultados de densidad óptica y población bacteriana en la fase de crecimiento exponencial; asimismo, se presentan los resultados de resistencia a ácido clorhídrico y sales biliares. Se observó que la inulina tuvo un efecto estimulante en el crecimiento de las cepas, registrándose altos (P<0.05) valores de absorbancia en los medios con MRS-inulina en comparación con los medios MRS-glucosa. De forma similar se registraron altos (P<0.05) conteos bacterianos al final de la fase exponencial (Tabla 3). No se registraron cambios en las otras variables evaluadas, pero es importante mencionar que el porcentaje de sobrevivencia de las células bacterianas expuestas a ácido clorhídrico (pH 4) y sales biliares (0.3%), resultó por arriba de 90% en todos los tratamientos (Tabla 3), indicando el potencial probiótico de las cepas evaluadas. Tabla 3: Absorbancia y población bacteriana en la fase exponencial (EXP), y porcentaje de sobrevivencias en células bacterianas expuestas a ácido clorhídrico (pH 4) y sales biliares (0.3% w/v) CONCLUSIONES. Se concluye que la inulina produce un efecto estimulante en el crecimiento in vitro de Lactobacillus salivarius y Enterococcus faecium, sin alterar la habilidad de estos probióticos, indicando que la inulina funciona como prebiótico. REFERENCIAS. Caballero, C. Y. 2014. Aislamiento e identificación de bacterias ácido lácticas con potencial probiótico en bovinos Holstein. Tesis de Maestría en Ciencias. Posgrado de Ganadería. Colegio de Postgraduados, Campus Montecillo. 74 p. Das, K., R. K. S. Tiwari and D. K. Shrivastava. 2010. Techniques for evaluation of medicinal plant products as antimicrobial agent: Current methods and future trends. J. Medicinal Plants Res. 4(2):104-111. Donovan, D. C., S. T. Franklin, C. C. L. Chase and A. R. Hippen. 2002. Growth and health of holstein calves fed milk replacers supplemented with antibiotics or enteroguard. J. Dairy Sci. 85:947-950. Rodríguez, O., J. Perea, Y. Martín, M. Fernández, I. Padrón y M. Núñez de Villavicencio. 2008. Evaluación in vitro de resistencia de bacterias lácticas a la barrera gástrica y biliar de cerditos y a enterobacterias patógenas. Rev. Comp. Prod. Porcina. 15(3):277-281. Taylor, A. C. C. K. 1996. A simple colorimetric assay for muramic acid and lactic acid. Appl. Biochem. Biotech. 56:49-58. Verdonk, J. M. A. J. and P. Van Leeuwen 2004. The application of inulin type fructans in diets for veal calves and broilers. In: Inulin and Oligofructose Feed Good Factors for Health and Well Being. 4th Orafti Research Conference, Paris. Zinedine, A. and M. Faid. 2007. Isolation and characterization of strains of bifidobacteria with probiotic proprieties In vitro. World J. Dairy Food Sci. 2(1):28-34. ACADEMIA VERACRUZANA DE CIENCIAS http://www.avc.org.mx