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Carlos Shiva Ramayoni PhD, MSc, MVZ ANTECEDENTES La paloma (Columba livia) ciudades del mundo. coloniza la mayoría de Curo, et al., 2002 aislaron 26 cepas del género Cryptococcus de las cuales nueve cepas correspondieron a C. neoformans var. neoformans y 17 a Cryptococcus spp Rev. perú. med. exp. salud publica v.22 n.4 Lima oct./dic 2005 Gonzales Acuña, et al., 2007. registraron palomas positivas frente a: clamidiosis (11%), estafilococcosis (8%), salmonelosis (4%) y aspergilosis (1%). No se detectaron palomas con evidencias de criptococcosis y listeriosis. Rev Chil Infect 2007; 24 (3): 194-198 La paloma doméstica puede transmitir varias enfermedades al ser humano. De las enfermedades zoonóticas documentadas destacan la salmonelosis, aspergilosis, estafilococosis, listeriosis, colibacilosis, campylobacteriosis e histoplasmosis (D. Gonzales-Acuña et al., 2007, A. Lillehaug et al., 2005, O. Ramirez et al., 2008). Estudios en Brasil demostraron que la E. coli enteropatógena y enterotoxigénica en heces de palomas presentaron una tasa global del 12.1% (Silva et al; 2009). Asimismo, la prevalencia de E. coli portadora del gen Stx2 fue de en un 12.5% en las heces de paloma en la ciudad de Roma, Italia (Schmidt, 2000). Estudios en Brasil demostraron que la E. coli enteropatógena y enterotoxigénica en heces de palomas presentaron una tasa global del 12.1% (Silva et al; 2009). Asimismo, la prevalencia de E. coli portadora del gen Stx2 fue de en un 12.5% en las heces de paloma en la ciudad de Roma, Italia (Schmidt, 2000). Campylobacter spp. • En Madrid, se encontró una alta prevalencia de Campylobacter jejuni (69,1%), en contraste con Campylobacter coli (1.1%) en las aves capturadas (Columba livia) (Vásquez et al. 2010). • Noruega, de 200 muestras de heces frescas de palomas doméstica, en 6 se detectó Campylobacter jejuni (Lillehaug et al. 2005). • Bolivia, obtuvo una frecuencia de 29 % (12 muestras) a Campylobacter spp., y de estas muestras 57% resultó ser C. jejuni (Bautista et al. 2009). Universidad Peruana Cayetano Heredia Facultad de Veterinaria y Zootecnia “Aislamiento de Cryptococcus neoformans y Salmonella spp. en excretas de palomas domésticas (Columba livia) de la Basílica Catedral de Lima y Convento de San Francisco Lima” Tesis para optar el Título Profesional de Médico Veterinario Zootecnista Ornela Chávez Inagaki Bachiller en Medicina Veterinaria y Zootecnia LUGAR DE ESTUDIO El estudio se realizó en la Basílica Catedral de Lima y el Convento de San Francisco de Asís ubicados en el centro histórico de la ciudad de Lima, lugares en donde existe una alta concentración de aves (más de 100 palomas en el área). Cuadro 1.- Resultados de crecimiento de colonias sospechosas a Cryptococcus neoformans a partir de muestras secas de heces de paloma (Columba livia) cultivadas en medios Sabouraud y Niger Seed. Lima- 2011. Sabouraud (+) Lugar de muestreo Total de muestras Nro. Convento San Francisco de Asís 20 20 Basílica Catedral de Lima 27 47 TOTAL a,b Niger Seed (+) % Nro. % 100.0a 20 100.0a 23 85.2a 20 74.1a 43 91.5 40 85.1 Letras diferentes indican que las proporciones en cada columna son estadísticamente diferentes para cada lugar de muestreo Cuadro 3. Resultados positivos a las pruebas de confirmación para Cryptococcus neoformans a partir de muestras purificadas de aislados de colonias cultivadas en Niger Seed para cada punto de muestreo. Lima – 2011 Lugar de muestreo Urea (+) Nro. de CGB API muestras Nro. % Nro. % Nro. % 4 3 75.0 3 75.0 3 75.0 Basílica Catedral de Lima 7 6 85.7 6 85.7 6 85.7 TOTAL 11 9 81.8 9 81.8 9 81.8 Convento San Francisco de Asís Universidad Peruana Cayetano Heredia Facultad de Veterinaria y Zootecnia “Detección de Escherichia coli productora de Shiga toxina (STEC) y Enteropatogénica (EPEC) en palomas domésticas (Columba livia) del distrito de Pueblo Libre, Lima” Tesis para optar el Título Profesional de Médico Veterinario Zootecnista Moisés David Caballero Vásquez Bachiller en Medicina Veterinaria y Zootecnia Antecedentes Aves silvestres y Columbia livia. Palomas reservorio de agentes patógenos. Zoonosis de importancia transmitidas por las palomas. Enfermedad diarreica serio problema de salud pública. Fuente: Ochoa et al, 2010 Objetivo Determinar presencia y tipo de E. coli diarrogénica en palomas del distrito de Pueblo libre, mediante la amplificacion de genes de virulencia aplicando la tecnica de PCR. Toma de Muestras • Plástico Estéril • Pool de Muestras Cada parque fue divido en 2 cuadrantes Procesamiento Microbiológico • Transportado • • 4°C • Incubación • Agar Mac Conkey a 37 °C x 24 hrs. • Replicación • • Criopreservación Caldo Cerebro Corazón (BHI) a 37ºC x 24 hrs. Glicerol al 20% a -20°C Identificación por bioquímica • KIA (Kligler Iron Agar) • LIA (Lysine Iron Agar) • Citrato de Simmons • SIM (Sulfuro-IndolMotilidad) • Caldo Úrea (Koneman et al; 2006.) Extracción de ADN • WIZARD GENOMIC DNA PURIFICATION para bacterias Gram negativas (PROMEGA, USA). Secuencias de primers utilizados para la detección de genes virulentos de E. coli. Gen blanco Tamaño a generar (bp) ATAAATCGCCATTCGTTGACTAC AGAACGCCCACTGAGATCATC Shiga toxina 1 (stx1) 180 GGCACTGTCTGAAACTGCTCC TCGCCAGTTATCTGACATTCTG Shiga toxina 2 (stx2) 255 GACCCGGCACAAGCATAAGC CCACCTGCAGCAACAAGAGG Intimina (eae) 384 Hemolisina (hylA) 534 Secuencia (5’-3’) GCATCATCAAGCGTACGTTCC AATGAGCCAAGCTGGTTAAGCT Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) • Protocolo descrito por Paton et al; 1998 Termociclador Veriti Cabina de Flujo Laminar Resultados Criterio de identificación de cepas de E. coli por prueba bioquímica Prueba Bioquímica Numero de Colonias KLIGLER 102 + + 5 + + 3 Total 110 LIA CITRATO SIM UREA Resultado - + - E.coli + + + - Enterobacter spp + + + + Otra enterobacteria Electroforesis gen eae gen stx2 gen stx1 (1) Ladder; (2) Control positivo O157H7;(3) Control Negativo E. coli ETEC; (4) Blanco; (5 y 7 – 11) Muestras positivas al gen eae; (6) Muestra positiva a los genes stx1 y stx2. Grupos diarrogénicos de E. coli encontrados en las muestras positivas a los genes eae y stx Código de muestra Resultado Grupo/gen N1 + EPEC/eae N66 + EPEC/eae N67 + EPEC/eae N68 + EPEC/eae N69 + EPEC/eae N70 + N14 + EPEC/eae STEC/Stx1 y Stx2 Porcentaje 5.88% 0.98% En un estudio de Lima: 113 cepas de EPEC aisladas de niños y diagnosticadas por serología, 15 cepas (13,3%) con gen eae; tres cepas ETEC, tres cepas STEC, una cepa EAEC y una cepa EIEC (Ochoa et al., 2010). Contaminación del medio ambiente, aguas servidas absorción de E. coli por animales ciclo epidemiológico de cepas potencialmente diarrogénicas problema de salud pública. Universidad Peruana Cayetano Heredia Facultad de Veterinaria y Zootecnia Tesis para optar el Título Profesional de Médico Veterinario Zootecnista Mirtha Isabel Rivera Acha Bachiller en Medicina Veterinaria y Zootecnia Campylobacter ha sido aislado en Lima en infantes con diarrea aguda Presencia de C. jejuni en palomas de nuestro medi0 OBJETIVO Detectar la presencia de cepas de Campylobacter jejuni en heces de palomas Columba livia del distrito de Pueblo Libre, a través del aislamiento microbiológico y confirmación mediante la técnica de PCR. MATERIALES Y MÉTODOS Unidad de muestreo: heces frescas de paloma (Columba livia). LUGAR DE ESTUDIO Parques del distrito de Pueblo Libre en base a 8 zonas. Secuencias de primers utilizados para la detección de genes de Campylobacter jejuni. Secuencia (5’- 3’) TGACGCTAGTGTTGTAGGAG CCATCATCGCTAAGTGCAAC Tamaño a generar (bp) 402 RESULTADOS Cuadro 1.- Cantidad de colonias aisladas en cada pool positivo a Campyobacter spp. según muestreo en los parques de Pueblo Libre Pool de heces frescas ZONAS Zona 6 Muestreados Positivos N° Colonias encontradas 3 de Octubre 4 1 3 De la Puente Cortez 4 2 4 Paseo Libertad 4 2 9 88 5 16 PARQUES Zona 8 TOTAL Electroforesis de los genes patogénicos encontrados en las cepas aisladas 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 12 13 14 15 16 17 18 19 20 11 Figura 1. Resultados de la electroforesis en gel de agarosa. (1) Ladder 100 bp; (2) Blanco; (3) Control Negativo E. coli ATCC 25922; (4) Control Positivo Campylobacter jejuni; (5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20) Muestras Positivas a Campylobacter jejuni