Download Programa de Maestría y Doctorado en Ciencias Bioquímicas

Cursos y Tópicos
Semestre 2016-2
1. Título del curso o tópico
Técnicas Selectas de Biología Molecular
2. Tutor responsable
Nombre del Tutor TORRES QUIROZ JOSE FRANCISCO
Entidad
Instituto de Fisiología Celular
Teléfono
(55) 56225628
Correo electrónico ftq@ifc.unam.mx
3. Integrantes
Integrante
Rol
TORRES QUIROZ JOSE FRANCISCO
Tutor responsable
DRA. LAURA ONGAY-LARIOS
Profesor invitado (Externo)
DRA. PAOLA MORENO ÁLVAREZ
Profesor invitado (Externo)
DR. JORGE RAMIREZ
Profesor invitado (Externo)
M. EN C. GERARDO COELLO
Profesor invitado (Externo)
CORIA ORTEGA ROBERTO
Profesor invitado (MDCBQ)
Horas
GONZÁLEZ PEDRAJO BERTHA MARÍA J. Profesor invitado (MDCBQ)
RECILLAS TARGA FELIX
Profesor invitado (MDCBQ)
VACA DOMÍNGUEZ LUIS ALFONSO
Profesor invitado (MDCBQ)
LICONA LIMÓN PAULA
Profesor invitado (MDCBQ)
4. Observaciones del Coordinador del curso o tópico
Dr. José Francisco Torres Quiroz
5622 5628
ftq@ifc.unam.mx
Para inscribirse al curso comunicarse con el Dr. José Francisco Torres Quiroz.
Para llevar el curso es requisito haber tomado un curso de biología molecular y que los alumnos trabajen aspectosde
biología molecular en sus respectivos proyectos.
No se aceptan alumnos que no hayan sido aceptados previamente por el coordinador.
No se aceptan oyentes.
5. Características para impartir el curso o tópico
Lugar en donde se realizará el tópico
Aula B del Instituto de Fisiología Celular, UNAM.
Horario en que se realizará el tópico
Viernes de 9am a 12pm
Número de sesiones
16
Máximo de alumnos que puede aceptar 15
6. Métodos de evaluación
Método
Porcentaje Cantidad
Participación en clase
10 %
16
Presentación de un proyecto
50 %
1
Trabajo escrito
40 %
1
7. Introducción / justificación del curso o tópico
Actualmente las técnicas de biología molecular son empleadas en laboratorios de investigación de diversas áreas, sin
embargo, algunas veces el usuario no comprende del todo cuales son los fundamentos. Por otro lado muchos de los
estudiantes que se incorporan al postgrado solamente conocen las técnicas empleadas en sus laboratorios y les es
difícil entender otras técnicas que se incluyen en artículos o se revisan en libros y que son necesarias para poder
tener una formación integral.
Recientemente se han desarrollado nuevas técnicas de biología molecular que se basan en técnicas ya conocidas y
es necesario tener este conocimiento para aplicarlas de la mejor manera.
8. Objetivos
El objetivo de este curso es revisar los fundamentos teóricos en los cuales se basan las técnicas clásicas de Biología
Molecular. Con esto se pretende que el alumno sea capaz no sólo de entender como se han desarrollado estas
técnicas sino también poder modificarlas para algún aprovechamiento particular. Un claro ejemplo de esto es el uso
de “kits” comerciales para diferente aspectos de biología molecular.
9. Temario del curso o tópico
Viernes 5 de Febrero de 2016.
1. Presentación del curso. Dr. Francisco Torres
2. Electroforesis.
a) Principios de la electroforésis.
b) Geles de Agarosa.
c) Aplicaciones de la electroforésis.
Viernes 12 de Febrero de 2016.
3. Extracción de Ácidos Nucleicos. Dr. Roberto Coria.
a) Extracción de DNA cromosomal.
b) Extracción de DNA extracromosomal.
c) Extracción de RNA.
Viernes 19 de Febrero de 2016.
4. Técnicas de DNA Recombinante. Dr. Francisco Torres
a) Restricción
b) Ligación
c) Software para análisis de DNA
Viernes 26 de Febrero de 2016.
5. Hibridación de Ácidos Nucleicos. Dr. Roberto Coria.
a) Soportes de retención de ácidos nucleicos.
b) Hibridación tipo Southern.
c) Hibridación tipo Northern.
d) Marcaje de sondas.
Viernes 4 de Marzo de 2016.
6. Amplificación de DNA. Dra. Laura Ongay Larios.
a) Reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
b) RT-PCR.
Viernes 11 de Marzo de 2016.
6. Amplificación de DNA. Dra. Laura Ongay Larios.
a) PCR en tiempo real.
Viernes 18 de Marzo de 2016.
7. Secuenciación de DNA. Dra. Laura Ongay Larios
a) Método químico.
b) Método enzimático.
Viernes 1 de Abril de 2016.
8. Interacciones Proteína-DNA. Dr. Felix Recillas Targa.
a) Digestiones con DNAsa.
b) Inmunoprecipitación de la cromatina.
c) Footprinting
Viernes 8 de Abril de 2016.
9. Sistemas de expresión en eucariontes. Dra. Paola Moreno Álvarez
a) Métodos de transfección.
b) Transfecciones estables.
c) Transfecciones transitorias.
d) Vectores de expresión.
Viernes 15 de Abril de 2016.
10. Generacion y tipos de modelos geneticos en vertebrados. Dra. Paula Licona
a) Clasificación: transgénicos/knock in/knock out.
b) Sistema CRISPR/Cas9.
Viernes 22 de Abril de 2016.
11. RNAi. Dr. Luis Vaca Domínguez.
a) Antecedentes del RNAi.
b) Principios del RNAi.
c) Aplicaciones.
Viernes 29 de Abril de 2016.
12. Transformación y Sistemas de expresión en procariontes. Dra. Bertha Gónzalez Pedrajo.
a) Métodos e transformación.
b) Vectores de expresión.
c) Genes reporteros.
Viernes 6 de Mayo de 2016.
13. Sistemas de interacción proteína-proteína. Dr. Roberto Coria.
a) Sistema de doble-híbrido.
b) Sistema de un solo híbrido.
c) Ensayo de complementación de fragmentos de proteína
Viernes 13 de Mayo de 2016.
14. Microarreglos. Dr. Jorge Ramírez Salcedo.
a) Principios de los microarreglos.
b) Microarreglos con DNA-DNA.
c) Microarreglos con DNA-RNA.
Viernes 20 Mayo de 2016.
15. Bioinformática. M. en C. Gerardo Coello
a) Bases de datos de genomas y proteínas
b) Análisis e interpretación de microarreglos.
Viernes 27 Mayo de 2016.
16. Presentación de trabajos finales.
10. Bibliografía
El curso se basará en las revisiones de artículos y protocolos especializados de las técnicas que conforman el
programa con el apoyo de la siguiente bibliografía general:
- Bloom, Freyer Miicklos. Laboratory DNA Science. 1996. Benjamin/Cummings Plubishing Company, INC.
- Sambrook and Rusell. Molecular Cloning. 2001. Cold Spring Harbor Laboratory Press.
Circuito de Posgrado, Ciudad Universitaria
Delegación Coyoacán, C.P. 04510, México D.F.
Tel: (55) 5623•7006
ntrejo@posgrado.unam.mx