Download Técnicas reproductivas en las Enfermedades Hereditarias
Document related concepts
Transcript
3r curso de actualización en habilidades médicas y de enfermería Dra. Noemí Galindo IVI-Alicante Noemi.Galindo@ivi.es www.ivi.es PÁG.1 TÉCNICAS REPRODUCTIVAS EN LAS ENFERMEDADES HEREDITARIAS Alcoi, 8 de Marzo 2012 Introducción Óvulo Espermatozoide 23 cromX 46 XX PÁG.2 23 cromX 46 XY Incidencia Anomalías cromosómicas: 0,4-0,6 % Alteraciones génicas : 1-2 % Herencia recesiva 25 % Herencia dominante PÁG.3 50 % Opciones Diagnóstico prenatal – aborto terapéutico Donación de gametos Donación de embriones Adopción DIAGNÓSTICO GENÉTICO PREIMPLANTACIONAL PÁG.4 DIAGNÓSTICO PREIMPLANTACIONAL Procedimientos 1. Selección Selección de pacientes 2. Estimulación-ICSI-cultivo Estimulación-ICSI-cultivo 3. Biopsia y fijación fijación 4. Análisis Análisis Genético Genético 5. Transferencia PÁG.5 DGP: Selección de pacientes Ley 14/2006, 26 de mayo, sobre Técnicas de Reproducción Humana Asistida. Artículo 12. Diagnóstico preimplantacional. Los centros debidamente autorizados podrán practicar DPI para: a) Detección de enfermedades hereditarias graves, de aparición precoz, y no susceptibles de tratamiento curativo posnatal con arreglo a los conocimientos científicos actuales b) La detección de otras alteraciones que puedan comprometer la viabilidad del preembrión. Otra finalidad no comprendida o determinación de los Antígenos de histocompatibilidad con fines terapéuticos para terceros requerirán autorización expresa. PÁG.6 DGP: Selección de pacientes DIAGNÓSTICO GENÉTICO PREIMPLANTACIONAL Cariotipos anormales (PGD) • Alteraciones estructurales: - Traslocaciones robertsonianas - Traslocaciones recíprocas - Inversiones • Alteraciones numéricas: - varón: 47, XYY; 47, XXY - mosaicismos:45,X/46,XX/47,XXX Enfermedades monogénicas PÁG.7 DGP: Selección de pacientes ENFERMEDADES MONOGÉNICAS Enfermedades Autosómicas Recesivas • • • • • • • • • • • • • • • • • • Atrofia Muscular Espinal Fibrosis Quística β-Talasemia Defecto de la Glicosilación (CDG1A) Sordera congénita neurosensorial no sindrómica Poliquistosis renal (ARPKD) Leucodistrofia metacromática Deficit 21-Hidroxilasa Enfermedad Gaucher Tirosinemia tipo 1 Linfohistiocitosis familiar Acidemia propiónica A Acidemia propiónica B Mucopolisacaridosis IIIA (SanFilippo A) Displasia hidrótica ectodérmica, Síndrome de Clouston Déficit L-CHAD Osteopetrosis, Inmunodeficiencia combinada severa, alinfocítica Enfermedades Autosómicas Dominantes • • • • • • • • • • • • • • • • Distrofia Miotónica, Steinert Huntington Poliquistosis Renal, AD. Ligada a PKD1 Neurofibromatosis tipo 1 Charcot-Marie-Tooth 1A Ataxia Espinocerebelar, SCA1, SCA3 Esclerosis tuberosa tipo 1 Exostosis múltiple hereditaria Neoplasia Múltiple Endocrina 2A Cáncer colon hereditario, no polipósico (S. Lynch) Poliposis adenomatosa familiar Esclerosis tuberosa tipo 2 Síndrome Von Hippel Lindau Paraparesia espástica familiar Poliquistosis Renal, AD. Ligada a PKD2 Retinosis Pigmentaria Enfermedades con herencia ligada al cromosoma X PÁG.8 •Síndrome de X frágil •Hemofilia A •Distrofia Muscular Duchenne/Becker •S. Alport •Incontinencia Pigmenti •Déficit Ornitin Transcarbamilasa •Enfermedad de Norrie •Mucopolisacaridosis II •Mucopolisacaridosis IIIA DGP: Selección de pacientes Selección de embriones euploides: -Mejorar la implantación -Disminuir la tasa de aborto -Reducir el riesgo de cromosomopatías SCREENING GENÉTICO PREIMPLANTACIONAL de Aneuploidías (PGS) Parejas mal pronóstico reproductivo • Edad materna avanzada (≥ ≥ 41 a) • Fallo de implantación • Abortos recurrentes • FISH espermatozoides anormal PÁG.9 DGP: Selección de pacientes ¿QUÉ CROMOSOMAS analizamos????? Monosomía X Trisomía autosómicas Trisomía 13 Trisomía 15 Trisomía 16 Trisomía 18 Trisomía 21 Trisomía 22 Trisomías sexuales Poliploidía Anomalías estructurales 8,6 26,1 1,1 1,7 7,5 1,1 2,3 2,7 0,3 9,8 2,0 13,15,16,17,18, 21,22,X,Y PÁG.10 Datos de Hassold et al, 1996 (n=4088) SGP: Selección de pacientes Estudio randomizado IVI: EDAD MATERNA AVANZADA Criterios de inclusió inclusión: aná análisis retrospectivo para seleccionar rango edad DGP: Selección de pacientes O N G O I N G 41- 44 años Edad PÁG.11 SGP: Selección de pacientes Fallo repetido de implantación ≥ 3 fallos FIV/ICSI, <40 años, ≥6 MII Estudio previo de infertilidad: • Ecografia vaginal (histeroscopia si es necesario) • Cariotipos de la pareja • Estudio de trombofilias: anticuerpos anticardiolipina y lupus anticoagulante; Antitrombina III; APCR (si positiva, mutación del factor V de Leiden); niveles de proteina C y S; Homocisteina sérica y screening de mutaciones MTHFR y factor II. PÁG.12 SGP: Selección de pacientes ABORTO DE REPETICIÓN Aborto de repetición: estudio retrospectivo Improved results in RM patients: - < 5 abortos previos - Gestación previa anormal - Aumento de anomalías cromosómicas masculinas Gestación/transfer Tasa de implantación Tasa de aborto Resultados en AR < 38 años: - 57% embriones anormales - 53,1% gestación evolutiva/transfer - 13,0% aborto 2 abortos 3 abortos n=105 n=76 PÁG.13 4 abortos n=56 > 5 abortos n=16 - 44,1 gestación evolutiva/ciclo SGP: Selección de pacientes PARÁMETROS PAR METROS SEMINALES ALTERADOS Oligozoospermia severa < 5 mill espermatozoides/ml Teratozoospermia severa disomía disomía para para cromosomas cromosomas sexuales sexuales disomía disomía 21 21 diploidía diploidía yy poliploidía poliploidía (Moosani, 1995; In’t Veld, 1997; Rubio, 2001; Bernardini, 1998; Pang, 1999; Pfeffer, 1999; Bernardini, 2000; Vegetti, 2000; Ushijima, 2000; Nishikawa, 2000; Calogero, 2001; Devillard, 2002 ; Martin, 2003; Mateu, 2006) PÁG.14 SGP: Selección de pacientes FACTOR MASCULINO •Azoospermia no obstructiva •Teratozoospermia severa •Oligozoospermia severa (<5 mill/ML) % FISH anormal 60 50 40 30 20 10 0 ≤4 PÁG.15 >4-<10 ≤10-<20 ≥20 Rodrigo et al., 2009 Diagnóstico preimplantatorio Conlleva un tratamiento de Fecundación “in vitro”, en el que se obtienen varios embriones para su análisis. Ventaja: se trata de parejas infértiles PÁG.16 Cronología Consejo genético 2.- Estimulación ovárica-ICSI-cultivo 3.- Micromanipulación embrionaria 4.- Análisis genético 5.- Transferencia embrionaria PÁG.17 Estimulación ovárica Protocolos con análogos de la GnRH PÁG.18 Punción folicular transvaginal Obtención de ovocitos: punción Quirófano Laboratorio de FIV PÁG.19 +/- vitrificación de ovocitos D5: Transferencia embriones sanos D3: Diagnóstico genético Tasa fecundación ICSI Ovocitos MII Ovocitos punción Estimulación ovárica PÁG.20 Inyección intracitoplasmática de espermatozoides PÁG.21 Es la fecundación del ovocito mediante la introducción de un espermatozoide con la ayuda de una micropipeta” DGP: implicación clínica NO Desarrollo embrionario selecciona anomalías cromosómicas Magli MC et al (2000), Sandalinas M et al (2001), Ziebe S et al (2003), Munné S (2004), Rubio C (2007) PÁG.22 FISH de espermatozoides Información genética Información genética de la célula embrionaria Polar Body biopsy DayDay-0 PÁG.23 DayDay-1 Cleavage stage biopsy DayDay-3 Blastocyst biopsy DayDay-5 DGP: biopsia de blastómera y fijación Rotura de la zona pelúcida Aspiración de las blastómeras PÁG.24 Fijación de las blastómeras jcmr2 DGP: análisis genético PCR: reacción en cadena de la polimerasa FISH: hibridación “in situ” fluorescente: 9 cromosomas. PÁG.25 Diapositiva 25 jcmr2 Independientemente de las muestras con las que estemos trabajando, ¿qué nivel de análisis abarcamos? Julio Martín ; 05/05/2002 DGP: análisis genético: PCR PCR: Mutaciones génicas Fibrosis quística DistrofiaTest muscular de Duchenne informatividad previo: mutaciones Síndrome •de Marfan •marcadores Distrofia miot ónica genéticos Retinitis pigmentosa Síndrome del X-frágil Corea de Huntington ß - Talasemia ... PÁG.26 DGP: análisis genético: PCR Lisis celular de membrana plasmática y nuclear liberación ADN amplificación por PCR y detección por fluorescencia Primers secuencia de ADN a amplificar PCR FLUORESCENTE + TERMOCICLADOR 94ºC- 1’ 40-60º C (72ºC-1’) ELECTROFORESIS Síntesis de ADN Elongación de cadenas PÁG.27 Descondensación y adhesión de primers DGP: análisis genético: FISH FISH: hibridación “in situ” por fluorescencia Alteraciones cromosómicas -Estructurales: translocaciones - Sondas específicas -Numéricas. - 9 cromosomas PÁG.28 Síndrome de Down, Klinefelter XXY síndrome XYY, síndrome de Turner (XO), edad avanzada, aborto de repetición DGP: análisis genético: FISH Sondas marcadas con fluorescencia con afinidad por los cromosomas que queramos estudiar ¿Qué CROMOSOMAS? 13,15,16,17,18, 21,22,X,Y Jobanputra et al, 2002: el FISH para los cromosomas 13, 15, 16, 18, 21, 22, X, Y permitiría detectar el 83% de anomalías citogenéticas en abortos PÁG.29 DGP: análisis genético: FISH FISH. Hibridación “in situ” con fluorescencia sonda ADN secuencia cromosómica Renaturalización Descondensación Desnaturalización PÁG.30 DGP: análisis genético: FISH XY PÁG.31 XXY XXXX DGP: análisis genético: Arrays Normal (XY) Arrays de CGH (Hibridación Genómica Comparada) Anomalías numéricas de todos los cromosomas 24 cromosomas ¡¡Aumento nivel de detección!! 15 % en >40 años >20-25% en AR y FI En ≤40 años, si existe factor masculino severo adicional a FI o AR: 44,4% embriones NO detectables con FISH Aumento tasa de embarazo e implantación PÁG.32 DGP: análisis genético: Arrays CGH arrays Amplificación genómica Muestra ADN control completa Marcaje Cy3 Cy5 Purificación y combinación Hibridación sobre el array Lectura e interpretación Cy3 + Cy5 Hibridación sobre plataformas con secuencias de ADN específicas de regiones concretas de cr. humanos 24 cromosomas de resultados: software PÁG.33 BlueGnome Ltd., Cambridge, UK DGP: análisis genético: Arrays Normal (XY) Aneuploide: -19, -21 (XY) PÁG.34 DGP: análisis genético: Arrays Embrión caótico PÁG.35 FIV/ICSI: Transferencia embrionaria • Selección embriones: ¿1 ó 2? SET – Genética – Viabilidad • Vitrificación sobrantes PÁG.36 ASPECTOS MÉDICOS DE LA ESTERILIDAD FEMENINA Gracias por su atención Centro IVI Dirección – Código Postal población Tel. 000 11 22 33 – Fax. 000 11 22 33 ivicentro@ivi.es PÁG.37