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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE AGRONOMÍA
ÁREA INTEGRADA
TRABAJO DE GRADUACIÓN REALIZADO EN LA EMPRESA “PILONES DE ANTIGUA
S.A”, ANTIGUA GUATEMALA CON ÉNFASIS A: EVALUACIÓN DE
CONCENTRACIONES DE AUXINAS PARA LA PROPAGACIÓN VEGETATIVA
COMERCIAL DE 4 ESPECIES FORESTALES: MELINA (Gmelina arborea ),
EUCALIPTO (Eucaliptus urograndis ), PINO(Pinus patula ) Y PINABETE(Abies
guatemalensis ).
JORGE LUIS OVALLE LÓPEZ.
Guatemala, noviembre 2010
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE AGRONOMÍA
ÁREA INTEGRADA
TRABAJO DE GRADUACIÓN REALIZADO EN LA EMPRESA “PILONES DE ANTIGUA
S.A”, ANTIGUA GUATEMALA CON ÉNFASIS A: EVALUACIÓN DE
CONCENTRACIONES DE AUXINAS PARA LA PROPAGACIÓN VEGETATIVA
COMERCIAL DE 4 ESPECIES FORESTALES: MELINA (Gmelina arborea ),
EUCALIPTO (Eucaliptus urograndis ), PINO(Pinus patula ) Y PINABETE(Abies
guatemalensis ).
PRESENTADO A LA HONORABLE JUNTA DIRECTIVA DE LA FACULTAD DE
AGRONOMÍA DE LA UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
POR
JORGE LUIS OVALLE LOPEZ.
EN EL ACTO DE INVESTIDURA COMO
INGENIERO AGRÓNOMO
EN
SISTEMAS DE PRODUCCIÓN AGRÍCOLA
EN EL GRADO ACADÉMICO DE
LICENCIADO
Guatemala, noviembre de 2010
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE AGRONOMÍA
RECTOR MAGNIFICO
LICENCIADO CARLOS ESTUARDO GÁLVEZ BARRIOS
JUNTA DIRECTIVA DE LA FACULTAD DE AGRONOMÍA
DECANO
VOCAL PRIMERO
VOCAL SEGUNDO
VOCAL TERCERO
VOCAL CUARTO
VOCAL QUINTO
SECRETARIO
Ing. Agr. Msc.
Ing. Agr.
Ing. Agr.
Ing. Agr. Msc
P. Forestal
P. Contador
Ing. Agr, Msc.
Francisco Javier Vásquez Vásquez
Waldemar Nufio Reyes
Walter Arnoldo Reyes Sanabria
Oscar René Leiva Ruano
Axel Esaú cuma
Carlos Monterroso Gonzáles
Edwin Enrique Cano Morales
Guatemala, noviembre de 2010
Honorable Junta Directiva
Honorable Tribunal Examinador
Facultad de Agronomía
Universidad de San Carlos de Guatemala
Honorables miembros:
De conformidad con las normas establecidas por la Ley Orgánica de la Universidad
de San Carlos de Guatemala, tengo el honor de someter a vuestra consideración, el
TRABAJO DE GRADUACIÓN REALIZADO EN LA EMPRESA “PILONES DE ANTIGUA
S.A”, ANTIGUA GUATEMALA CON ÉNFASIS A:
EVALUACIÓN DE
CONCENTRACIONES DE AUXINAS PARA LA PROPAGACIÓN VEGETATIVA
COMERCIAL DE 4 ESPECIES FORESTALES: MELINA(Gmelina arborea),
EUCALIPTO(Eucaliptus urograndis), PINO(Pinus patula) Y PINABETE(Abies
guatemalensis), como requisito previo a optar al título de Ingeniero Agrónomo en
Sistemas de Producción Agrícola, en el grado académico de Licenciado.
Esperando que el mismo llene los requisitos necesarios para su aprobación, me es
grato suscribirme,
Atentamente,
“ID Y ENSEÑAD A TODOS”
JORGE LUIS OVALLE LÓPEZ
ACTO QUE DEDICÓ
A:
DIOS:
Que todo sea en Ti, Por Ti y como Tú quieras.
MIS PADRES:
Sandra Elizabeth López De Ovalle, Jorge Luis Ovalle Aguirre.
Todo lo que soy, se los debo. Atribuyo todos mis éxitos en esta
vida a la enseñanza moral, intelectual y física que he recibido de
ustedes.
MIS ABUELOS:
Hilda Ester Aguirre De Ovalle (+), Jorge Luis Ovalle Recinos (+).
En mi corazón y en mi mente siempre, gracias por enseñarme
todo, yo se que allá arriba están contentos.
MIS HERMANOS:
Ligia Susseth Ovalle López, Jorge Alejandro Ovalle López, Jullissa
Carini Carrillo Ovalle, Janitsa Carlovi Carrillo. Estoy orgulloso de
ustedes, gracias por ser mi inspiración, por ser mis compañeros,
por ayudarme a perseverar.
MI SOBRINO:
Luis Ángel Ovalle López. Gracias por ser una luz en mi vida.
MIS TÍOS:
Julio cesar Carrillo Ortiz (+), María Felisa Ovalle viuda de Carrillo,
Walter Alfonso Ovalle Aguirre, Leticia Ovalle, Francisco Morales.
Gracias por ser como unos padres, por su ayuda y apoyo
incondicional.
MIS AMIGOS:
Pablo José Méndez Ortega (+). A todos los que han estado
siempre conmigo. Al final, no nos acordaremos tanto de las
palabras de nuestros enemigos, sino de los silencios de nuestros
amigos.
MI PAÍS:
Guatemala. Con respeto y admiración.
TRABAJO DE GRADUACIÓN QUE DEDICÓ
A:
DIOS.
MI FAMILIA.
MIS CENTROS DE ESTUDIOS:
COLEGIO BROOKLYN SCHOOL.
COLEGIO MIXTO SANTIAGO DE LOS CABALLEROS.
COLEGIO “LA SALLE”.
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE AGRONOMÍA
A TODAS LAS PERSONAS QUE CONTRIBUYERON A MI FORMACIÓN.
AGRADECIMIENTOS
A:
DIOS:
Por darme sabiduría y guiarme en todo momento.
MI ABUELITA:
Hilda Ester Aguirre De Ovalle (+). Tus brazos siempre se abrían
cuando quería un abrazo. Tu corazón comprendía cuando
necesitaba una amiga. Tus ojos tiernos se endurecían cuando me
hacía falta una lección. Tu fuerza y tu amor me guiaron, y me dieron
alas para volar. En mi corazón y mente siempre estarás.
MIS PADRES:
Sandra Elisabeth López de Ovalle, Jorge Luis Ovalle Aguirre. Lo
logramos, gracias por sus consejos y su anhelo de sacarme
adelante, gracias por su apoyo incondicional, como una pequeña
recompensa.
MIS HERMANOS:
Ligia Ovalle, Jorge Alejandro Ovalle, Jullissa Carrillo Ovalle, Carlovi
Carrillo Ovalle. Gracias por sus consejos, apoyo y compañía en
todo momento.
MIS TIA:
María Felisa Ovalle, gracias por ser como mi madre, ¿cómo te puedo
pagar, todo lo que haces por mí? solamente con mi vida.
MIS AMIGOS:
Gracias por todo el tiempo que pasamos juntos, por los buenos y
grandes momentos siempre los recordare.
MI SUPERVISOR:
Ing. Agr. Fredy Hernández Ola. Gracias por el apoyo incondicional.
MIS ASESORES:
Ing. Agr. Domingo Amador (+). Ing. Agr. Guillermo García. Gracias
por su apoyo y su tiempo.
AL PERSONAL TECNICO Y ADMINISTRATIVO DE LA EMPRESA “PILONES DE
ANTIGUA S.A”, EN ESPECIAL A:
Ing. Richard Rotter, Ing. Luis Guzmán, Ing. Marvin Escobar, Ing. Ángel Ibarra, Ing. Luis
Rodríguez, Licda. Nancy de Mendoza, Dr. Luis Mejía, Ing. Rudy Teni, P.Agr. Fidelino
Azurdia, Carlos Salazar, Oscar López, Carol Pellecer, Julio Zuleta, William Garcia, Marta
Leticia Santos, Lidia Acual, Cecilio Coc, Mario Segura, Antonio Pamal, Oliverto Ordoñez,
Mauricio Zul, Carlos Borrayo.
Por la muestra de compañerismo, cooperación y apoyo a la realización del presente.
i
ÍNDICE GENERAL
CONTENIDO
PÁGINA
ÍNDICE GENERAL.……………………………………………………...……………………..……i
ÍNDICE DE CUADROS…………………………………………………………………………….v
ÍNDICE DE FIGURAS..…………………………………………………………………………….vi
RESUMEN GENERAL…...……………………………………………………………..………...vii
CAPÍTULO I: DIAGNÓSTICO DEL AREA DE PROPAGACIÓN DE PLANTAS DE LA
EMPRESA "PILONES DE ANTIGUA S,A……………...............……..……………..….…......1
1.1 PRESENTACIÓN…………………………………………..…………………….…………….2
1.2 MARCO REFERENCIAL……………………………………………………....………………3
1.2.1 Generalidades del área biofísicas……………………………………………………..3
1.2.2 Especies a trabajar…………………………………………………………………….. …...4
1.3 OBJETIVOS…………..…………………………………………………………….…………..4
1.3.1 Objetivo general………………………………………………………………………...4
1.3.2 Objetivo específicos…………………………………………………………………….4
1.4 METODOLOGÍA………………………………………………………………………………..5
1.4.1 Determinación de la situacion actual del proceso de
propagacion de plantas………………………………………………………………...5
1.4.2 Determinación de las diferentes metodologías utilizadas para la propagación
de plantas…….………………………………………………………………………….5
1.4.3 Establecimiento de las principales limitantes para el proceso de propagación
de plantas..….………………………………………………………………………….5
1.5 RESULTADOS………………………………………………………………………………….6
1.5.1 Determinación de la situación actual del proceso de propagación de
plantas…………………………………………………………………………………….6
1.5.2 Metodologías utilizadas para la propagación vegetativa de plantas.……………...8
1.5.3 Principales limitantes para el proceso de propagación de plantas………………...8
1.6 CONCLUSIONES …………………………….……………………………………………….9
1.7 BIBLIOGRAFÍA.………………………………………………………………………………...9
CAPÍTULO II: EVALUACIÓN DE CONCENTRACIONES DE AUXINAS PARA LA
PROPAGACIÓN VEGETATIVA COMERCIAL DE 4 ESPECIES FORESTALES: MELINA
(Gmelina arborea ), EUCALIPTO (Eucaliptus urograndis ), PINO (Pinus patula ) Y
PINABETE (Abies guatemalensis)..…………………………………………………………..10
2.1 PRESENTACIÓN……………………...…………………………………………….……..11
2.2 MARCO CONCEPTUAL.............................................................................................13
ii
2.2.1 Descripción del material.....................................................................................13
A. Gmelina arborea Roxb...................................................................................13
a. Clasificación taxonómica……………………………………………………..13
b. Descripción botánica……………………………………………………….....14
c. Características y propiedades de la madera………………………………. 16
B. Eucalipto (Eucaliptus urograndis)……………………………………………….16
a. Clasificación taxonómica……………………………………………………..16
b. Descripción botánica…………………………………………………………. 17
c. Características y propiedades de la madera………………………………. 18
C. Pino (Pinus patula)……………………………………………………………… 18
a. Clasificación taxonómica……………………………………………………. 18
b. Descripción botánica………………………………………………………… 18
c. Características y propiedades de la madera………………………………. 19
d.Usos de la madera……………………………………………………………..20
D. Pinabete (Abies guatemalensis Renhder)……………………………………. 20
a. Clasificación taxonómica……………………………………………………. 21
b. Descripción botánica………………………………………………………… 21
c. Características y propiedades de la madera………………………………. 22
2.2.2 Propagación vegetativa…………………………………………………………… 23
A. Propagación por medio de estacas……………………………………………. 23
B. Desarrollo de raíces en estacas de tallos……………………………………... 24
a. Formación de raíces adventicias…………………………………………… 24
b. Formación del callo…………………………………………………………... 25
C. Proceso del enraizamiento……………………………………………………… 25
D. Factores que influyen en el enraizamiento…………………………………… 25
a. Factores endógenos…………………………………………………………. 25
i. Edad de la planta madre y de la estaca…………………………………..25
ii. Nutrición de la planta patrón………………………………………………. 26
iii. Niveles de auxina…………………………………………………………... 26
iv. Posición de la estaca en la planta madre………………………………... 26
v. Cofactores de enraizamiento……………………………………………… 27
b. Factores exógenos…………………………………………………………… 27
i. Condiciones ambientales…………………………………………………. 27
ii. Tratamiento con reguladores de crecimiento…………………………… 28
iii.Sustrato…………………………………………………………….………… 28
2.2.3 Reguladores de crecimiento……………………………………………………… 29
A.Terminos generales……………………………………………………………… 29
a.Auxinas………………………………………………………………………… 29
i. Efectos biológicos de las auxinas………………………………………... 29
ii. Mecanismos de acción de las auxinas…………………………………... 30
B. Utilización de reguladores de crecimiento para estimular el
iii
enraizamiento……..…………………………………………………………….....30
C. Métodos de aplicación de reguladores de crecimiento………………………..30
a.Método espolvoreado…………………………………………………………...30
b. Método de inmersión rápida………………………………………………… .31
2.2.4 Trabajos realizados sobre propagación vegetativa en especies
forestales………………………………………………………………………….…...31
2.3 OBJETIVOS………………………………………………………………………………….34
2.3.1 Objetivo general……………………………………………………………………...34
2.3.2 Objetivo especifico:………………………………………………………………… 34
2.4 HIPOTESIS…………………………………………………………………………………. 34
2.5 METODOLOGIA…………………………………………………………………………… 35
2.5.1 Sitio experimental…………………………………………………………………… 35
2.5.2 Materiales……………………………………………………………………………. 35
2.5.3 Metodologia experimental………………………………………………………….. 35
A. Diseño experimental…………………………………………………………….. 35
B. Tratamientos……………………………………………………………………...36
C. Modelo estadistico……………………………………………………………….. 36
D. Unidad experimental……………………………………………………………. 36
2.5.4. Manejo del experimento…………………………………………………………… 37
A. Desinfeccion de las unidades experimentales……………………………….. 37
B. Sustrato………………………………………………………………...…………. 37
C. Elaboracion de concentraciones………………………………………………. 37
D. Esquejes………………………………………………………………………..… 37
a. Corte…………………………………………………………….………….…...37
b. Desinfección…………………………………………………………………. 38
c. Aplicación de ácido indolbutírico…………………………………………… 38
d. Siembra………………………………………………………………..………. 38
e. Área de enraizamiento………………………………………………………. 38
f. Área de adaptación………………………………………………………….. 39
g. Campo………………………………………………………………………….. 39
E. Riego………………………………………………………………………………. 39
F. Fertilización………………………………………………………………………. 39
2.5.5 Manejo de las plantas madres…………………………………………………… 39
A. Fertilización……………………………………………………………………….. 40
B. Riego………………………………………………………………………………. 41
C. Podas……………………………………………………………………..………. 41
2.5.6 Variables de respuesta…………………………………………………………….. 41
A. Variables cuantitativas…………………………………………………………... 42
a. Longitud de raíces……………………………………………………………. 42
b. Peso seco de las raíces……………………………………………………… 42
2.5.7 Análisis estadistíco…………………………………………………………………. 42
iv
2.5.8 Análisis cualitativo…………………………………………………………………. 42
2.6. RESULTADOS Y DISCUSIÓN…………………………………………………….. 43
2.6.1 Porcentaje de materia seca……………………………………………………….. 43
2.6.2 Longitud de raíces………………………………………………………………….. 44
2.6.3 Porcentaje de enraizamiento…………………………………………………….. 47
2.7 CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES………………………………………….. 49
2.7.1 CONCLUSIONES..…...…………………………………………………………......49
2.7.2 RECOMENDACIONES……………………………………………………………. 50
2.8 BIBLIOGRAFÍA…………………………………………………………………………….. 51
2.9 ANEXO…………………………………………………………………………….……….. 54
CAPÍTULO III: SERVICIOS REALIZADOS EN LA EMPRESA "PILONES DE ANTIGUA
S.A"…………………………………………………………………………………….…………62
3.1 PRESENTACIÓN…………………………………………………………………………...63
3.2 Mantenimiento del área de enraizamiento para la propagación vegetativa………… 64
3.2.1 OBJETIVOS…………………………………………………………………………. 64
3.2.2 METODOLOGÍA……………………………………………………………………. 64
A. Prevención fitosanitaria……….………………………………………...………..64
a. Esterelización………………………………………………………………….. 64
b. Plagas…………………………………….………….…………………………..64
c. Patogenos………………...……………………………………………………..65
B. Riego…………………………………………………………………..………….. 66
a. Nebulizadores…………………………………………………………………. 66
b. Filtro……...………………………………………………………………………67
c. Controladores………………………………………………………………….. 68
C. Temperatura y Humedad relativa……………………………………………….68
a. Temperatura…………………………………………………………………… 68
b. Humedad relativa……………………………………………………………… 68
3.2.3 Evaluación…………………………………………………………………………… 69
v
ÍNDICE DE CUADROS
CUADRO
Cuadro 1.
Cuadro 2.
Cuadro 3.
PÁGINA
Tratamientos del diseño experimental………………………………………... 36
Riego de los esquejes dentro del invernadero………………………………..39
Requerimiento nutricional de las plantas madres
……………………………………………………………………………………..41
Cuadro 4. Riego de las plantas madres por especie……………………………………. 41
Cuadro 5. Resultados del análisis de varianza (ANDEVA) del porcentaje de
materia seca…………………………………………………………………….. 43
Cuadro 6. Resultado de las medias del porcentaje de materia seca………………….. 43
Cuadro 7. Resultados del análisis de varianza (ANDEVA) de las longitudes de
raices de las especies…………………………………………………………. 44
Cuadro 8. Resultados de las medias de las longitudes de raíces de las
especies…………………………………………………………………………..45
Cuadro 9A. Resultados de las longitudes de raíces por tratamiento…………………… 54
Cuadro 10A. Resultados del porcentaje de materia seca…………………………………. 55
Cuadro 11A. Resultados del porcentaje de enraizamiento………………………………. 60
Cuadro 12A. Análisis de varianza porcentaje de materia seca…………………………… 60
Cuadro 13A. Prueba de tukey del análisis de varianza del porcentaje de materia
seca……………………………………………………………………………….60
Cuadro 14A. Análisis de varianza de las longitudes de raíces.…………………………….61
Cuadro 15A. Prueba de tukey del análisis de varianza de la longitud de raíces………... 61
vi
ÍNDICE DE FIGURAS
FIGURA
PÁGINA
Figura 1. Ubicación finca La Azoteita Jocotenango………………………………………… ….3
Figura 2. Área de plantas madres………..………………………. ………………………..…….7
Figura 3. Invernadero de enraizamiento. ………………………………………...……………...7
Figura 4. Tamaño de esquejes en A) Eucalipto (Eucaliptus urograndis)
B) Melina (Gmelina arborea Roxb), C) Pino (Pinus patula),
D) Pinabete (Abies guatemalensis Rehder).……………………..…………………38
Figura 5. Plantas madres de: A) Eucalipto (Eucaliptus urograndis), B) Pino
(pinus patula).…………………………………………………………………………..40
Figura 6. Plantas madres de: A) Pinabete (Abies guatemalensis Rehder), B) Melina
(Gmelina arborea Roxb), ….……………………………………………………………………..40
Figura 7. Longitud de raíces de Eucalipto (Eucaliptus urograndis)………………………. ..46
Figura 8. Longitud de raíces: A) Melina (Gmelina arborea Roxb),
B) Pino (Pinus patula), C) Pinabete (Abies guatemalensis Rehder)…………... ..46
Figura 9. Porcentajes de enraizamiento de cada especie y las diferentes
concentraciones de auxinas ……..………………………………………………….47
Figura 10. Manchas de alga en el área de enraizamiento………..………………………….65
Figura 11. Nebulizadores sucios con algas……..………………………………………...…...67
Figura 12. A) Nebulizador desarmado, B) Nebulizador limpio...........………………….……67
Figura 13. Área de enraizamiento……………..…………….………………………………….69
vii
TRABAJO DE GRADUACIÓN REALIZADO EN LA EMPRESA “PILONES DE ANTIGUA
S.A”, ANTIGUA GUATEMALA CON ÉNFASIS A: EVALUACIÓN DE
CONCENTRACIONES DE AUXINAS PARA LA PROPAGACIÓN VEGETATIVA
COMERCIAL DE 4 ESPECIES FORESTALES: MELINA (Gmelina arborea ),
EUCALIPTO (Eucaliptus urograndis ), PINO(Pinus patula ) Y PINABETE(Abies
guatemalensis ).
RESUMEN
El presente trabajo se realizó en la empresa Pilones de Antigua S.A, la
cual se ubica en la Antigua Guatemala municipio del departamento de Sacatepéquez. Esta
empresa por competir a nivel internacional se han dado cuenta que la propagación
vegetativa es una opción, con muchas ventajas sobre la propagación sexual. A partir del
2,004 Pilones de Antigua S.A. decide investigar
la forma de reproducción vía clonal
(enraizamiento de esquejes) u reproducción vegetativa para las siguientes especies de
forma comercial: melina Gmelina arborea Roxb), eucalipto (Eucaliptus urograndis), pino
(Pinus patula) y pinabete (Abies guatemalensis Rehder).
A través del diagnóstico se determinó que el área de propagación
vegetativa, contaba con algunas limitantes, era necesario desarrollar una metodología que
permitiera obtener un enraizamiento exitoso en las especies a trabajar, el cual podría ser a
través del empleo de auxinas para acelerar e inducir el enraizamiento. Se evidencio la
carencia de una metodología para el mantenimiento del área de enraizamiento, que
permitiera mostrar los factores más importantes para la producción de esquejes.
En la investigación se evaluó el enraizamiento de esquejes de melina, eucalipto,
pino y pinabete utilizando las siguientes concentraciones de auxinas 4,000 ppm, 6,000
ppm y 8,000 ppm de ácido indolbutírico, el resultado fue que las concentraciones de
auxinas utilizadas de ácido indolbutírico no provocó diferencia significativa, sin embargo si
hubo diferencia significativa, en las especies forestales, eucalipto, melina, pino y pinabete.
Las variables de respuestas fueron, el peso seco de las raíces, que se realizó con la
prueba de medias, el eucalipto presentó 4.2 %,
la melina 3.74 %, siendo estos
porcentajes altos en materia seca, el pino presentó 2.08 % y pinabete 1.68% ambos
presentaron porcentaje de materia seca bajos.
viii
Sin embargo las medias de las longitudes de raíces tuvieron diferencia significativa en
función de la especie con la mayor longitud de raíces, se obtuvo en el eucalipto con 12.46
cm, la melina con 8.62 cm, el pino con 3.6 cm y el pinabete 1.18 cm.
Se estableció un procedimiento para la propagación de vegetativa del eucalipto, melina,
pino y pinabete.
A través del primer servicio se describe la metodología del mantenimiento del área
de enraizamiento, que se utiliza en la empresa Pilones de Antigua S.A, es un manual de
procedimientos que describe detalladamente cada uno de los pasos más importantes y de
las condiciones que se deben tener en el invernadero para lograr un enraizamiento
adecuado.
Este documento es producto del programa del ejercicio profesional supervisado
EPSA, ejecutado en el período de febrero a noviembre del 2008, en la empresa “Pilones
de Antigua S.A”.
1
CAPÍTULO I
DIAGNÓSTICO DEL ÁREA DE PROPAGACIÓN VEGETATIVA DE PLANTAS DE LA
EMPRESA “PILONES DE ANTIGUA S,A,” CON ENFASIS A: EVALUACIÓN DE
CONCENTRACIONES DE AUXINAS PARA LA PROPAGACIÓN VEGETATIVA
COMERCIAL DE 4 ESPECIES FORESTALES: MELINA (Gmelina arborea ),
EUCALIPTO (Eucaliptus urograndis ), PINO (Pinus patula ) Y PINABETE (Abies
guatemalensis ).
2
1.1 PRESENTACIÓN
Pilones de Antigua S,A. es una empresa que se dedica a la producción y
comercialización de pilones de varias especies. Esta empresa en su afán por competir a
nivel internacional se ha dado cuenta que la propagación vegetativa es una opción, con
muchas ventajas sobre la propagación sexual, como la propagación de plantas con semilla
con problemas de germinación y la rapidez, facilidad y economía que representa este
método.
A partir del 2,004 Pilones de Antigua S.A. decide investigar la forma de reproducción vía
clonal (enraizamiento de esquejes) u reproducción vegetativa para las siguientes especies
de forma comercial: teca, eucalipto, melina, pino y pinabete.
En este informe se realizó un recorrido por el área de propagación vegetativa con el
encargado, para realizar el diagnostico, donde la principal limitante, es que no existe
ningún tipo de metodología a seguir para el enrizamiento de melina (Gmelina arborea
Roxb), eucalipto (Eucaliptus urograndis), pino (Pinus patula) y Pinabete (Abies
guatemalensis Rehder).
Se ha utilizado diferentes dosis de ácido indolbutírico para el enraizamiento, sin embargo
las dosis utilizadas no han funcionado. Para fines comerciales se debe experimentar con
dosis de ácido indolbutírico que faciliten el enraizamiento de esquejes de la melina,
eucalipto, pino y pinabete y desarrollar una metodología a seguir para la propagación
vegetativa de estas especies.
3
1.2 MARCO REFERENCIAL
1.2.1 Generalidades del área biofísicas
La finca La Azoteita donde opera “Pilones de Antigua S.A”. Se localiza,
Carretera a Jocotenango, en el copante de la Antigua Guatemala, municipio del
departamento de Sacatepéquez, tiene una extensión aproximada de 78 kilómetros
cuadrados, limita al Norte y al Este con San Bartolomé Milpas Altas, al Sur con Santa
María de Jesús, al Oeste con San Antonio Aguas Calientes, Cuidad Vieja y Santa Catarina
Barahona, todos del mismo departamento. Las coordenas geográficas: Latitud Norte:
14°36’57’’, Longitud Oeste 90°38’37’’, elevación 1530.17 msnm.
Tiene una altura de 1530.17 msnm, una temperatura media de 18.4°C, una máxima de
22.7°C y una mínima de 14°C. Su clima puede denominarse que predomina el templado,
la precipitación pluvial oscila entre 1100 a 1349 mm. Como promedio total anual,
pertenece a la zona de vida bosque húmedo subtropical templado (IGN 1976).
La Antigua Guatemala está constituida por rocas sedimentarias del cuaternario, así como
rocas volcánicas terciarias y cuaternarias.
Los suelos se encuentran clasificados en el grupo I, son suelos de las montañas
volcánicas (IGN 1976).
Figura 1. Ubicación finca La Azoteita Jocotenango. Fuente: Pilones de Antigua S.A
4
1.2.2 Especies a trabajar
Pilones de Antigua S.A. tiene como propósito que la reproducción vegetativa de melina
(Gmelina arborea Roxb), Eucalipto (Eucaliptus urograndis), pino (Pinus patula) y Pinabete
(Abies guatemalensis Rehder) se realice de forma comercial, porque es alternativa con
ventajas sobre la reproducción asexual.
1.3 OBJETIVOS
1.3.1 Objetivo general
Elaborar un Diagnóstico del estado actual del Área de Propagación de
plantas de la empresa Pilones de Antigua.
1.3.2 Objetivo específicos
1. Determinar la situación actual del proceso de propagación de plantas.
2. Determinar las diferentes metodologías utilizadas para la propagación de plantas.
3. Establecer las principales limitantes para el proceso de propagación de plantas.
5
1.4 METODOLOGÍA
1.4.1 Determinación de la situación actual del proceso de propagación de
plantas.
Se realizó un recorrido por las instalaciones de la empresa para observar
sus procesos de producción en la propagación de plantas.
Se realizó una entrevista con el encargado del área de propagación
vegetativa, para recabar información sobre los antecedentes del proceso de
propagación de plantas.
1.4.2 Determinación de las diferentes metodologías utilizadas para la
propagación de plantas.
Se realizó una entrevista con el encargado del área de propagación de
plantas para conocer la metodología que se realizaba para la propagación
vegetativa.
1.4.3 Establecimiento de las principales limitantes para el proceso de
propagación de plantas.
Durante el recorrido se observó, el principal factor que limita el proceso de
propagación de plantas.
Análisis de la información obtenida.
Realización de un informe final de diagnóstico del proceso de propagación
vegetativa de plantas.
6
1.5 RESULTADOS
1.5.1 Determinación de la situación actual del proceso de propagación de plantas
Se realizó una entrevista con el encargado de producción, donde se
recabo información que a partir del 2,004 Pilones de Antigua S.A decide investigar la
forma de reproducción vía clonal (enraizamiento de esquejes) u reproducción vegetativa
para las siguientes especies de forma
comercial: melina (Gmelina arborea Roxb),
eucalipto (Eucaliptus urograndis), pino (Pinus patula) y Pinabete (Abies guatemalensis
Rehder). Se empezó a trabajar la reproducción vegetativa de esquejes de teca importadas
de Brasil, lo cual se realizo con un alto porcentaje de enraizamiento.
Luego de forma comercial con esquejes de ciprés romano, teniendo éxito en la
reproducción vegetativa y teniendo un buen porcentaje de enraizamiento. Sin embargo
Pilones de Antigua S.A no contaba con un área para la reproducción vegetativa de
cualquier especie, se decidió adecuar un área húmeda con un sistema de riego nebulizado
dentro de un invernadero.
Cuando se cuenta con esta área de reproducción vegetativa
en el 2007, Pilones de
Antigua S.A. empezó a investigar la reproducción vegetativa de (Gmelina arborea Roxb),
Eucalipto (Eucaliptus urograndis), pino (Pinus patula) y Pinabete (Abies guatemalensis
Rehder), teniendo poco éxito en el enraizamiento de estas especies. Utilizaron varias
dosis de auxinas para promover el enraizamiento y varias metodologías para lograr un
enraizamiento óptimo.
Se realizó un recorrido en donde se observó y conoció los diferentes procesos para
la propagación de plantas. Se observo un área pequeña para la propagación de plantas,
contaban con una cama de madera, donde se encuentran las plantas madres de la melina
(Gmelina arborea Roxb), eucalipto (Eucaliptus urograndis). El
pino (Pinus patula) y
pinabete (Abies guatemalensis Rehder), se encuentran en otra área en donde la
temperatura es más baja y en donde las plantas madres se encuentran en macetas.
7
Cuentan con un invernadero de 5 metros de ancho y 18 metros de largo en donde
se lleva a cabo el enraizamiento, la infraestructura del invernadero es de madera, y tiene
un riego nebulizado que es accionado por un controlador digital, que es programado,
dependiendo de las condiciones climatológicas. A la par de este invernadero se cuenta
con un área en donde se colocan los esquejes enraizados.
Figura 2: Área de plantas madres.
Figura 3: Invernadero de enraizamiento.
8
1.5.2 Metodologías utilizadas para la propagación vegetativa de plantas.
Actualmente la única metodología con la que se han estado trabajando los esquejes de
pino es la siguiente:
1. Se cortan los esquejes de las plantas madres posteriormente, se colocan en papel
de periódico húmedo y se llevan al invernadero de enraizamiento.
2. Se les aplica una dosis de 800 ppm de ácido indolbutírico espolvoreado, a los
esquejes de pino, posteriormente se siembran en un cama que contiene sustrato de
arena.
3. Se realiza un monitoreo semanalmente para ver los esquejes que ya enraizaron,
posteriormente son llevados a otra área para su adaptación.
1.5.3 Principales limitantes para el proceso de propagación de plantas
1. El área de propagación de vegetativa es pequeña y no se utiliza solo para la
propagación vegetativa de plantas.
2. No existen suficientes plantas madres de las cuatro especies, para realizar más
pruebas.
3. No existe una metodología a seguir en ninguna especie.
4. El manejo de la temperatura y humedad relativa, no se realiza de la mejor forma.
5. No existen registros sobre la temperatura del invernadero.
6. No existen áreas de adaptación para los esquejes enraizados
7. Poca información sobre el enraizamiento de estas cuatro especies forestales.
9
1.6 CONCLUSIONES
a) El diagnóstico indica que la empresa Pilones de Antigua S.A. cuenta con la
infraestructura y los medios, para poder realizar la propagación vegetativa sin
embargo tiene limitantes, que se pueden modificar para que el proceso sea
eficiente. Existen muchas razones por las cuales la propagación vegetativa es
ventajosa, el mantenimiento de clones, la propagación de plantas con semillas con
problemas de germinación y la rapidez, facilidad y economía que representa la
multiplicación de plantas por este método.
b) Conforme a las limitantes del área de propagación vegetativa, el diagnóstico nos
indica que se necesita mejorar detalles en el área de propagación, en los cuales
están, el control de la humedad relativa y la temperatura, expandir el área de
propagación y desarrollar una metodología para el enraizamiento de las especies a
trabajar.
1.7 BIBLIOGRAFÍA
1. IGN (Instituto Geográfico Nacional, GT). 1976. Diccionario geográfico de
Guatemala. Comp. Francis Gall. 2 ed. Guatemala. tomo 1, p.118-138.
10
CAPÍTULO II
EVALUACIÓN DE CONCENTRACIONES DE AUXINAS PARA LA PROPAGACIÓN
VEGETATIVA COMERCIAL DE 4 ESPECIES FORESTALES: MELINA (Gmelina
arborea ), EUCALIPTO (Eucaliptus urograndis ), PINO (Pinus patula ) Y
PINABETE(Abies guatemalensis ).
AUXINS EVALUATION OF STRENGTHS FOR VEGETATIVE PROPAGATION OF 4
COMMERCIAL FOREST SPECIES: MELINA (Gmelina arborea ), EUCALIPTUS
(Eucaliptus urograndis ), PINE (Pinus patula ) AND FIR (Abies guatemalensis ).
11
2.1 PRESENTACIÓN
El principal problema para la propagación por semillas de varias especies
forestales es la germinación, puede ser deficiente o nula, por la estructura morfológica
que la misma posee o por problemas de pérdida de viabilidad.
Actualmente se reconoce que alternativamente a los programas tradicionales de
producción y uso de semillas, la propagación vegetativa, la propagación clonal ofrece un
medio para la obtención de amplias ganancias genéticas en períodos muy cortos, además
de contribuir a la conservación de genotipos únicos de valor actual o potencial.
Entre las ventajas significativas que ofrece la propagación vegetativa se destaca la
capacidad de explorar tanto los componentes aditivos como los no aditivos. Los beneficios
de la propagación vegetativa de estas especies, es necesario adaptar o desarrollar nuevas
tecnologías de propagación, eficientes pero económicas y simples.
El efecto biológico que tienen las auxinas son: la estimulación de la división celular,
inicio de la formación de raíces de varias especies, inducción de la floración, inducción del
amarre de frutos y desarrollo de frutos jóvenes, entre otros. El regulador de crecimiento
más utilizado para estimular el enraizamiento de esquejes es el ácido indolbutírico
(Weaver, R. 1985).
La importancia de los esquejes o clones de estas especies melina (Gmelina
arborea Roxb), Eucalipto (Eucaliptus urograndis), pino (Pinus patula) y Pinabete (Abies
guatemalensis Rehder) se pueden propagar plantas de las mismas en poco tiempo y con
características deseadas.
En esta investigación se evaluó el enraizamiento de esquejes de melina, eucalipto, pino y
pinabete utilizando diferentes concentraciones de auxinas para promover el enraizamiento.
Se estableció un procedimiento para la propagación vegetativa del eucalipto, melina, pino
y pinabete. Después del corte de los brotes o esquejes de las plantas madres de cada una
12
de las especies forestales, se siembran y luego se llevan al invernadero de enraizamiento
en donde se brindan las condiciones necesarias para obtener un enraizamiento exitoso.
El tiempo que los esquejes o brotes permanecen en el invernadero desde el día del corte y
la siembra va de 30 a 35 días donde emiten sus raíces. Luego de esta etapa se trasladan
los esquejes enraizados a otra fase en donde se lleva
la aclimatación antes de ser
llevados a campo.
Se realizó un diseño factorial con arreglo combinatorio, con diseño de bloques
completos al azar, en donde la variable de respuesta fue el peso seco de las raíces, en
donde se le realizó un análisis de varianza (ANDEVA), el resultado fué que las
concentraciones de auxinas utilizadas 4,000 ppm, 6,000 ppm y 8,000 ppm de ácido
indolbutírico no provocó diferencia significativa, contrariamente si hubo diferencia
significativa, en las especies forestales, eucalipto, melina, pino y pinabete, se realizó la
prueba de medias, el eucalipto presento 4.2 %,
la melina 3.74 %, siendo estos
porcentajes altos en materia seca . El pino presentó 2.08 % y pinabete 1.68% ambos
presentaron porcentaje de materia seca bajos.
En la variable de respuesta de
longitudes de raíces, las concentraciones de
auxinas no provocaron diferencia significativa, sin embargo las medias de las longitudes
de raíces tuvieron diferencia significativa en función de la especie con la mayor longitud de
raíces, se obtuvó en el eucalipto con 12.46 cm, la melina con 8.62 cm, el pino con 3.6 cm y
el pinabete 1.18 cm.
Los resultados obtenidos en esta investigación, permitirán desarrollar programas de
propagación de plantas para su comercialización, conservando características genéticas
deseadas o el desarrollo de programas de mejoramiento genético forestal.
13
2.2 MARCO CONCEPTUAL
2.2.1. Descripción del material experimental
A. Gmelina arborea Roxb
Especie nativa del Sureste asiático, la melina es hoy por hoy, una de las
especies más promisorias para usarse en diferentes procesos industriales y en
programas de reforestación; en los que por su rápido crecimiento es fuente
segura de materia prima (USAID 1984).
Su distribución natural abarca el Nordeste de Pakistán hasta el Sudeste de
Camboya, India, Sri Lanka y el Sur de China; en donde se conoce por los
nombres comunes de so, so-maeo, kumhar, sewan, gumadi, shiva o shivani
(USAID 1984).
En África tropical, Centro y Sur América ha sido introducida con éxito en países
como Costa Rica, Guatemala, Colombia, Brasil, Venezuela, Trinidad, Cuba y
Belice; en donde recibe los nombres de gmelina, gemelina, melina, yemane,
gumhar, gamar o teca blanca. En Europa es conocida como ashmir tree, malay
beechwood o snapdragon y como white teak en Inglaterra, mai saw o yemani en
Birmaniay le peuplier d´Afrique en Francia (FONAFIFO 2000).
La altitud media para su desarrollo es de 535.7 msnm, mínima 0 msnm y
máxima 1500 msnm (Fierros, A; Noguéz, A, Velasco,E. 1999).
a.
Clasificación taxonómica
La clasificación taxonómica es la siguiente:
Dominio:
Eucariota
Reino:
Plantae
División:
Magniolophyta
Clase:
Magnoliopsida
Orden:
Lamiales
14
Familia:
Vervenaceae
Género:
Gmelina
Especie:
Gmelina arbórea Roxb.
Nombre común: melina
b. Descripción botánica
La Gmelina arborea es una especie de rápido crecimiento, se clasifica como
una pionera de vida larga. Su capacidad de rebrote es excelente y los brotes
presentan un crecimiento rápido y vigoroso. Es caducifolia, en las zonas secas,
puede llegar a medir 30 m de altura y presentar más de 80 cm de diámetro.
Crece usualmente con un fuste limpio desde 6 hasta 9 m y con una copa cónica
(FONAFIFO 2000).
Copa: Presenta una copa amplia en sitios abiertos, pero en plantación su copa
es densa y compacta (FONAFIFO 2000).
Corteza: lisa o escamosa, de marrón pálida a grisácea; en árboles de 6-8 años
de edad se exfolia en la parte engrosada de la base del tronco y aparece una
nueva corteza, de color más pálido y lisa (FONAFIFO 2000).
Raíz: Presenta un sistema radical profundo, aunque puede ser superficial en
suelos con capas endurecidas u otros limitantes de profundidad (FONAFIFO
2000).
Fuste: Tiene un fuste marcadamente cónico, por lo regular de 50-80 cm de
diámetro, en ocasiones hasta de 143 cm, sin contrafuertes pero en ocasiones
engrosado en la base (FONAFIFO 2000).
Hojas: Grandes (10-20 cm de largo), simples, opuestas, enteras, dentadas ,
usualmente más o menos acorazonadas, de 10-25 cm de largo y 5-18 cm de
15
ancho, decoloradas, el haz verde y glabra, el envés verde pálido y
aterciopelado, nerviación reticulada, con nervios secundarios entre 3 y 6 pares y
estípulas ausentes.
Usualmente, la especie bota las hojas durante los meses de enero o febrero en
casi todas las regiones donde se cultiva. Las hojas nuevas se producen el
marzo o a principios de abril (FONAFIFO 2000).
Flores: Numerosas, amarillo-anaranjadas, en racimos, monoicas perfectas,
cuya inflorescencia es un racimo o panícula cimosa terminal, cáliz tubular,
corola con 4-5 sépalos soldados a la base del ovario, de color amarillo brillante,
cáliz 2.5 cm de largo y 4 estambres (FONAFIFO 2000).
La floración ocurre justo cuando las hojas han caído o cuando las nuevas hojas
comienzan a desarrollarse. En su área de distribución natural la melina florece
los meses de febrero abril (FONAFIFO 2000).
En Centroamérica la floración se presenta, usualmente, entre diciembre y
febrero pero en general, en América tropical florece de febrero a marzo,
prolongándose en ocasiones hasta abril (FONAFIFO 2000).
La Gmelina arborea Roxb, inicia su época de floración y fructificación entre los
6-8 años, sin embargo en algunas plantaciones en Costa Rica florece a partir
del tercer año (FONAFIFO 2000).
Frutos: Es un fruto carnoso tipo drupa, de forma ovoide u oblonga, carnoso,
suculento, con pericarpo coriáceo y endocarpo óseo, de color verde lustroso,
tornándose amarillo brillante al madurar, momento en el que caen al suelo, lo
que facilita su recolección (FONAFIFO 2000).
16
Entre los frutos caídos naturalmente del árbol, los más indicados de recolectar
son los de color verde amarillento, debido a que tienen el mayor porcentaje de
germinación (FONAFIFO 2000).
Semillas: Las semillas de esta especie se encuentran formando parte del
endocarpo del fruto, son de forma elipsoidal, comprimidas, de 7-9 mm de largo;
testa color café, lisa, opaca, membranosa, muy delgada; el embrión es recto,
comprimido, de color amarillo-crema y ocupa toda la cavidad de la semilla; los
cotiledones son dos, grandes, planos, carnosos y elipsoidales; la radícula es
inferior y corta (FONAFIFO 2000).
c. Características y propiedades de la madera
La madera presenta un color amarillento pálido, en ocasiones con tonalidades
blancas, amarillas, cremas y rosadas. Existe poca diferenciación entre albura y
duramen, lo que hace que el color sea uniforme.
La madera de Gmelina arbórea Roxb es relativamente liviana con una densidad
de 420–640 kg por mᶟ y un valor calorífico de 4800 kcal por kg (FONAFIFO
2000).
B. Eucalipto (Eucaliptus urograndis)
a. Clasificación taxonómica
Dominio:
Eucariota
Reino:
Plantae
División:
Magniolofitas
Clase:
Magnoliopsidas
Orden:
Mirtales
Familia:
Myrtaceae
Género:
Eucalyptus
17
Especie:
Eucalyptus urophylla x Eucalyptus grandis
Nombre común: Eucalipto urograndis
b. Descripción botánica
Árbol que alcanza de 20 m o más de altura y hasta 2 m de diámetro. Cuando
está aislado puede desarrollar una copa globosa y el follaje, las ramas
colgantes son permeables a la luz. La corteza es caduca a la mitad del tronco,
desprendiéndose anualmente en placas combadas más o menos largas y
extensas. La madera adulta presenta un color rojo caoba, con albura de color
blanco amarillento, es medianamente pesada y dura, muy pulida y con anillos
anuales no muy diferenciado (USAID 1984).
Las hojas son opuestas inicialmente y transformándose después en alternas;
pecióladas, lanceoladas, glabras, verde mate, ligeramente glaucas, pasando a
menudo al rojo; las hojas adultas son alternas de color verde mate en ambas
caras y con pecíolos de 1 a 3 cm, miden por lo regular de 12 a 22 cm de largo
por 0,8 a 1,5 cm de ancho, pinatinervias e irregularmente anastomosadas
(USAID 1984).
La inflorescencia se dispone en umbelas axilares, de 5 a 10 flores, con
pedúnculo cilíndrico, de 10 a 15 cm de longitud.
El fruto es una cápsula hemisférica, con pedicelo fino, o anchamente turbinado
y coronado por un disco bien prominente, el conjunto puede medir de 5 a 6 mm
de diámetro y de 7 a 8 mm de altura, con 3 a 5 valvas triangulares exsertas.
Las semillas son pequeñas de color claro, amarillo dorado, poliédricas, con
ángulos muy marcados y menos de 1 mm de diámetro medio, las semillas
estériles son más oscuras y angostas (USAID 1984).
c. Características y propiedades de la madera
18
La madera es moderadamente densa (0,6 g/cmᶟ). Tiene un gran potencial
como leña. Cuando la madera está completamente seca constituye un
combustible excelente. Tiene un poder calórico de aproximadamente 20.000
kJ/kg (4.800 kcal/kg). Produce carbón de excelente calidad (USAID 1984).
C. Pino (Pinus patula)
Es un árbol nativo del nuevo mundo. Parece que fue la especie progenitora
(original) que sirvió de ancestro para algunas de las especies de pinos de
México (Vela, G. 1980).
Se encuentra desde el estado de Chihuahua, México, y Guatemala a las más
altas elevaciones de Honduras, El Salvador y Noroeste de Nicaragua. Entre
900-2400 m sobre el nivel del mar (Vela, G. 1980).
a. Clasificación taxonómica
Domino:
Eucariota
Reino:
Plantae
División:
Spermatophyta
Clase:
Coniferae
Orden:
Pinales
Familia:
Pinaceae
Género:
Pinus
Especie:
Pinus patula
Nombre común: Pino
b. Descripción botánica
Árbol de 30 a 35 m de altura y de 50 a 90 cm de diámetro normal. Su copa es
abierta y redondeada, tronco recto y libre de ramas hasta una altura de 20 m,
con una raíz profunda y poco extendida. Es de rápido crecimiento, 20 mᶟ/ha. El
crecimiento se detiene sensiblemente entre los 30 y 35 años de edad (Vela, G.
1980).
19
Hojas: perennifolia, el renuevo de hojas ocurre en dos períodos, en febrero
brotan las hojas del primer internudo (maduran en marzo), en mayo comienza la
aparición de nuevas hojas en el segundo internudo (maduran en junio), al
tiempo que caen las formadas al inicio del año.
Flores: las flores masculinas y femeninas ocurren separadamente en la misma
planta. Los conos masculinos (estaminados) son de color amarillo y ocurren
abundantemente en racimos en vástagos nuevos, usualmente en la región
inferior de la copa. Los conos femeninos (pistilados) son de color purpúreo,
tienen espinas deciduas y aparecen de manera solitaria o en grupos, por lo
general lateralmente pero rara vez en posición sub-terminal, y en la región
superior de la copa (Vela, G. 1980).
Fruto: los conos maduros son cónicos y largos, ahusándose hacia el ápice, por
lo general sésiles pero rara vez sub-sésiles, con un reflejo asimétrico,
ligeramente curvos, de un color lustroso que va de gris a marrón, apareciendo
en grupos de tres a seis, con una longitud de 4 a 12 cm y un ancho de 2.5 a 4
cm. Las escamas de los conos son duras, de 2 cm de largo por 1 cm de ancho,
una apófisis romboide, planas y ligeramente protuberantes, de color pardo
oscuro y con espinas deciduas (Vela, G. 1980).
Semillas: son de tamaño pequeño (3 mm), de color de marrón claro a negro y
con alas de color marrón de 13 mm de largo (Vela, G. 1980).
c. Características y propiedades de la madera
No existe literatura sobre las cualidades de la madera del pino pátula en su área
de distribución natural. Las propiedades físicas y mecánicas del pino pátula
cultivado en plantaciones en el Sur de Africa son: peso específico de entre 0.40
a 0.52 con un contenido de humedad del 12 por ciento; módulo de ruptura, 41 a
83 Newtons por mm; módulo de elasticidad, de 5,860 a 9,660 Newtons por mm;
compresión a lo largo del plano axial, de 29.4 a 44.8 Newtons por mm; dureza
20
lateral (método janka), de 1,352 a 2,523 Newtons; hendidura radial y tangencial,
de 8.0 a 10.5 mm y 12.2 y 13.3 mm, respectivamente, y la contracción radial,
tangencial y volumétrica de 2.8 a 4.1 por ciento, de 3.9 a 8.8 por ciento y de 7.3
a 13.9 por ciento, respectivamente (Chudnoff, M. 1984, Wormald, TJ. 1975).
d. Usos de la madera
El pino patúla ha sido plantado por lo general como una especie industrial de
crecimiento acelerado y alto rendimiento. La madera es de menor densidad y
fortaleza que muchas coníferas de áreas templadas, pero es adecuada para la
construcción general. La madera es de color blanco a blanco amarillenta, con
un duramen rosáceo y posee a menudo un fuerte contraste entre la madera
más temprana de color claro y la madera tardía más oscura. La fortaleza y la
densidad de la madera aumentan de manera marcada del centro hacia afuera,
de manera que la madera exterior es apropiada para trabajos estructurales
generales, mientras que la madera juvenil interior es más apropiada para la
manufactura de cajas y contenedores grandes, tablillas para el techado y
ensambladura de bajo costo. La madera se puede tratar con facilidad, es
relativamente no-resinosa y con poco olor, y es apropiada tanto para los
tableros de partículas como pulpa (Chudnoff, M. 1984, Wormald, TJ. 1975).
D. Pinabete (Abies guatemalensis Rehder)
Se distribuye naturalmente desde el Sur de México en algunos sitios de El
Salvador y Honduras y en Guatemala en los departamentos de Huehuetenango,
Sololá, Totonicapán, Quetzaltenango, San Marcos, Jalapa, Quiche y en El
Progreso (sierra de las Minas) (INAB 2000).
Esta especie se conoce con los nombres comunes de pinabete y pashaque,
pertenece a la familia Pinaceae. Es un árbol de hasta 50 metros de altura y de
1.6 metros de diámetro. Sus semillas son aladas de color café pálido,
cuneadas, ovoides, de 8 a 10 mm de diámetro y de 1 hasta 1.5 cm de largo
(García Rodríguez, G. 1989).
21
a. Clasificación taxonómica
La clasificación taxonómica es la siguiente:
Dominio:
Eucariota
Reino:
Plantae
Subreino:
Embryobionta
División:
Pinophyta
Clase:
Pinicae
Subclase:
Pinopsida
Orden:
Pinales.
Familia:
Pinaceae
Género:
Abies
Especie:
Abies guatemalensis
Nombre común: Pinabete
b. Descripción botánica
Conífera de hoja perenne con el tronco generalmente fuerte y recto que alcanza
una altura de 45 metros. La copa es piramidal, en los ejemplares jóvenes de
manera regular y más aplanada en los ejemplares adultos. Es una especie
monoica (CONAP 1999).
Ramas: Las ramas principales están dispuestas casi horizontalmente. En los
ejemplares que crecen libremente el tronco esta ramificado desde la base. En la
copa las ramas se mantienen erguidas. Ramitas jóvenes peludas y brotes algo
brillantes (CONAP 1999).
Corteza: La corteza oscura es lisa, de color gris, adquiriendo con la edad
algunas grietas con vejigas resinosas.
22
Hojas: aciculares, de hasta 3 o 4 cm de longitud y 2 mm de ancho, romas en la
punta, con un eje transversal y una línea de color claro en numerosos puntos y
dispuestas en dos hileras (CONAP 1999).
Conos: De color azulado, ovalados y resinosos. Los conos masculinos tienen
hojas escuamiformes en su parte interior.
Los femeninos generalmente de unos 10 cm, erguidos, cilíndricos, insertados
en el eje. Orientados hacia lo alto cuando están a punto de ser polinizados, en
un principio de color azulado, mas tarde de color pardo rojizo y maduros, de
color pardo más claro (CONAP 1999).
Semillas: De 8 a 10 milímetros de color castaño claro provistas de un ala
membranosa de hasta 15 mm largo. Fructifica en octubre. Se puede colectar
entre diciembre y enero (CONAP 1999).
Flores: unisexuales, la femenina de color rojo o purpura.
c. Características y propiedades de la madera
El pinabete es una especie en peligro de extinción debido principalmente a su
posicionamiento como árbol ideal para la época navideña. De continuarse con
los actuales niveles de extracción las probabilidades de que esta especie pueda
permanecer en el tiempo son bastante remotas (CONAP 1999).
Según García Rodríguez, G. (1989) los usos actuales se usa para forros de
interiores, techos de construcciones rurales y urbanas, producción de
oleorresina (aceite de pinabete) tiene propiedades balsámicas por lo que se usa
en la medicina y en la industria de madera; además es utilizado como adorno
navideño.
23
Se requiere aproximadamente 30 kg de frutos para obtener un kg de semilla
pura, por lo que indica que claramente la importancia que representa mejorar la
eficiencia en cuanto a incrementar los volúmenes de cosecha o su propagación
asexual (INAB 2000).
2.2.2. PROPAGACIÓN VEGETATIVA
Según Hartmann, HT. Kesler, DE. (1998) esto se puede lograr debido a que
todas las células poseen toda la información genética necesaria para regenerar
el organismo completo. Al poseer la misma información genética, la plata
originada va a tener las mismas características que la planta de la cual fue
tomada,
ya que de acuerdo Mesén, F.(1998)
se duplica exactamente su
genotipo, se mantiene en la misma condición fisiológica y genética del árbol
padre en la parte propagada.
A. Propagación por medio de estacas
Para propagar una planta por medio de estacas; se corta una porción de
tallo, raíz u hoja de la planta madre, se coloca en condiciones favorables y se
induce a la formación de raíces y brotes (Hartmann, HT. Kesler, DE. 1998).
Las estacas se pueden clasificar de acuerdo a la parte de la planta de donde
proceden, así que puede haber estacas de tallo, de hoja, y yema, y de raíz
(Hartmann, HT. Kesler, DE. 1998).
Hartmann, HT. Kesler, DE. (1998) afirma que las estacas de tallo son el tipo
más importante y pueden clasificarse según la naturaleza de la madera que las
forman de la siguiente manera: madera dura, madera semidura, madera suave
y herbácea.
24
B. Desarrollo de raíces en estacas de tallos
a. Formación de raíces adventicias
Este tipo de raíces se origina en el tejido del xilema secundario joven.
Pueden ser de dos tipos, raíces preformadas y raíces de lesiones; las primeras
están en los tallos o ramas cuando aún están adheridas a la planta madre y se
vuelven latentes cuando se cortan las estacas y se ponen en condiciones
favorables; las segundas se desarrollan solo después de haber hecho la estaca
(Hartmann, HT. Kesler, DE. 1998).
Al hacer una estaca, las células quedan expuestas y se da un proceso de
cicatrización, formándose una capa de suberina que protege al resto de células,
luego estas células se empiezan a dividir y forman el callo; por último, por
procesos de desdiferenciación, empiezan a formarse las raíces adventicias
(Hartmann, HT. Kesler, DE. 1998).
Por lo general, el origen y desarrollo de las raíces adventicias es dentro del
tallo, cerca del cilindro vascular, fuera del cámbium; se mantienen en reposo
hasta que se hace las estacas y se colocan en condiciones ambientales
favorables. Por ejemplo el Populus sp. se forma en el tallo a mediados del
verano y luego emergen de las estacas hechas en primavera siguiente
(Hartmann, HT. Kesler, DE. 1998).
Hartmann, HT. Kesler, DE. (1998) afirman que la formación de raíces
adventicias puede depender de ciertos factores inherentes no translocables,
determinados por el genotipo de las células individuales del tejido. Aunque es
probable que para establecer condiciones que favorezcan la iniciación
de
raíces existan interacciones entre ciertos factores fijos no móviles situados
dentro de las células; podrían ser ciertas enzimas y nutrientes fácilmente
conducibles y factores endógenos del enraizamiento.
25
b. Formación del callo
De acuerdo a Hartmann, HT. Kesler, DE. (1998), “el callo es una masa
irregular de células de parénquima en varios estados de lignificación”. Este se
origina en las células jóvenes del cambium vascular y el floema adyacente, pero
también puede contribuir a su formación, células de la corteza y de la médula.
Se cree que a partir del callo se empieza a formar las raíces, por lo que al haber
callo, se está asegurando que la estaca empezara a enraizar.
C.
Proceso del enraizamiento
De acuerdo a Hartmann, HT. Kesler, DE. (1998)
el enraizamiento es el
desarrollo de las raíces cuya formación está influida por factores fisiológicos,
bioquímicos y anatómicos y por las relaciones existentes entre ellos, en las
estacas de tallo la mayoría de las raíces adventicias se originan en partes y
formas diferentes de las normales. Se inicia con la división celular, seguida por
el desarrollo de grupos de células en división hasta formar un meristemo apical
de la raíz. Esta raíz perfora la salida a través de las capas superficiales de
células, hasta salir a superficie.
Según Leakey, RRB. Mesén, F. (1991)
el proceso del enraizamiento de
estacas de especies leñosas es complejo debido a los diversos factores que
influencian la capacidad de enraizamiento, sin embargo puede considerarse
simple en el momento que se encuentre un método básico que logre facilitar el
proceso del enraizamiento.
D. Factores que influyen en el enraizamiento
a. Factores endógenos
i. Edad de la planta madre y de la estaca
Es un factor muy importante en plantas de difícil enraizamiento. Las estacas
tomadas de plantas jóvenes tienen más capacidad de formación de raíces
26
adventicias que las tomadas de plantas viejas, esto se debe a la diferencia
fisiológica entre plántula y una planta madura. La condición inmadura
llamada juvenilidad es importante en la propagación. Los brotes juveniles
enraízan más rápido. Las plantas madres al momento de cortar las estacas
deben estar en estado activo de crecimiento y no de floración, para que se
encuentre en su máxima capacidad regeneradora (Hartmann, HT. Kesler,
DE. 1998).
ii. Nutrición de la planta patrón
El estado nutricional de la planta madre tiene gran influencia en el
desarrollo de raíces y ramas en las estacas separadas de ella. Es muy
importante la concentración de carbohidratos o almidones seguidos de la
presencia de nitrógeno, potasio y zinc. Entre las plantas progenitoras el
equilibrio entre el contenido bajo de nitrógeno y alto en carbohidratos, puede
favorecer el enraizamiento (Hartmann, HT. Kesler, DE. 1998).
iii. Niveles de auxina
Las auxinas se sintetizan en hojas y yemas, estas sustancias en las
células jóvenes no diferenciadas, provocan la síntesis de ácido ribonucleico
que interviene en la iniciación de primordios de raíces adventicias del tallo
(Hartmann, HT. Kesler, DE. 1998).
iv. Posición de la estaca en la planta madre
Las estacas pueden tomarse de ramas laterales o terminales
suculentas, siendo mejores las primeras, debido a que ya ha disminuido el
crecimiento rápido y han acumulado carbohidratos.
Las estacas pueden separarse de diferentes regiones de las ramas, cuya
composición química varía de la base a la punta, incrementándose el
contenido de nitrógeno y disminuyendo el contenido de de carbohidratos.
27
Generalmente enraízan mejor las estacas tomadas de las partes basales de
la rama debido a las altas reservas de carbohidratos, en otros casos son
mejores las estacas terminales, pues producen sustancias endógenas
promotoras de enraizamiento, o hay menor diferenciación, facilitándole a las
células volverse meristematicas (Hartmann, HT. Kesler, DE. 1998).
v. Cofactores de enraizamiento
Existen sustancias específicas formadoras de raíces como las
rizocalinas presentes en las hojas, yemas y cotiledones; éstas son
requeridas al igual que los terpenoides oxigenados y otras sustancias no
identificadas aún, para la iniciación y desarrollo radicular (Bidwell, RGS.
1990).
b. Factores exógenos
i. Condiciones ambientales
Los requerimientos de cada especie, el ambiente bajo el cual se
desarrollan las estacas va a ser variable en cuanto a los siguientes factores:
Humedad: las estacas necesitan cierto nivel de humedad para vivir. En
estacas con hojas, el enraizamiento se ve estimulado pero la perdida de
agua a través de ellas puede disminuir el contenido de agua en las estacas,
las cuales llegan a morir por desecación antes de formar raíces (Hartmann,
HT. Kesler, DE. 1998).
Temperatura: la temperatura puede regular la producción de raíces, que
debe desarrollarse antes del crecimiento del tallo y desarrollo de las yemas,
recomendándose temperaturas mayores para la base de la estaca y menores
para la etapa terminal.
Luz: es un factor importante pues las estacas con hoja elaboran productos
fotosintéticos importantes para la iniciación y el crecimiento de raíces,
28
requiriendo
intensidad
y
longitud
de
luz
suficientes
para
producir
carbohidratos, los que serán utilizados después. Las estacas de madera dura
sin hojas dependen de los carbohidratos almacenados. Si las necesidades
de auxinas son satisfechas externamente, la presencia de luz parece tener
un efecto inhibidor sobre la iniciación de las raíces (Hartmann, HT. Kesler,
DE. 1998).
ii.
Tratamiento con reguladores de crecimiento
La aplicación de reguladores de crecimiento influye en la calidad y cantidad
de enraizamiento y el tiempo y la uniformidad del mismo. De los materiales
químicos sintéticos, el más recomendable para la producción de raíces es el
ácido indolbutírico.
iii.
Sustrato
En las plantas que enraízan con dificultad el medio puede tener una gran
influencia tanto en el porcentaje de enraizamiento como en la calidad del
sistema radicular que se forme. Existe una serie de factores a considerar
entre los que se encuentra:
Porosidad: en el medio debe existir suficiente porosidad que permita una
buena aireación y una alta capacidad de retención de agua al igual que un
buen drenaje.
Sanidad: el medio debe de estar libre de enfermedades e insectos, para
estacas tiernas de madera suave. Por las estacas de madera semidura debe
estar libre de hongos y bacterias.
Oxígeno: para la producción de raíces es esencial de oxigeno, en el medio,
aunque su requerimiento varía en función de la especie (Hartmann, HT.
Kesler, DE. 1998).
29
2.2.3. Reguladores de crecimiento
A. Términos generales
Weaver, R. (1985) define a los reguladores de crecimiento como
“compuestos orgánicos (diferentes de los nutrientes) que en pequeñas
cantidades, fomentan, inhiben o modifican de alguna otra forma cualquier
proceso fisiológico vegetal”.
Dentro de los reguladores de crecimiento se encuentran las auxinas, las
giberelinas las citoquininas y los inhibidores ABA (ácido abscísico).
a. Auxinas
Según Weaver, R. (1985), se le llama auxinas al grupo de compuestos que
se caracterizan por tener capacidad de inducir la extensión de las células de
los brotes. Para Hartmann, HT. Kesler, DE. (1998) las auxinas tienen varias
ventajas al ser aplicadas a estacas: aceleran su iniciación y aumentan la
uniformidad del enraizamiento.
Las auxinas pueden ser naturales, ya que son producidas por la misma planta,
tal es el caso del AIA (ácido indolacetico), detectado en varios tejidos
vegetales, y el IAN (indolacetonitrilo) extraído de hojas y tallos de plantas
superiores de crecimiento rápido; también pueden ser sintéticas, y entre esta
están él IBA (ácido indolbutítico) (Weaver, R. 1985).
i. Efectos biológicos de las auxinas
Los efectos biológicos más importantes que tienen las auxinas son: la
estimulación de la división celular, inicio de la formación de raíces de varias
especies, inicio de la floración, inducción del amarre de frutos y desarrollo de
frutos jóvenes, entre otros (Weaver, R. 1985).
30
ii.
Mecanismos de acción de las auxinas
Las auxinas incrementan la flexibilidad de las paredes celulares con lo cual
se pierde la presión de turgencia de la célula. Al perderse la presión de
turgencia, el agua ingresa al interior de la célula y de esta manera la misma se
expande (Weaver, R. 1985).
B. Utilización
de
reguladores
de
crecimiento
para
estimular
el
enraizamiento
Según Weaver, R. (1985), las auxinas son los reguladores de crecimiento
más usados para estimular el enraizamiento de las plantas. Dentro de las
auxinas sintéticas se conocen dos productos como los que proporcionan
mejores
resultados
estos
son:
ácido
indolbutírico
(AIB)
y
el
ácido
naftalenacético (ANA).
El ácido indolbutírico es un compuesto persistente que se retiene cerca del sitio
de aplicación ya que se desplaza muy poco y por lo cual es muy efectivo.
C. Métodos de aplicación de reguladores de crecimiento
Según Weaver, R. (1985), describe tres métodos para aplicar los reguladores
de crecimiento a las estacas y que son los únicos que actualmente se han
utilizado en forma amplia y práctica, estos son: la inmersión rápida, el remojo
prolongado y el espolvoreado.
a. Método de espolvoreado
Este método consiste en mezclar un producto con algún polvo fino
inerte (talco) según la concentración a aplicar, que varía de 200 a 5,000 ppm
(dependiendo del tipo de madera de la estaca). El polvo se aplica en el área
basal humedecida con agua, de las estacas y luego se coloca en el medio de
31
enraizamiento. Una de las desventajas de este método es que el polvo se
puede desprender de la estaca al insertarla en el sustrato y además que el
exceso de polvo en el área basal puede ocasionar toxicidad (Weaver, R.
1985).
b. Método de inmersión rápida
Según Weaver, R. (1985), consiste en sumergir durante 5 segundos
los extremos basales de las estacas en una solución concentrada (500 –
10,000 ppm) del producto químico en alcohol isopropilico al 75%. Una vez
absorbido el producto, las estacas se colocan en el medio de enraizamiento.
Es un método ventajoso porque requiere de menos equipo que en los otros
dos métodos y que la misma solución puede usarse repetidas veces siempre y
cuando sellen herméticamente para evitar la evaporación del alcohol.
2.2.4 Trabajos realizados sobre la propagación vegetativa en especies forestales
Pérez Irungaray, J. (1999), trabajó en Guatemala sobre la propagación
vegetativa de teca (Tectona grandis L.), concluyó que, el diámetro de la estaca
no influye en el desarrollo de raíces en las estacas de teca (Tectona grandis L.),
Chichique (Angiosperma megalocarpon Muell.-Arg), palo blanco (Cybistax
donnell-smithii (Rose) Seibert) y matilisguate (Tabebuina rosea (Bertol.) DC.).
Evaluó la presencia de callo en la estaca, presencia de brotes en la estaca,
concluyendo que la aplicación de ácido indolbutírico en concentraciones de 3000
y 5000 ppm para el método de inmersión rápida son las que mejor resultados
obtuvieron, y 1000, 2000 y 3000 ppm para el método espolvoreado.
Pérez, H. (1997), trabajó en Guatemala sobre la capacidad de enraizamiento de
dos especies arbóreas, sauco (Sambucus mexicana Presl) y sauce (Salix spp.)
con fines de utilización en sistemas agroforestales, concluyendo que el sustrato
32
compuesto mas la aplicación del enraizador fue el tratamiento que propició las
mejores condiciones para la formación de tejido radicular.
En trabajos realizados en el CATIE Díaz, ERA. Salazar, R. Mesen, F.(1991 y
1992), Leakey (1990, 1992 y 1996); Mesen, F.(1993), Mesen y Trejos 1998,
Núñez (1997), la concentración de 0.2 % de AIB proporciono los mejores
resultados en A. acuminata, B. quinata, Cedrela odorata, E. deglupta, G. arborea
y S. macrophylla. Con Platyumiscium pinnatum, las dosis de 0.2% y 0.4% de AIB
fueron mejores cuando se utilizó grava o arena como sustrato, respectivamente.
Algunas especies respondieron mejor ante dosis mayores, por ejemplo
Terminalia oblonga, (0.8%), C. alliodora (0.8% - 1.6%) y Hyeronima
alchorneoides (1.6%), mientras que A. guachapele enraizó igualmente bien con
concentraciones desde 0.05% hasta 0.4% de AIB. Contraria a todas las demás
especies evaluadas. V. guatemalensis presentó los mayores porcentajes de
enraizamiento cuando no se aplicó auxina, aunque el número de raíces
producidas en las estacas aumentó con dosis crecientes de AIB desde 0% hasta
0.8%; la concentración de 0.2% presentó el mejor balance entre enraizamiento y
calidad del sistema radical formado. Con estos resultados se puede tener idea
del tipo de rango de dosis que podrían ser evaluadas cuando se vaya a iniciar la
propagación de una especie nueva.
Según Olman Murillo, Rojas J. Badilla.
(2003).
las estacas se sacan de la
solución de desinfección y se dejan escurrir para eliminar el exceso de agua. Se
prepara entonces un recipiente con el enraizador que puede ser el ácido
indolbutírico (para la Tectona grandis, Hieronyama alchorneoides, Ulmus
mexicana y Voschysia spp.) que viene preparado en forma comercial en una
dosis de un 1% o 10,000 ppm de AIB (ácido indol-butírico). Otras especies no
toleran una dosis tan alta y requieren no más de 0.2% ó 2000 ppm (Eucalytus
Spp. Cupressus lusitánica, Alnus acuminata entre otras). En estos casos deberá
buscarse un producto comercial que indique una dosis baja o conseguirse AIB
puro y prepararse en estas dosis (diluido en alcohol). En el pellet o la bandeja se
procede hacer un hoyo donde se sembrará la estaca. Se introduce entonces la
33
base de la estaca en el enraizador hasta lograr que el polvo blanco se adhiera.
La estaca se sacude ligeramente para eliminar el exceso de enraizador y se
siembra directamente en el hoyo hecho en el pellet o la bandeja. Una vez
sembradas todas las estacas se deben mojar ligeramente con el sistema de riego
que se esté utilizando. Se puede conseguir en el mercado un estimulante para el
enraizamiento que viene en una presentación líquida (combina el AIB con el
ácido naftalinacético o ANA) y se puede aplicar el producto directamente a los
pellets previo a la siembra, incluso al agua con la que se mojan y hacen crecer
los pellets.
Mesén, F. Newton, AC. Leakey, RRB. (1997), trabajaron en Costa Rica sobre la
propagación vegetativa de Cordia alliodora. La investigación consistió en tres
experimentos donde evaluaron en cada uno: concentración de IBA (0%,0.2%,
0.4%, 0.8% y 1.6%) disuelto en una solución de metanol, sustratos (aserrín,
arena fina y grava gruesa), diferentes tipos de corte; para los últimos dos
experimentos, la concentración usada de AIB fue de 1.6%. Usaron estacas de
hoja, las cuales consistieron en cortes de peciolo de una longitud de 5 cm. Las
variables evaluadas fueron porcentaje de enraizamiento y número de raíces. De
las concentraciones de AIB evaluadas, la mejor fue de 1.6%, ya que fue la que
mayor numero de raíces produjo; aunque con respecto al porcentaje de
enraizamiento, no se encontró diferencia significativa entre los tratamientos de
0.8% y 1.6%. los mejores sustratos fueron los de grava y arena en ambos no
hubo diferencia con respecto al porcentaje de enraizamiento y al número de
raíces. En los últimos dos experimentos se pudo observar que si hubo respuesta
de las estacas al enraizamiento al aplicarles la concentración de 1.6% de AIB.
34
2.3 OBJETIVOS
2.3.1 Objetivo general:
Establecer un procedimiento para la propagación vegetativa de cuatro especies
forestales.
2.3.2 Objetivo especifico:
1. Establecer la concentración de auxinas que promueva el enraizamiento adecuado
de los esquejes de melina, eucalipto, pino y pinabete.
2. Determinar las concentraciones de auxinas que induzcan, la mayor longitud de
raíces.
3. Determinar los días óptimos para llevar los esquejes a campo en las cuatro
especies.
2.4 HIPOTESIS
Al menos una de las concentraciones de auxinas a evaluar presentará mejores
resultados de enraizamiento para cada una de las
eucalipto, pino, pinabete.
especies forestales: melina,
35
2.5 METODOLOGÍA
2.5.1 Sitio experimental
La investigación se
llevó a cabo dentro de un invernadero del área de
propagación vegetativa, en la empresa “Pilones de Antigua S.A.” ubicada en la Finca
La Azoteita, carretera a Jocotenango.
2.5.2 Materiales
Plantas madres de melina, eucalipto, pino y pinabete.
Ácido indobutírico, técnico 97%.
Tijeras de podar.
Sustrato.
Atomizador.
Bandejas.
Tubetes 200 cc.
Estacas de identificación.
Recipiente plástico de 2 lts.
Agua destilada.
Alcohol isopropílico al 75%.
2.5.3 Metodología experimental
A. Diseño experimental
Se utilizó un diseño factorial con arreglo
combinatorio, con diseño de
bloques completos al azar. Se utilizó este diseño, debido a que se realizó a cabo
bajo condiciones de invernadero.
36
Las distribuciones de bloques completamente al azar se realizaron con
cuatro tratamientos y 10 repeticiones, para
un total de 160 unidades
experimentales.
B. Tratamientos
Los tratamientos que se evaluaron son los siguientes:
Cuadro 1. Tratamientos del diseño experimental
Factor A
Especies
Eucalipto
Melina
Pino
Pinabete
A1
A2
A3
A4
B1
B2
B3
B4
Factor B
Concentraciones
6,000ppm
8,000ppm
10,000ppm
Testigo
C. Modelo estadístico
El modelo que se describe corresponde a un experimento bifactorial, con
arreglo combinatorio dispuesto en un diseño en bloques completos al azar.
Yijk=µ+Ai+Bj+ABij+βk+Єij
Siendo:
Yijk = variable de respuesta asociada a la ijk- ésima unidad experimental.
µ = Efecto de la media general.
Ai = Efecto del i-ésimo nivel del factor “A” (especies).
Bj= Efecto del J-ésimo nivel del factor “B” (concentraciones).
ABij= Interaccion del i – ésimo nivel del factor “A” con el j – ésimo nivel del factor
“B”.
Βk= Efecto del K – ésimo bloque
D. Unidad experimental
En la evaluación se utilizó como unidad experimental tubetes plásticos que
tienen capacidad de 200 cc . Los tubetes tienen capacidad para un esqueje.
37
2.5.4 Manejo del experimento
A. Desinfección de las unidades experimentales
Se desinfestaron las bandejas y tubetes a utilizar, en caldera por medio de
vapor, durante 90 minutos a una temperatura de 110 °C con el objetivo de reducir
la incidencia de algún patógeno.
B. Sustrato
Se desinfestó el sustrato, en caldera por medio de vapor. Se colocó el
sustrato en las bandejas y en los tubetes. El sustrato utilizado fue broza.
C. Elaboración de concentraciones
El procedimiento para la elaboración de las concentraciones fue el siguiente:
1. Se utilizó la siguiente fórmula para calcular los gramos de IBA que se
utilizaron para cada concentración.
4,000ppm = 4,000 mg IBA [100%] x 100mg IBA solución = 4g de IBA
100 ml solución
97 mg IBA puro
2. Se pesaron los 4 g de IBA al 97% y se diluyeron en 20 cc de alcohol
isopropílico al 75%, hasta que se disolviera el IBA.
3. A los 100 g del polvo inerte se le agregó la solución del IBA y el alcohol
isopropílico al 75%, homogenizando la mezcla para obtener las 4,000
ppm.
4. Se realizó el mismo procedimiento para la elaboración de las
concentraciones de 6,000 ppm y 8,000 ppm.
D. Esquejes
La obtención y preparación de los esquejes de las diferentes especies
involucró una serie de fases desde su corte hasta la siembra siendo éstas:
a. Corte: se cortaron los esquejes o brotes de las plantas madres de cada una
de las especies forestales, la longitud de los esquejes es 8 cm, se cortaron
38
con una tijera de podar, luego se procedió a mantener el esqueje en un
recipiente con agua para evitar la deshidratación.
Figura 4. Tamaño de esquejes en A) Eucalipto (Eucaliptus urograndis), B)
Melina (Gmelina arborea Roxb), C) Pino (Pinus patula), D) Pinabete (Abies
guatemalensis Rehder).
b. Desinfección: los esquejes se desinfectaron por inmersión en un fungicida a
base de carbomato durante 3 segundos aproximadamente.
c. Aplicación de ácido indolbutírico: se realizó conforme el tratamiento de
cada concentración para las cuatro especies forestales. Se tomaron los
esquejes y luego de la desinfección se impregnó 1 cm del esqueje, con la
concentración de AIB que se elaboró para cada tratamiento.
d. Siembra: Se esperan 3 segundos para que él AIB se impregnara en el
esqueje, luego se sembró en el tubete con su respectivo sustrato.
e. Área de enraizamiento: después de la siembra los esquejes se introdujeron
en el invernadero de enraizamiento con condiciones de humedad relativa no
menores del 70%, la temperatura mínima de 25°C y el riego que estaba
controlado por un sistema de riego automatizado.
f. Área de adaptación: Luego del enraizamiento de los esquejes pasaron del
invernadero con alta humedad relativa y temperatura alta a el área de
39
adaptación en donde la humedad es baja y también la temperatura, el riego
es nebulizado, en esta área también se manejo la sombra con sarán al 50%,
para que el esqueje se adapte a condiciones normales y no sufriera
deshidratación.
g. Campo: En esta fase las condiciones fueron; sol directo, riego
diario
durante 1 mes, listo para su comercialización.
E. Riego
Los esquejes se regaron con nebulizadores automáticos para que no se
deshidrataran y mantenerlos a una alta humedad relativa aceptable.
Cuadro 2. Riego de los esquejes dentro del invernadero
Días después de la siembra
1 a 15
15 a 30
30 a 37
Tiempo de riego
2 segundos/5 minutos
2 segundos/8 minutos
2 segundos/15 minutos
F. Fertilización
La fertilización se realizó entre la fase de adaptación y la fase de campo con
un fertilizante 11-44-11 con elementos menores, este fertilizante es
fósforo
y con micro elementos, ya que es necesario para que
alto en
las plantas
desarrollen una mejor raíz.
2.5.5 Manejo de las plantas madres
Las plantas madres fueron donde se proporcionaron los esquejes o brotes,
se les realizo un manejo intensivo en cuanto a fertilización, riego y fungicidas, esto
sirvió para obtener esquejes con las características deseadas y obtener un buen
enraizamiento.
40
Figura 5. Plantas madres de: A) Eucalipto (Eucaliptus urograndis), B) Pino (pinus
patula).
Figura 6.Plantas madres de: A) Pinabete (Abies guatemalensis Rehder), B) Melina
(Gmelina arborea Roxb).
A. Fertilización
Se fertilizaron una vez por semana, para mantener una buena nutrición de
plantas madres, se fertilizaron de acuerdo al requerimiento.
41
Cuadro 3. Requerimiento nutricional de las plantas madres.
N
2.5-3
P
0.2-0.4
Mn
100-500
Zn
50-60
Macro nutrientes %
K
Ca
1.5-2.0
1.0-1.5
Micro Nutrientes (mg/kg)
Fe
Cu
100-200
10-15
B
40-70
Mg
0.25-0.4
S
0.15-0.25
B. Riego
Se regaron las camas con las plantas madres cada dos días dependiendo de
la especie.
Cuadro 4. Riego de las plantas madres por especie.
Plantas madres
Eucalipto
Melina
Pino
Pinabete
Riego
2 / semanales
2 / semanales
1 semanal
1 semanal
El riego se realizó en las plantas madres hasta finalizar la investigación.
C. Podas
Se realizaron las podas de formación de las plantas madres cada semana
dejando que los nuevos brotes se formaran en la parte de arriba de cada planta.
Esto se realizó para que cada planta madre
produjera mayor número de
esquejes.
2.5.6 Variables de respuesta
Las variables de respuesta a medir en cada unidad experimental fueron únicamente
en el área radical, desde donde se inicio la raíz en el esqueje hasta el extremo de la
misma.
A. Variables Cuantitativas
42
a. Longitud de raíces Es la distancia promedio en centímetros desde donde
inicia a formarse la raíz en el esqueje hasta donde termina. Se midió cada raíz de
las diferentes especies forestales para determinar la longitud de cada esqueje
enraizado.
b. Peso seco de las raíces: Se cortaron las raíces de las cuatro especies
forestales y se sacó el peso húmedo de cada repetición de cada tratamiento. Se
secaron en un horno en el laboratorio de fisiología vegetal a 45 °C durante 48
horas. El material seco se pesó en una balanza, y se obtuvo el porcentaje de
materia seca de cada tratamiento. Se utilizó la siguiente fórmula:
% MS = 100- [(Peso inicial – Peso seco) ] x 100
Peso inicial
2.5.7 Análisis estadístico
Se realizó un análisis de varianza para las variables de respuesta longitud
de raíces, peso seco de las raíces.
2.5.8 Análisis cualitativo
Se efectuaron graficas, para esquematizar el porcentaje de enraizamiento,
que consistió en el número de esquejes sembrados en cada tratamiento por cada
una de las especies forestales, por el número de esquejes enraizados.
43
2.6 RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Los resultados obtenidos se presentan a continuación.
2.6.1 Porcentaje de materia seca
La primera variable de respuesta que se obtuvo fué la del porcentaje de materia seca. En
el cuadro 5 se presentan los resultados obtenidos del análisis de varianza (ANDEVA) del
porcentaje de materia seca.
Cuadro 5. Resultados del análisis de varianza (ANDEVA) del porcentaje de materia seca.
F.V.
SC
gl
CM
F
p-valor
Significancia
Factor A
182.48
3
60.83
50.85
<0.0001
**
Bloque
93.84
9
10.43
8.72
<0.0001
**
Factor B
2.33
3
0.78
0.65
0.585
NS
Factor A*Bloque
107.27
27
3.97
3.32
<0.0001
**
Factor A*Factor B
18.64
9
2.07
1.73
0.0904
NS
Error
129.18
108
1.2
Total
533.74
159
CV=37.40, CV=54.24, ** = altamente significativo, NS= no significativo.
Como se observa en el cuadro 5 correspondiente al análisis de varianza, las especies son
las que provocan diferencia significativa, no así la interacción entre las especies (eucalipto,
melina, pino y pinabete) y dosificaciones (4,000 ppm, 6,000 ppm, y 8,000 ppm). El valor
de P-valor es menor a 0.05 existe evidencia estadística que las especies generan diferente
porcentaje de materia seca.
Los resultados obtenidos de las medias del porcentaje de materia seca (gramos) del
eucalipto, melina, pino y pinabete se presentan en el cuadro 6.
Cuadro 6. Resultado de las medias del porcentaje de materia seca.
Factor A
Eucalipto
Melina
Pino
Pinabete
Medias
4.2
3.74
2.08
1.68
Tukey
A
A
B
B
Las letras iguales en tukey no muestran diferencia alguna.
44
En el cuadro 6 en donde se observa que las medias obtenidas, muestran que las especies
como el eucalipto es el que provoca mayor porcentaje de materia seca en la raíz con
4.20%, y la melina que tiene una media de 3.74% son las especies con mayor porcentaje.
El pino con 2.08% y el pinabete con 1.68% son las especies con menor porcentaje de
materia seca.
Es evidente que las especies el eucalipto y la melina presentan un mayor porcentaje de
materia seca.
2.6.2 Longitud de raíces
El cuadro 7 muestra los resultados del análisis de varianza (ANDEVA) de la longitud de
raíces de las especies evaluadas con cada una de las dosificaciones.
Cuadro 7. Resultados del Análisis de varianza (ANDEVA) de las longitudes de raíces de
las especies.
F.V.
SC
gl
CM
F
p-valor
Factor B
43.37
3
14.46
1.18
0.3222
Bloque
903.09
9
100.34
8.17
<0.0001
Factor A
3070.62
3
1023.54
83.29 <0.0001
Factor A*Bloque
919.2
27
34.04
2.77
0.0001
Factor A*Factor B
183.85
9
20.43
1.66
0.107
Error
1327.26
108
12.29
Total
6447.39
159
CV=54.24, ** = altamente significativo, NS= no significativo.
Como se puede observar en el
Significancia
NS
**
**
**
NS
cuadro 7 el análisis de varianza (ANDEVA) que se
efectuó a la longitud de las raíces de las diferentes especies, la interacción entre el factor
A que son las especies (melina, eucalipto, pino, pinabete) con el factor B que son las dosis
de auxinas (4,000 ppm, 6,000 ppm, 8,000 ppm, testigo) no
provoca diferencia
significativa, porque el valor de probabilidad es mayor al 0.05 de significancia con el que
se realizó la prueba. Esto nos indica que no hay una dosis de auxinas que provoque que
las raíces de las cuatro especies forestales tengan mayor longitud.
45
El factor que provoca las diferencias significativas es el factor A (especies), porque
su valor de probabilidad es mayor a 0.05 al que se le realizó la prueba. El comportamiento
es diferente entre las especies, como el eucalipto es una especie semi leñosa, la raíz que
se obtiene es mucho más larga que la del pino, esto puede ser debido a las condiciones
dentro del invernadero, el eucalipto y la melina son plantas que se adaptan muy bien a
altas temperaturas, su temperatura ideal es arriba de los 25°C donde su comportamiento
es mucho mejor. Por otro lado el pino y pinabete que son especies leñosas son plantas
que necesitan temperaturas bajas y por su hábitat.
El resultado obtenido de las medias de las longitudes de raíces del eucalipto, melino, pino
y pinabete se muestran en el cuadro 8.
Cuadro 8. Resultados de las medias de las longitudes de raíces de las especies.
Factor A
Eucalipto
Melina
Pino
Pinabete
Medias
12.46
8.62
3.6
1.18
Tukey
D
C
B
A
Las letras iguales en tukey no muestran diferencia alguna
La especie que mostró una mayor longitud es el eucalipto con 12.46 cm de largo, la melina
tiene una media de 8.62 cm de largo, estas dos especies tienen un promedio similar,
ambas presentan un tallo suculento. Los promedios del pino de 3.6 cm y el pinabete de
1.18 cm se asemejan, son especies que tienen características en común son leñosas,
lignificadas y presentan resina.
46
Figura 7. Longitud de raíces de Eucalipto (Eucaliptus urograndis).
Figura 8. Longitud de raíces: A) Melina (Gmelina arborea Roxb), B) Pino (Pinus patula), C)
Pinabete (Abies guatemalensis Rehder).
47
2.6.3 Porcentaje de enraizamiento
A continuación en la figura 9 se pueden observar
enraizamiento de cada especie y cada tratamiento.
los diferentes porcentajes de
120%
100%
80%
Tr1
60%
Tr2
Tr3
40%
Tr4
20%
0%
Eucalipto
Melina
Pino
Pinabete
Figura 9. Porcentajes de enraizamiento de cada especie y las diferentes concentraciones
de auxinas
En la figura 9 se muestra el eucalipto con la primera dosis de ácido indolbutírico muestra
un porcentaje de enraizamiento del 90% a una concentración de auxinas de 4,000 ppm,
sin embargo es la única dosis que presenta diferencia en cuanto al enraizamiento ya que
la dosis de 6,000 ppm (TR2) la de 8,000 ppm (TR3) y el testigo (TR4) muestran los
porcentajes más altos, por lo que para esta especie sin aplicación de ácido indolbutírico el
enraizamiento es exitoso, debido a las condiciones dentro del invernadero, que son alta
humedad relativa y temperatura alta.
La melina es una especie de fácil enraizamiento con aplicación de ácido indolbutírico y sin
aplicación. En la figura 9 se observa que en la primera dosis de 4,000 ppm de ácido
indolbutírico la barra muestra que el enraizamiento es de 100%, con la dosis de 6,000 ppm
el porcentaje fue de 100%, y con la dosis más alta de 8,000 ppm de ácido indolbutírico fue
de 100%, sin embargo sin ninguna aplicación de ácido indolbutírico la melina es una
48
especie que enraíza muy bien, tanto que influye las dosis de ácido si no que las
condiciones dentro del invernadero para el enraizamiento.
El pino muestra diferencia con respecto a la aplicación de ácido indolbutírico,
comparándola con el testigo si hay diferencia.
La primera dosis de auxinas 4,000 ppm (TR1) de ácido indolbutírico muestra un porcentaje
de enraizamiento de 30%, la dosis de 6,000 ppm (TR2), muestra un porcentaje de
enraizamiento de 30% al igual que la mayor dosis 8,000 ppm. El testigo si muestra una
diferencia en el porcentaje de enraizamiento con 10%, con respecto a las dosis de ácido
indolbutírico, por lo que si hay diferencias con la aplicación de las dosis de auxinas.
Los tratamientos TR1, TR2, TR3 no presentan diferencias entre éstos, por lo que se
pueden aplicar una de éstas (4,000 ppm, 6,000 ppm, 8,000ppm) para su enraizamiento.
El pinabete muestra en la primera dosis 4,000 ppm (TR1) un porcentaje de
enraizamiento de 10%, la segunda dosis 6,000 ppm (TR2) con un 20% y la dosis más alta
8,000 ppm (TR3) 20%, la testigo con un 20%, no hay ninguna diferencia significativa entre
las dosis, el porcentaje de enraizamiento en el testigo presenta poca diferencia con
respecto a las dosis de auxinas.
49
2.7 CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
2.7.1 CONCLUSIONES
a) Se estableció un procedimiento para
la propagación de vegetativa del
eucalipto, melina, pino y pinabete. Después del corte de los brotes o esquejes de
las plantas madres de cada una de las especies mencionadas, se siembran y
luego se llevan al invernadero de enraizamiento en donde se brindan las
condiciones necesarias para obtener un enraizamiento exitoso.
Las condiciones que se manejan dentro del invernadero son alta humedad
relativa, esta se alcanza con humedad directa, se alcanza por medio de riego
nebulizado, y la temperatura la proporciona el invernadero. Por lo que el tiempo
que los esquejes o brotes desde el día de su corte pasan de 30 a 35 días donde
emiten sus raíces. Luego de esta etapa se trasladan los esquejes enraizados a
otra fase en donde se lleva a la aclimatación antes de ser llevados a campo, en
esta área se proporciona sombra y humedad directa por el riego nebulizado, sin
humedad relativa alta y la primera fertilización.
La etapa siguiente los esquejes o plántulas no llevan sombra, por lo tanto les da
el sol directo y esto ayuda al endurecimiento de las especies, en esta etapa ya
llevan fertilizaciones semanales y es la última antes de ser llevados a campo.
b)
Se determinó que las concentraciones de auxinas utilizadas no provocan
diferencias significativas en las raíces, sin embargo las medias de las longitudes
de raíces, indican que la especie con mayor longitud de raíces es el eucalipto
con 12.46 cm, con el tratamiento 2, 6,000 ppm, la melina con 8.62 cm, en el
tratamiento 1, con la dosis de 4,000 ppm el pino con 3.6 cm, en el tratamiento 3,
con la dosis de 8,000 ppm y el pinabete 1.18 cm, con el tratamiento 4, el testigo.
c) Se determinó que los días óptimos para llevar a campo un esqueje o brote,
de las cuatro especies forestales, desde el corte de las plantas madres hasta,
una planta endurecida son de 70 días.
50
2.7.2 RECOMENDACIONES
a)
Realizar nuevas investigaciones en donde solo se evalué una sola especie
con otras dosis de ácido indobutírico y en las variables de respuesta tomar el
número de hojas de los esquejes.
b)
Para el pino y pinabete enraizaron con temperaturas menores de 25°C.
Investigar rangos de temperaturas diferentes.
51
2.8 BIBLIOGRAFÍA
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54
2.9 ANEXO
Cuadro 9A. Resultados de las longitudes de raíces por tratamiento
Factor B
Factor A
Especie
Bloques
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Tr1
Eucalipto
14.50
13.00
15.30
13.20
14.50
2.70
15.50
13.00
2.00
0.00
Tr1
Melina
10.60
9.00
10.00
11.50
10.00
11.50
10.00
4.50
5.50
7.50
Tr1
Pino
13.00
9.00
12.00
14.50
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
Tr1
Pinabete
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
Tr2
Eucalipto
13.30
14.20
20.00
6.50
16.80
9.50
15.50
17.00
12.60
17.00
Tr2
Melina
11.00
6.50
9.50
8.00
6.50
9.00
7.00
5.50
7.00
7.60
Tr2
Pino
13.00
15.00
13.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
Tr2
Pinabete
3.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
Tr3
Eucalipto
23.00
14.50
13.50
12.20
16.50
14.00
12.50
12.60
14.00
0.50
Tr3
Melina
8.50
13.00
6.50
11.00
5.50
10.00
11.00
10.50
8.00
5.00
Tr3
Pino
17.00
19.00
15.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
Tr3
Pinabete
9.50
6.50
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
Tr4
Eucalipto
7.20
15.00
5.50
14.60
10.50
20.00
15.50
12.70
16.50
1.50
Tr4
Melina
8.50
7.00
8.50
7.50
8.00
8.50
10.00
10.00
9.00
11.00
Tr4
Pino
12.50
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
Tr4
Pinabete
14.50
13.50
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
0.00
55
Cuadro 10A. Resultados del porcentaje de materia seca.
Tratamiento
Especie
Bloque
Peso húmedo
Peso seco
% MS
Tr1
Eucalipto
1
0.2
0.02
10.000
Tr1
Eucalipto
2
0.19
0.015
7.890
Tr1
Eucalipto
3
0.3
0.023
7.670
Tr1
Eucalipto
4
0.17
0.016
9.410
Tr1
Eucalipto
5
0.11
0.013
11.820
Tr1
Eucalipto
6
0.01
0.002
20.000
Tr1
Eucalipto
7
0.21
0.001
0.480
Tr1
Eucalipto
8
0.025
0.009
36.000
Tr1
Eucalipto
9
0.026
0.008
30.770
Tr1
Eucalipto
10
0
0
0
Tr1
Melina
1
0.53
0.05
9.434
Tr1
Melina
2
0.59
0.043
7.288
Tr1
Melina
3
0.22
0.023
10.455
Tr1
Melina
4
0.8
0.059
7.375
Tr1
Melina
5
0.47
0.034
7.234
Tr1
Melina
6
1.03
0.082
7.961
Tr1
Melina
7
0.72
0.058
8.056
Tr1
Melina
8
0.15
0.02
13.333
Tr1
Melina
9
0.32
0.034
10.625
Tr1
Melina
10
0.51
0.042
8.235
Tr1
Pino
1
0.13
0.035
26.923
Tr1
Pino
2
0.13
0.017
13.077
Tr1
Pino
3
0.21
0.029
13.81
Tr1
Pino
4
0
0
0
Tr1
Pino
5
0
0
0
Tr1
Pino
6
0
0
0
Tr1
Pino
7
0
0
0
56
Continuación cuadro 10A.
Tratamiento
Especie
Bloque
Peso húmedo
Peso seco
% MS
Tr1
Pino
8
0
0
0
Tr1
Pino
9
0
0
0
Tr1
Pino
10
0
0
0
Tr1
Pinabete
1
0
0
0
Tr1
Pinabete
2
0
0
0
Tr1
Pinabete
3
0
0
0
Tr1
Pinabete
4
0
0
0
Tr1
Pinabete
5
0
0
0
Tr1
Pinabete
6
0
0
0
Tr1
Pinabete
7
0
0
0
Tr1
Pinabete
8
0
0
0
Tr1
Pinabete
9
0
0
0
Tr1
Pinabete
10
0
0
0
Tr2
Eucalipto
1
0.19
0.017
8.947
Tr2
Eucalipto
2
0.027
0.011
40.741
Tr2
Eucalipto
3
0.17
0.015
8.824
Tr2
Eucalipto
4
0.022
0.005
22.727
Tr2
Eucalipto
5
0.26
0.018
6.923
Tr2
Eucalipto
6
0.13
0.012
9.231
Tr2
Eucalipto
7
0.17
0.013
7.647
Tr2
Eucalipto
8
0.34
0.024
7.059
Tr2
Eucalipto
9
0.24
0.014
5.833
Tr2
Eucalipto
10
0.031
0.016
51.613
Tr2
Melina
1
0.98
0.068
6.939
Tr2
Melina
2
0.53
0.036
6.792
Tr2
Melina
3
0.4
0.03
7.5
Tr2
Melina
4
0.67
0.048
7.164
Tr2
Melina
5
0.17
0.011
6.471
Tr2
Melina
6
1.25
0.073
5.84
Tr2
Melina
7
0.45
0.02
4.444
Tr2
Melina
8
0.56
0.038
6.786
Tr2
Melina
9
0.9
0.071
7.889
Tr2
Melina
10
0.44
0.03
6.818
Tr2
Pino
1
0.19
0.039
20.526
Tr2
Pino
2
0.16
0.024
15
Tr2
Pino
3
0.14
0.026
18.571
57
Continuación cuadro 10A.
Tratamiento
Especie
Bloque
Peso húmedo
Peso seco
% MS
Tr2
Pino
4
0
0
0
Tr2
Pino
5
0
0
0
Tr2
Pino
6
0
0
0
Tr2
Pino
7
0
0
0
Tr2
Pino
8
0
0
0
Tr2
Pino
9
0
0
0
Tr2
Pino
10
0
0
0
Tr2
Pinabete
1
0.11
0.021
19.09
Tr2
Pinabete
2
0
0
0
Tr2
Pinabete
3
0
0
0
Tr2
Pinabete
4
0
0
0
Tr2
Pinabete
5
0
0
0
Tr2
Pinabete
6
0
0
0
Tr2
Pinabete
7
0
0
0
Tr2
Pinabete
8
0
0
0
Tr2
Pinabete
9
0
0
0
Tr2
Pinabete
10
0
0
0
Tr3
Eucalipto
1
0.23
0.022
9.565
Tr3
Eucalipto
2
0.1
0.01
10
Tr3
Eucalipto
3
0.21
0.014
6.667
Tr3
Eucalipto
4
0.2
0.016
8
Tr3
Eucalipto
5
0.27
0.018
6.667
Tr3
Eucalipto
6
0.1
0.01
10
Tr3
Eucalipto
7
0.1
0.018
18
Tr3
Eucalipto
8
0.22
0.022
10
Tr3
Eucalipto
9
0.15
0.015
10
Tr3
Eucalipto
10
0.017
0.001
5.882
Tr3
Melina
1
0.62
0.048
7.742
Tr3
Melina
2
0.73
0.063
8.63
Tr3
Melina
3
0.5
0.043
8.6
Tr3
Melina
4
0.94
0.085
9.043
Tr3
Melina
5
0.36
0.03
8.333
Tr3
Melina
6
0.77
0.06
7.792
Tr3
Melina
7
0.64
0.065
10.156
Tr3
Melina
8
0.59
0.043
7.288
Tr3
Melina
9
0.6
0.033
5.5
58
Continuación cuadro 10A.
Tratamiento
Especie
Bloque
Peso húmedo
Peso seco
%MS
Tr3
Melina
10
1.2
0.139
1.583
Tr3
Pino
1
0.14
0.047
33.571
Tr3
Pino
2
0.28
0.045
16.071
Tr3
Pino
3
0.16
0.022
13.75
Tr3
Pino
4
0
0
0
Tr3
Pino
5
0
0
0
Tr3
Pino
6
0
0
0
Tr3
Pino
7
0
0
0
Tr3
Pino
8
0
0
0
Tr3
Pino
9
0
0
0
Tr3
Pino
10
0
0
0
Tr3
Pinabete
1
0.19
0.059
31.052
Tr3
Pinabete
2
0.21
0.079
37.619
Tr3
Pinabete
3
0
0
0
Tr3
Pinabete
4
0
0
0
Tr3
Pinabete
5
0
0
0
Tr3
Pinabete
6
0
0
0
Tr3
Pinabete
7
0
0
0
Tr3
Pinabete
8
0
0
0
Tr3
Pinabete
9
0
0
0
Tr3
Pinabete
10
0
0
0
Tr4
Eucalipto
1
0.009
0.0009
10
Tr4
Eucalipto
2
0.13
0.01
7.692
Tr4
Eucalipto
3
0.02
0.001
5
Tr4
Eucalipto
4
0.22
0.007
3.182
Tr4
Eucalipto
5
0.13
0.01
7.692
Tr4
Eucalipto
6
0.24
0.025
10.417
Tr4
Eucalipto
7
0.029
0.003
10.345
Tr4
Eucalipto
8
0.14
0.013
9.286
Tr4
Eucalipto
9
0.17
0.017
10
Tr4
Eucalipto
10
0.015
0.001
6.667
Tr4
Melina
1
0.69
0.059
8.551
Tr4
Melina
2
0.8
0.052
6.5
Tr4
Melina
3
0.21
0.014
6.667
Tr4
Melina
4
0.1
0.011
11
Tr4
Melina
5
0.58
0.04
6897
59
Continuación cuadro 10A.
Tratamiento
Especie
Bloque
Peso húmedo
Peso seco
%MS
Tr4
Melina
6
0.76
0.055
7.237
Tr4
Melina
7
0.35
0.028
8
Tr4
Melina
8
0.8
0.045
5.625
Tr4
Melina
9
1.16
0.069
5.948
Tr4
Melina
10
0.65
0.046
7.077
Tr4
Pino
1
0.05
0.01
20
Tr4
Pino
2
0
0
0
Tr4
Pino
3
0
0
0
Tr4
Pino
4
0
0
0
Tr4
Pino
5
0
0
0
Tr4
Pino
6
0
0
0
Tr4
Pino
7
0
0
0
Tr4
Pino
8
0
0
0
Tr4
Pino
9
0
0
0
Tr4
Pino
10
0
0
0
Tr4
Pinabete
1
0.16
0.029
18.125
Tr4
Pinabete
2
0.33
0.15
45.45
Tr4
Pinabete
3
0
0
0
Tr4
Pinabete
4
0
0
0
Tr4
Pinabete
5
0
0
0
Tr4
Pinabete
6
0
0
0
Tr4
Pinabete
7
0
0
0
Tr4
Pinabete
8
0
0
0
Tr4
Pinabete
9
0
0
0
Tr4
Pinabete
10
0
0
0
60
Cuadro 11A. Resultados del porcentaje de enraizamiento
Factor A
Factor B
Especies
Tratamiento
Eucalipto
Melina
Pino
Pinabete
Tr1
90%
100%
30%
0%
Tr2
100%
100%
30%
10%
Tr3
100%
100%
30%
20%
Tr4
100%
100%
10%
20%
Cuadro 12A. Análisis de Varianza porcentaje de materia seca
Variable
N
R²
R² Aj
CV
%Materia seca
160
0.8
0.64
37.4
SC
gl
CM
F
p-valor
Modelo
F.V.
404.56
51
7.93
6.63
<0.0001
Factor A
182.48
3
60.83
50.85
<0.0001
Bloque
93.84
9
10.43
8.72
<0.0001
Factor B
2.33
3
0.78
0.65
0.585
Factor A*Bloque
107.27
27
3.97
3.32
<0.0001
Factor A*Factor B
18.64
9
2.07
1.73
0.0904
Error
129.18
108
1.2
Total
533.74
159
Cuadro 13A. Prueba de tukey del análisis de varianza del porcentaje de materia
seca.
Factor A
Medias
n
Tukey
Melina
3.74
40
Eucalipto
4.2
40
Pinabete
1.68
40
A
Pino
2.08
40
A
B
B
61
Cuadro 14A. Análisis de varianza de las longitudes de raíces.
Variable
longitud de raíces
F.V.
N
R²
R² Aj
CV
160
0.79
0.7
54.24
SC
gl
CM
F
p-valor
Modelo
5120.13
51
100.39
8.17
<0.0001
Factor B
43.37
3
14.46
1.18
0.3222
Bloque
903.09
9
100.34
8.17
<0.0001
Factor A
3070.62
3
1023.54
83.29
<0.0001
Factor A*Bloque
919.2
27
34.04
2.77
0.0001
Factor A*Factor B
183.85
9
20.43
1.66
0.107
Error
1327.26
108
12.29
Total
6447.39
159
Cuadro 15A. Prueba de tukey del análisis de varianza de la longitud de raíces.
Factor A
Medias
n
Eucalipto
12.46
40
Melina
8.62
40
Pino
3.6
40
Pinabete
1.18
40
Tukey
D
C
B
A
62
CAPÍTULO III
SERVICIOS REALIZADOS EN LA EMPRESA “PILONES DE ANTIGUA S.A.”
63
3.1 PRESENTACIÓN
En este capítulo se describe sobre el mantenimiento del área de enraizamiento de
la propagación vegetativa, en el cual se detalla sobre los principales factores que influyen
como, la esterilización del invernadero se realiza todas las semanas para evitar el inoculo
de algún patógeno, la desinfección de las bandejas, tubetes y la aplicación de productos
químicos para evitar las algas.
Otro factor muy importante que se debe tomar en cuenta en el área de
enraizamiento es la limpieza de los nebulizadores, esto dependerá que la brisa sea fina y
evitara la deshidratación de los esquejes. El mantenimiento de los controladores que es
esencial para que el área de enraizamiento se mantenga húmeda y evitar cambios
bruscos en la humedad, que puedan afectar.
La temperatura, la humedad relativa es lo esencial en esta área de enraizamiento,
de esto depende el éxito del enraizamiento.
En este manual se describe el mantenimiento y los cuidados que se deben realizar
como por ejemplo, la temperatura, el riego, la humedad relativa, controlador de riego etc.
Para poder facilitar el enraizamiento de cualquier especie.
64
3.2 Mantenimiento del área de enraizamiento para la propagación vegetativa
3.2.1 OBJETIVOS
Colaborar con el proceso del mantenimiento del área de enraizamiento para la
propagación vegetativa, aportando un manual, el cual detalle lo que se debe realizar para
obtener un exitoso enraizamiento y mantener el área de enraizamiento libre de patógenos
y funcionando de una forma optima.
3.2.2 METODOLOGÍA
A. Prevención fitosanitaria
a. Esterilización
Este proceso se lleva a cabo todas semanas para tener esterilizado el invernadero,
esto se realiza por el manejo de altas humedades y que es muy propicio para el desarrollo
de algún patógeno en los esquejes de los diferentes cultivos que se manejan dentro de
este invernadero.
El esterilizado se lleva a cabo todos los lunes con la aplicación de un producto fungicida a
base de iodo etanol (alcohol polioxi- etileno), esto para contrarrestar e evitar algún tipo de
patógeno dentro del invernadero.
b. Plagas
La principal plaga que afecta dentro del invernadero es la araña roja (Tetranychus
urticae). El control de plagas se lleva a cabo en forma semanal con la rotación de algunos
de los siguientes insecticidas a base de:
Avermectina Abamectin
Aceite vegetal
Ketoenol Spiromesifen
65
Se realiza estas aplicaciones para prevención de algún ataque de la araña a los esquejes
de las diferentes especies.
c. Patógenos
Es importante mantener el invernadero libre de cualquier tipo de algas, puede verse
afectado, el enraizamiento de los esquejes de eucalipto, melina, pino y pinabete. El
invernadero por la humedad relativa alta y la sombra que tiene favorece a la formación de
algas, este es un medio ideal para la proliferación de hongos y otros patógenos, por lo que
deben seguirse todas las medidas posibles de desinfección y prevención. Por consiguiente
es importante el control de la misma. Las aplicaciones se realizan una vez semanalmente
con dos productos, a base de cloro y cobre.
Las bandejas plásticas y los tubetes se lavan y se desinfectan con productos a base de
cobre y cloro, antes de la siembra de los esquejes que posteriormente ingresan al
invernadero.
La melina Gmelina arborea Roxb), Eucalipto (Eucaliptus urograndis), pino (Pinus patula) y
Pinabete (Abies guatemalensis Rehder), son especies sensibles a patógenos, se debe
realizarse cada semana una aplicación de un fungicida dentro del invernadero con fines de
prevención de problemas fitosanitarios. Se debe procurar alternar diferentes productos con
el fin de lograr un mayor espectro de cobertura.
Figura 10: Manchas de alga en el área de enraizamiento.
66
B. Riego
a. Nebulizadores
Los nebulizadores son importantes, la parte principal del invernadero, propician la brisa
para mantener la humedad relativa e evitar la deshidratación de los esquejes de las
diferentes especies.
La formación de algas en los nebulizadores da mucho problema, tapa los nebulizadores y
afecta la brisa de los mismos. Se realiza una limpieza manual de los nebulizadores cada
30 días. La limpieza se realiza por la tarde a las 4:00 pm, a esta hora la humedad relativa
dentro del invernadero es alta por lo que no se necesita la brisa, mientras se realiza la
limpieza de los nebulizadores.
Se retiran los nebulizadores con su respectivo filtro, se desarman y luego con las piezas
desarmadas de cada uno de los nebulizadores, excepto los filtros, se colocan y se
sumergen en acido fosfórico a una dosis de 25 cc/lt.
Los filtros se dejan en acido fosfórico pero en menor dosis 12 cc/lt de acido fosfórico.
Ambos se dejan durante toda la noche hasta al otro día, para un total de 14 horas.
Se limpian cada una de las partes, con un cepillo pequeño en donde el acido fosfórico no
haya removido las algas. Se procede a armar los nebulizadores con su filtro etc. Se
instalan los nebulizadores, para ponerlos a funcionar lo más ante posible ya que los
esquejes no pueden permanecer mucho tiempo sin brisa y el invernadero sin humedad.
67
Figura 11: nebulizadores sucios con algas.
Figura 12: A) Nebulizador desarmado, B) Nebulizador limpio.
b. Filtro
El filtro con el que se cuenta es de anillos, este se encuentra afuera del invernadero, es
importante, este no deja pasar ningún tipo de arena o sedimento que provienen del
reservorio y ayuda a que no se tapen los nebulizadores.
El filtro se debe limpiar 3 veces por semana y una vez por semana dejarlo en acido
fosfórico en la dosis de 25cc/lt. para su limpieza, esto nos evitara que los nebulizadores
no se tapen y tenga la brisa más fina para poder tener un enraizamiento exitoso.
68
c. Controladores
El mantenimiento de los controladores de riego, se deben de supervisar cada 30
días. Se debe revisar que los componentes del controlador de riego presenten buenas
condiciones, la batería debe estar funcionando bien, esta por lo general se debe cambiar
cada 30 días. Donde se encuentra el selenoide y la válvula, se debe de realizar una
limpieza para evitar partículas de sedimentos en los mismo, estás se realizan con un
cepillo pequeño agua y jabón.
C. Temperatura y humedad relativa
La temperatura y la humedad relativa dentro del área de enraizamiento es lo
importante, esto va depender del éxito del enraizamiento de los esquejes de los diferentes
especies pino, melina, eucalipto y pinabete.
a. Temperatura
La temperatura es importante y se debe de tener un buen control, a temperaturas
muy altas se deben levantar cortinas para que no se deshidraten los esquejes, se debe
realizar esto pero con precaución para que la humedad relativa no baje tanto. Cuando se
presenten temperaturas muy bajas las cortinas de afuera del invernadero deben
permanecer cerradas para aumentar la temperatura.
b. Humedad relativa
La humedad relativa se maneja junto con la temperatura, a mayor temperatura
menos humedad relativa, y con temperaturas bajas es mayor la humedad relativa.
Por lo general los nebulizadores se encienden de 8:00 am a 4:00 pm, la humedad después
de las 4:00pm es de 99% por lo que no es necesario mantener la brisa.
Es muy importante llevar un historial de temperaturas y humedad relativa por lo que
es necesario tomar temperaturas en la mañana para ver el comportamiento durante la
noche, y en la tarde para revisar el comportamiento de la temperatura y humedad relativa
durante el día.
69
En las noches si la temperatura es menor de 20°C se debe de dejar calentadores, para
que los esquejes no sufran estrés.
Figura 13: Área de enraizamiento.
3.2.3 EVALUACIÓN
Se estableció el manual para el mantenimiento del área de enraizamiento de la
propagación vegetativa de la melina (Gmelina arborea Roxb), Eucalipto (Eucaliptus
urograndis), pino (Pinus patula) y Pinabete (Abies guatemalensis Rehder), con el objetivo
de obtener un exitoso enraizamiento, con el buen manejo de prevención de hongos, algas
etc. un riego nebulizado con una brisa fina y adecuada y el manejo de la temperatura y
humedad relativa que es un factor muy importante en el enraizamiento de estas especies.
Se espera que sea una fuente de consulta práctica para poder llevar a cabo el
mantenimiento de esta área, ayudara a la producción de la propagación vegetativa de las
cuatro especies forestales.