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FECUNDACIÓN
EN PECES
Blga. Acui. Carmen Yzásiga Barrera
Blga. Pesq. Eliana Zelada Mazmela
FECUNDACIÓN
Fenómeno por el cual se fusionan gametos femeninos y
masculinos  Cigoto
TIPOS
a) Externa:
- Ambos progenitores lejos. E.g.: trucha
- se acercan en un verdadero apareamiento
b) Interna: - Presencia de espermateca, falso pene,
gonopodio
-
En el interior de la hembra
-
La fecundación = asociación gamética
interna
Eventos:
Ova cae al agua  adquiere forma, agua entra memb. del
huevo y la masa central
Espermatozoide penetra por MICROPILO.
Formación del espacio perivitelino (exocitosis de alveolos
corticales desde el micropilo hasta la zona vegetativa)
M. Vitelina se hace impermeable  reacción cortical
Micrópilo se cierra y se eleva
•Sellado por sust. de la ves. de vitelo 
• Hinchamiento egg.
Tapón
micropilar
Las vesículas de vitelo endurecen más la m. vitelina memb.
de fertilización
1 – 2´externa
Huevo turgente y duro al tacto
V. vitelo también endurecen al corión 30´interna
Antes de la fecundación :
• Corión con agujeros
•Corión con filamentos enrollados.
(desenrollamiento de los filamentos es
indicador de la activación del huevo).
Depende de Sp
Fertilización: Cuando ambos pronúcleos se fusionan,
los cromosomas se juntan  amfinexis y se inicia
proceso de desarrollo embrionario
MICROPILO:
•Abertura en la zona radiata
Abertura recta como un embudo
Canal micropilar
Un hoyo con un canal micropilar
TIPOS DE OVAS:
a) Libres
-
Sobrenadantes p.e.< H2O
-
Flotantes
p.e. Lig > H2O
-
Semiflotantes
en la columna de H2O
-
Rodantes
p.e.> H2O
No pegajosos
Pegajosos temporalmente
Peso especifico depende de: volumen del espacio
perivitelino y peso de la masa central
Pesada: sin gotas
de grasa
Ligera: con gotas de
grasa
Sobrenadante
Semiflotante
Flotante
Rodante
b) Adherentes:
La membrana presenta una capa adhesiva que se activa al
contacto con el agua:
-
a objetos
entre sí :
- Adhesividad  con So/oo y tiempo
-Atherinidae: al pasar por el tracto genital sufren una
descomposición
y
desenrollan
sus
filamentos
SEGÚN VITELO: cantidad y distribución
En líneas generales el huevo puede variar de tamaño
La reducción de ova no a expensas de vitelo:
Dimensiones de la masa central
Espesor de la membrana
Espacio perivitelino
Huevo mesolecito: mediano, con cierta cantidad de
vitelo depositado en el hemisferio posterior
Telolecito: mayoría, también en condrictios como
tiburón. Mayor tamaño, vitelo representa mayor volumen
En teleósteos actuales, huevos pequeños
Espermatozoide:
Sin acrosoma.
No tiene motilidad hasta que entra en contacto con H2O 
“activación”
pH . P.o. Contenido iónico
- Arenque del Pacífico: 4 – 5 d.
- H2O dulce no más de 2 – 3´
- Carpa común:> motilidad 30 – 60” desaparece luego de los
5´
- Motilidad no es garantía absoluta de fertilidad pero los
que la han perdido ya no pueden fecundar
Distancia recorrida:
Turbot: 12mm; carpa: 4,8mm; trucha: 3mm
Modelo de frec. golpeo  refleja su cap. para fecundar
turbot: 40/seg
Atractante químico
Poder de fecundación:
Duración e intensidad golpeo
Densidad de esp. emitidos
MANIPULACIÓN DEL ESPERMA
• Machos poco considerados en reproducción inducida
• Suspensión de espermatozoides en líquido seminal que
resulta de la hidratación de testículos. Permanece inactivo
dentro de pez. Se activa en H2O, motilidad frenética y de
corta duración  1´
Tiempo motilidad  caract. Diluyente: * osmolaridad
* comp. iónica
Grado de dilución con diluyente y composición.
Determina la presencia o no de activación y el tiempo
de motilidad
Manipulación:
A) Aumento de volumen: Facilita utilización cuando hay poco.
usar diluyentes que no activen  usar semen después
Ssf: 0,7 – 1,0% NaCl activan pero prolongan
[espermat.]  106 – 109/ml  diluir 10 veces
Sp
grado de mad.
B) Prolongación de motilidad
Incrementar 20 – 60 veces mejorando la tasa de
fertilización
Son  para H2O dulce y salada
También para evitar aglutinación
Sol. Carbomida: 3% NaCl + 4% úrea
C) Conservación a corto plazo
• No diluido a T° amb: 0,5 – 1,5h
• No diluido a 4°C : 3h – 3d
• Con antibiótico a 4°C: 3 – 12d
• Con diluyente (D) energético, c/antibióticos a 4°C: hasta
30d (D:e =1:1)
D: 5 ml yema
•No debe estar activado
5ml citrato de Na 3,1%
80 ul(50mg/l de sulfato de gentamicina)
55mg de piruvato de Na
Especie
Carpa
Trucha
Salmón
Mugilidos
Rodaballo
N° espermatozoide/ml
25
10
12
50
4
–
–
–
–
–
30000 millones
25000 millones
30000 millones
60000 millones
8000 millones
Valoración espermática
a) Motilidad: Indicador de eficiencia. Al microscopio con
diluyente
(D:E) = 4:1 5” 
Índice de la eficiencia del esper
Tipo diluyente y grado de dilución > 4:1
No usar laminillas. Porque ocasiona asfixia
Se anota como una estimación %. Desechar movimientos
previos
b) Coloración diferencial: diferenciar espermatozoides vivos
de muertos. Láminas preparadas. Indica viabilidad
c) [esperma]:
* Conteo
* Neubauer
* Espermatocrito: centrífuga
* espectofotómetro: 420nm
Raramente es problema
espermática
para
la
valoración
d) Fertilización:
Medida más cierta es la tasa de fertilización
PROCESO ARTIFICIAL
Fecundación:
a) En seco:
b) En húmedo:
c) Sol. Salina:
Sol. Carbomida: NaCl 0,4% + úrea 0,3% (10 – 20 % vol
huevos)
Requerimientos esperma: calidad de huevos
Turbot: 1500 huevos
gupi :50000 – 10000
Trucha: 20000 – 30000
catfish: 40000
Carpa: 13000 – 300000
Lucio: 26000 - 700000
Fecundación artificial
Calidad del H2O: manantial
T° : 25°C
Conductividad 40 umhos.cm
O2: 6 ppm
CO2 L : debe ser 0,0; pero H2O manantial tiene 12 ppm ¡cuidado!
NH3: 0,35 ppm
DoMg: 1,00
DoCa: 19,00
pH: 5,6 ¡cuidado! Niveles menores de 5,5 presentan [CO2]
que se adhieren al huevo como burbujas
>O2 al inicio de incubación,
peces
Colossoma requiere más que otros
(°C)
Óvulos fec.
Larvas recien
nacidas
Larva antes de tomar
aire
28
25
20
117
103
80
144
116
83
309
241
171
Demanda de O2 en mg/100000 larvas
•10000 huevos 2500 mg O2 rep durante desarrollo que dura 50 h

•100000 huevos gamitana 2500 mg 12 – 14 h
Insuficiente 4 mg/L [ ] influye en la velocidad de difusión. Causa
deformaciones (10-35%) y eclosión prematura
T°: >res de 31°C fatal para mayoría
Incubadoras
-Aguas frías
-Aguas calientes
Flujo: 0,6 – 0,1L/seg en incubadoras de 60 L
2L/min. Brasil 600 ml de ovas
Carga: 30 – 50g ovas (30000 – 50000)
CRITERIOS DE UNA BUENA INCUBACIÓN
 Incubadora de material neutral
 Flujo corriente H2O. Ingreso con tubo angular
 Retiro continuo de CO4 NH3
 Movimiento suave de H2O
 Desborde de H2O con filtro
EMBRIOGÉNESIS
EN PECES
EMBRIOGENESIS
Crecimiento hacia espacio
perivitelino
A) Segmentación o clivaje: División  blastómeros  cigoto
se convierte en un embrión multicelular  blástula
Segmentación meroblástica
Disco de unas células de espesor (hoja plana)
(la polaridad está relacionada con los ejes del futuro cuerpo)
• La segmentación se inicia con la división del núcleo luego la
del citoplasma.
• Contracciones oscilatorias causan migración del citoplasma
cortical periférico hacia el polo animal, donde se forma el
blastodisco.
• Dos pequeñas marcas en el blastodisco sirven para
identificar la localización del surco de segmentación.
• El plano de esta primera división es generalmente vertical.
La célula se divide en dos células hijas. (blastómeros).
• Las gotas de aceite migran hacia el polo vegetativo y
coalescen aumentando de tamaño.
• La segunda división es vertical y atraviesa al eje principal
formando ángulos rectos con el primer plano de
segmentación.
• El plano de la tercera división forma ángulos rectos con los
dos primeros planos y el eje principal del huevo
•De los ocho blastómeros, cuatro se sitúan encima de los
otros cuatro, igualmente superpuestos.
•Los cuatro primeros blastómeros incluyendo el hemisferio
animal del huevo y los restantes en el hemisferio vegetativo.
•El plano de la cuarta división celular es paralelo al de la
segunda división y divide las dos filas de blastómeros en
cuatro blastómeros cada una, formándose 16 blastómeros.
La quinta división celular da origen a 32 blastómeros.
•
Células en contacto con vitelo  región vegetal
La segmentación origina:
a) Blastódérmicas: son diferentes.
b) Periblásticas: entre vitelo y blastodérmis cubriendo la
masa vitelina. Se origina de los blastómeros exteriores y
más marginales. Se vuelven sincitiales y son
responsables de la movilización del vitelo.
Cav. Segmentación: o blastocele, está entre el
blastodermo exterior y el periblasto.
•
Áreas pre – destinadas: tracto digestivo, notocorda,
células neurales y epidérmicas, la región del mesodermo
potencial.
Blastula – Gastrula
-No es típica
-El embrión se transforma en un estadío con 2 capas
•Exterior o epiblasto  ectodermo
•Interior o hipoblasto  mesodermo – endodermo
-Se establece eje antero – posterior, la gástrula se alarga y
las zonas formadoras de órganos se extienden
-Borde inferior de blastodisco se engruesa  borde
Engrosamiento en el borde int.
germinal, se le agrega el anillo germinal (capa interna
células)
Más grueso en la parte caudal
 escudo embrionario
• Se abre el blastoporo
•Las células endodérmicas del escudo pasa por debajo del
blastodermo  región endodérmica del hipoblasto
•Células de la placa precordal y de la notocorda establecen
eje embrionario.
•Células mesodérmicas potenciales, se acomodan por si solas
al lado del eje por debajo del ectodermo  región
mesodérmica del hipoblasto
•Ocurre una proliferación y laminación de los componentes
ectodérmicos y mesodérmicos se organizan para formar
primordios de los sist. orgánicos internos.
Células del anillo germinal y ectodérmicos que no
participan en la involución, crecen cubriendo por completo
la masa vitelo  epiblasto  el periblasto y epiblasto al
cubrir el vitelo forman el saco vitelino.
la presunta placa neural, precursora de SNC se transforma en
cresta cubierta por epidermis Se hace tubular  TUBO NEURAL
Gastrulación termina:
•Masa y células vitelo se ha desarrollado
•Mesodermo se organiza en SOMITES
Se distinguen embrión de saco vitelino
Período de segmentación y de faringulación
El período de faringulación, embrión presenta morfología
con simetría bilateral, se ve alargado, la cola se distingue
claramente y crece.
Período de eclosión
El embrión comienza el movimiento fuerte y avanza en
forma rectilínea, para alcanzar la eclosión.
Desarrollo embrionario de Xenomelaniris brasiliensis. A) Quinta
división celular, B) Mórula, C) Blástula, D) Gástrula, E) Néurula
temprana.
F) Formación del escudo embrionario, G) Néurula con vesícula
de Kupffer, H) esbozos primarios del corazón y los ojos.
ORGANOGÉNESIS
hasta
Prosigue a la gastrulación con la formación de órganos 
cuerpo forma primitiva
Se proyecta
- Región cefalo – faringe  cola 
Aparecen 5 tubos formadores:
1) Mesodermo
1 tubo
a) Epímero: al lado de notocardo y tubo neural
segmentado en bloques de tejido SOMITES c/somite
considera:
- esclerótomo  columna
- miótomo músculo, esq. apendicular, apéndices y
sist. Muscular
- dermátomo piel ( dermis y escamas)
mesodermo
b)
Mesómero: Ubicado lateralmente,
anterior. Est. genitales, conductos.
segmentado
c) Hipómero: No segmentado, pero se divide durante
desarrollo de celoma:
- Capa somática. Alinea pared del cuerpo
- Capa media espácnica: corazón, Sistema digestivo,
Sist. Respiratorio,
2) Ectodermo: cerebro, médula, parte superficial – piel,
capa exterior de dientes, epitelio y nervio olfatorio,
cristalino y oído interno.
3) T. Neural: origen mesodérmico. Algunas partes del ojo
(retina y nervio óptico), melanóforos. Ganglios del SN,
cerebro y médula
4) Endodermis o endodérmico: parte de tejido hepático y
pancreático, int. delgado y epitelio, cél. sex
primordiales, tiroides, glándulas
Períodos del Desarrollo embrionario
A) Embrionarios iniciales
fertilización  sist. Org. Generalizados. Ova embrionada
B) Embrionarios o larvales transicionales: Forma del cuerpo
recuerda al adulto. Incluye transformacion de órganos que
forman sist. generalizados.
Dos formas de larvas:
a) de vida libre:
b) de vida no libre
Fuera de estructuras protectores
Forma adulto luego de eclosión
Después de varios estadíos: piel, escamas, esq. Axial,
forma aletas dorsal y anal.
dentro del huevo o de la hembra
Pre y post larva
C) Post embrionario: Sist. Rep. Completa desarrollo: juvenil,
adulto, senectud
•Organogénesis puede ocurrir en:
-Agua
(ovíparos)
-Dentro de la madre (ovovivíparos)
-Dentro de la madre (vivíparo) >ría.
Útero
Ovario
folículos
Desarrollo embrionario de Xenomelaniris brasiliensis. A) Esbozos primarios de
lentes ópticos, protocerebro y notocordio, B) Miómeros, C) Embrión de X.
brasiliensis, D) Canales de circulación vitelina
E) Engrosamiento de los canales de circulación, F) Embrión
con ojos pigmentados, G) Detalle de los ojos, H) Larva
recién eclosionada
2 horas
12 horas
9 horas
15 horas
20 horas
1 día larva
2 días larva
4 días larva