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Desarrollo de Herramientas Genómicas para mejorar el impacto económico de los Programas de Mejoramiento en Acuicultura Jean Paul Lhorente1, José Manuel Yáñez1,2, Roberto Neira1,3, Marcelo Araneda 1. 1 Aquainnovo, 2Facultad de Cs. Veterinarias y Pecuarias, Universidad de Chile, 3 Facultad Cs Agronómicas, Universidad de Chile Antecedentes Generales En un esfuerzo conjunto de Empresas AquaChile y la Universidad de Chile, apoyado por InnovaChile a través de la línea de proyectos Consorcio (07CTE-01), en el año 2007 se crea Aquainnovo como plataforma tecnológica focalizada en el mejoramiento genético aplicado a la acuicultura y abierta a la industria. En un inicio se invirtieron importantes recursos en formar un equipo de trabajo de excelencia constituido por profesionales nacionales con experiencia en producción acuícola y formación de postgrado; desarrollar una red de trabajo internacional; implementar un laboratorio de biología molecular y una estación experimental (actualmente ubicada en el sector del Río Lenca), que hoy constituyen nuestra base de trabajo para soportar programas de mejoramiento genético en acuicultura al más alto nivel tecnológico. La industria ha enfrentado problemas sanitarios importantes, donde Piscirickettsia salmonis y Caligus rogercresseyi son los patógenos que generan las mayores pérdidas económicas (Leal & Woywood, 2007; Rozas & Asencio, 2007). Aquainnovo inició sus operaciones focalizado en el desarrollo de herramientas genómicas para realizar selección por resistencia a SRS y Caligidosis. Durante los primeros 3 años nos focalizamos en el desarrollo de protocolos de desafíos controlados contra estos dos patógenos en salmón del Atlántico, que luego ha sido ampliado para IPNv e ISAv, y también a trucha Arcoíris y salmón Coho, los cuales constituyen una de las actividades principales de nuestra estación experimental. En vinculación con los programas de mejoramiento que opera Empresas AquaChile en las tres especies de salmónidos, se han estandarizado los procedimientos para la obtención de los fenotipos de resistencia para P. salmonis, C. rogercresseyi e IPNv. Esta información se utilizó para realizar los análisis genéticos que permiten evaluar la factibilidad de seleccionar genéticamente estos rasgos. Además, a partir de los desafíos experimentales realizados, se han colectado las muestras de tejidos que permitirán obtener información de los peces a partir de su DNA. Todas estas fuentes de información, constituyen la materia prima necesaria para la implementación de selección genómica. Gracias a que Chile formó parte del Consorcio Internacional por la secuenciación del genoma del salmón del Atlántico (International Cooperation to Sequence the Atlantic Salmon Genome - ICSASG), Aquainnovo ha tenido acceso en tiempo real a la información de la secuencia del genoma que este consorcio ha liberado. Sobre la base de esta información, a la competencia del equipo de trabajo, inversión de fondos de la empresa y proyectos concursables (Innova-Chile CORFO 12PIE17669 y 11IEI-12843) nuestra compañía ha logrado desarrollar chip de SNPs (single nucleotide polymorphisms) de alta (AQUASALAR 200K SNP-CHIP®) y mediana densidad (AQUASALAR 50K SNP-CHIP®) para implementar selección genómica y selección asistida por marcadores (MAS) para resistencia a Caligidosis, SRS e IPN en salmón del Atlántico, respectivamente. A continuación presentamos los principales resultados que en este camino hemos generado para la industria acuícola. Contribuciones Científicas y Tecnológicas 1.- Resistencia Genética a enfermedades La resistencia es la habilidad que un individuo hospedero tiene para resistir el proceso de infección o controlar el ciclo de vida del patógeno (Bishop, 2002). El fenotipo individual de resistencia más utilizado en salmónidos para enfermedades que causan mortalidad es la condición vivo (0) o muerto (1) de distribución binomial. Otra forma de medir el fenotipo de resistencia, es el tiempo a la falla o muerte, que se considera desde el inicio de un periodo de evaluación o desafío hasta el momento de la falla u ocurrencia de la muerte (Ducrocq et al., 2010), el cual ha sido incorporado en los análisis genéticos a través de análisis de sobrevivencia. En caso de parásitos la resistencia se mide como nivel de parásitos por pez a un estado de desarrollo dado o parásitos por unidad de tamaño de pez (Gjerde et al., 2011; Lhorente et al., 2011). El método usual para evaluar resistencia es el desafío de peces con genealogía conocida y marcados individualmente, con un patógeno específico bajo condiciones controladas, que permita lograr una curva de mortalidad entre el 30 -50%. Los métodos utilizados han sido por inyección intraperitoneal (IP) principalmente en bacterias o cohabitación en el caso de virus para salmónidos. Métodos de desafío por inyección Intraperitoneal (IP) y cohabitación han sido desarrollados en bacterias y virus, respectivamente para evaluar resistencia genética en salmónidos. Caligus: Los desafíos experimentales Figura 1: Curva de Mortalidad de desafíos de familias a Piscirickettsia salmonis para salmón del Atlantico, Coho y trucha Arcoiris. SRS: Protocolos de desafío para SRS han sido desarrollados y perfeccionados por Aquainnovo en la Estación Experimental Lenca, utilizando el método de IP para peces en estados esmolt para salmón del Atlántico y Coho (Yañez et al., 2014,a) y trucha Arcoíris. Sobre la base de poblaciones genealogizadas y bajo condiciones controladas de agua de mar (desinfectada y a 15 °C), se logra una mortalidad acumulada entre 35-60% en un periodo de 35-40 días como se indica en la Figura 1. Simulando condiciones de infección a SRS mas reales, se implementó un protocolo de desafío a SRS por cohabitación en co-infección con Caligus a diferentes presiones de infestación (Figura 1), en el que se comprobó que la presencia del piojo induce la presencia de mayor mortalidad por SRS (≈ 100%) en relación a una infección específica (42%) y cambia el performance de resistencia de las familias al comparar con una infección solo por P. salmonis (Lhorente et al., 2014). con piojo de mar se realizan exponiendo a los peces por baño a una presión de infestación definida como número de estados infestivos por pez, en estanques con flujo detenido con agua de mar y 13-15 °C (Lhorente et al., 2011). En estudios preliminares logramos definir que el rango más adecuado de infestación están entre 50 y 100 copépodos por pez (Araya et al., 2011), con tasas de infestación del orden del 20-40 % para salmón del Atlántico y trucha Arcoiris. Debido a que posee una heredabilidad más alta, es de más fácil proceso y medición, y más del 90% del conteo se encuentran en las aletas, el fenotipo más adecuado para evaluar la resistencia es el conteo de cáligus por pez en estado sésil (Chalimus 2-3) en las aletas de peces esmolt (Figura 2), el cual se logra 6-8 días postinfestación. (Lhorente et al., 2011). No obstante, la alta proporción de parásitos en estado sésil debe ser revisada en cada ensayo, para validar el fenotipo. Parámetros Genéticos: En relación a los desafíos realizados, en las tres especies se evidenciado la presencia de variación genética a explotar mediante selección (Tabla 1) y que constituye el requisito básico para poder implementar selección genómica a través del uso de micro arreglos de alta densidad (Chip de SNPs). Tabla 1. Heredabilidad para resistencia a SRS y Cáligus para salmón del Atlántico. Rasgo Fenotipo h2 (EE) Referencia Mortalidad (0-1) 0.22 (0.07) Lhorente, 2012 0.15 (0.03) Yañez et al., 2013 0.24 (0.04) Yañez et al., 2014 Tiempo (días) a la muerte (PHFM1) 0.25-0.40 Yañez et al., 2014a Conteo parásitos adultos/pez 0.06 (0.06) Lhorente et al. 2011 Conteo parásitos chalimus/pez 0.34 (0.07) Lhorente et al., 2011 Conteo parásitos chalimus/pez 0.10 (0.03) Yañez et al., 2014a Resistencia a SRS Resistencia a Cáligus 1 Figura 2. Variación familiar de N° Chalimus III /pez de salmón del Atlántico. Proportional Hazard Frailty Model. Los estudios realizados por Yáñez et al. (2014a) también evidencian que no hay correlación genética entre resistencia a SRS y Cáligus; y que existen correlaciones favorables entre peso de cosecha y estos dos rasgos, en el sentido de que peces de mayor crecimiento tienden a ser más resistentes a estos dos patógenos. Ello ha permitido incluir la selección simultánea por estos tres rasgos en el programa genético de salmones Chaicas, mediante el uso de índices de selección. 2. Desarrollo de un chip de SNPs para implementar selección genómica Aquainnovo, en un esfuerzo conjunto con diversas instituciones académicas y del sector privado, tanto nacionales como internacionales (Universidad de Chile; Genus plc, USA; Marine Scotland Science, Escocia; Université Laval, Canadá; Marine Harvest, Irlanda; Camanchaca, Chile; GeneSeek, USA; Data2Bio LLC, USA; Iowa State University, USA), ha desarrollado una plataforma de genotipado de alto rendimiento para salmón del Atlántico (Yañez et al., 2014,b). El objetivo principal de este esfuerzo multidisciplinario internacional ha sido realizar un descubrimiento de SNPs de novo, teniendo en cuenta la duplicación ancestral del genoma del salmón del Atlántico y la variación genética presente en distintas poblaciones de cultivo y silvestres, para desarrollar un chip de SNPs de alta y mediana densidad, los cuales se pueden utilizar en la disección genética de rasgos complejos (resistencia a enfermedades y calidad de canal) y en el mejoramiento genético del salmón del Atlántico. La información proveniente de esta herramienta biotecnológica de última generación permitirá asistir los programas de mejoramiento genético en esta especie, mediante esquemas de selección genómica, permitiendo acelerar el progreso genético para rasgos que no pueden ser medidos directamente en los reproductores candidatos a la selección (como es el caso de la resistencia a genética a enfermedades y calidad de canal). Cerca de 10 millones de variantes del tipo SNP fueron identificados mediante la secuenciación de genoma completo y el posterior análisis in silico de las secuencias de 20 peces provenientes de distintos orígenes. Tras la aplicación de seis distintas etapas de filtrado utilizando un pipeline bio-informático diseñado para genomas duplicados, se seleccionaron 200,000 SNPs los cuales fueron impresos utilizando la tecnología Affymetrix Axiom® my Design Custom Array (AQUASALAR 200K SNP-CHIP®). Luego de genotipar 480 peces, los cuales representaban individuos silvestres y cultivados, cerca del 80% de los SNPs impresos en el chip fueron validados. En una segunda etapa se seleccionaron los mejores 50,000 SNPs para imprimir una nueva versión del chip (AQUASALAR 200K SNP-CHIP®) (Figura 3) el cual ha sido utilizado para genotipar cerca de 2,500 peces con fenotipos para resistencia a Caligidosis y otros 2,500 peces con fenotipos para resistencia a SRS. Estos peces pertenecen al núcleo de reproductores del programa de mejoramiento genético de Salmones Chaicas, el cual es manejado por Aquainnovo. De esta forma, Aquainnovo se transforma en la primera compañía en incorporar información genómica de alta resolución en los programas genéticos de salmón del Atlántico en Chile con el objetivo de mejorar la resistencia a las principales enfermedades que afectan la salmonicultura a nivel nacional. Figura 3. Chip de SNP de 200k tecnología Affymetrix desarrollado por AquaInnovo. Bibliografia Araya A., Mancilla M., Lhorente J. P., Neira R., Gallardo J. A. (2011), Experimental challenges of Atlantic salmon Salmo salar with incremental levels of copepodids of sea louse Caligus rogercresseyi: effects on infestation and early development. Aquaculture Research. doi: 10.1111/j.1365-2109.2011.02991.x Bishop S.C., 2002. Breeding for Disease Resistance: Uniting Genetics and Epidemiology. Montpellier August 12-14 2002, Ecole Nationale Supérieure Agronomique, CSAGAD. 95 p. Ducrocq V., Sölkner J., Mészáros G., 2010. The Survival Kit v6.0. User´s Manual. Gjerde B., Odegard J., Thorland I., 2011 Estimates of genetic variation in the susceptibility of Atlantic salmon (Salmo salar) to the salmon louse Lepeophtheirus salmonis. Aquaculture, 314: 66-72. Leal J., Woywood D., 2007. Piscirickettsiosis en Chile: Avances y perspectivas para su control. Salmociencia, 2 (1), Junio, 34-42. Lhorente J., Gallardo J.A., Villanueva B., Araya A.M, Torrealba D., Toledo X.E., Neira R., 2011. Quantitative genetic basis for resistance to Caligus rogercresseyi sea lice in a breeding population of Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture, 324-325: 55-59. Lhorente J., 2012. Evaluación de resistencia genpetica específica y conjunta a patógenos Caligus rogercresseyi y Piscirickettsia salmonis en salmón del Atlántico (Salmo salar). Tesis para optar al grado de Doctor en Acuicultura, Universidad de Chile. 81p. Odegard J., Olesen I., Gjerde B., Klemetsdal G., 2007. Positive genetic correlation between resistance to bacterial (furunculosis) and viral (infectious salmon anaemia) diseases in farmed Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture, 271: 173-177. Rozas M., Asencio G., 2007. Evaluacion de la SItuacion Epidemiológica de la Caligiasis en Chile: Hacia una estrategia de control efectiva. Salmociencia, 2 (1), Junio, 43-59. Yáñez J.M., Banguera R., Lhorente J.P., Oyarzún M., Neira R., 2013. Quantitative genetic variation of resistance against Piscirickettsia salmonis in Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture, 414-415: 155-159. Yáñez J.M., Lhorente J.P., Bassini L.N., Oyarzun M., Neira R., Newman S., 2014a. Genetic co-variation between resistance against Piscirickettsia salmonis, Caligus rogecresseyi and body weight in Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture, (In press). Yáñez J.M., Naswa S., López M.E., Bassini L., Cabrejos M.E., Gilbey J., Bernatchez A., Norris A., Soto C., Eisenhart J., Simpson B., Neira R., Lhorente J.P., Schnable P., Newman S., Mileham A., Deeb N., 2014b. Development of a SNP Genotyping Platform for Atlantic Salmon Accounting for Across Continents Genetic Variation. Abstract 10th World Congress in Genetic of Livestock Production (WCGALP), Vancouver 1722 August 2014.