Download compuestos bioactivos, capacidad antioxidante y aptitud para el
Document related concepts
Transcript
PARÁMETROS CINÉTICOS Y ACTIVIDAD DE LA ENZIMA POLIFENOLOXIDASA DE DISTINTAS VARIEDADES DE MANZANAS Lorena Martín; Cecilia Bernardi; Daniel Güemes; María Pirovani y Andrea Piagentini Instituto de Tecnología de Alimentos (Facultad de Ingeniería Química - U.N.L.) 1º de Mayo 3250 - (3000) Santa Fe (Argentina). e-mail: ampiagen@fiq.unl.edu.ar Resumen: Con el objetivo posterior de controlar el pardeamiento enzimático catalizado por la polifenoloxidasa (PPO) en manzanas frescas cortadas, se propone realizar una caracterización parcial de dicha enzima extraída del tejido parenquimatoso de cinco variedades de manzanas, a través de la determinación del pH óptimo de actividad, parámetros cinéticos y actividad enzimática. Se estudiaron cinco variedades de manzanas: Caricia (C), Eva (E), Granny Smith (GS), Princesa (P) y Red Delicious (RD). El pH óptimo para todas las variedades fue de 5,5. La actividad de la PPO fue significativamente mayor (p≤0,01) para RD, siguiéndole en orden decreciente P, C, E y por último GS. Los parámetros cinéticos (Vm y Km) fueron significativamente diferentes (p≤0,05) entre las diferentes variedades de manzanas. La PPO de RD presentó el mayor valor de Vm y, junto a E, la mayor afinidad por el sustrato debido a que sus Km fueron las menores (15,27 y 13,8 mM, respectivamente). El valor de Km de la PPO de GS (afinidad por el sustrato), difiere significativamente de los respectivos valores de E y RD. La PPO de GS y E presentaron los menores valores de Vm (0,09 y 0,07 abs/min, respectivamente). La eficiencia de reacción con el sustrato (Vm/Km) fue menor para GS, siguiéndole en orden creciente E, C, P y RD. Palabras claves: polifenoloxidasa, INTRODUCCIÓN La polifenoloxidasa (E.C. 1.10.3.1), PPO, es una de las enzimas más estudiadas en la industria de los alimentos ya que es la principal responsable de las reacciones de pardeamiento enzimático en frutas y hortalizas. Además, puede modificar las propiedades sensoriales, nutricionales y de calidad, en general, de frutas y hortalizas, lo cual perjudica la comercialización de un producto entero o mínimamente procesado. El mecanismo de reacción de la PPO se basa en la catálisis de dos etapas: oxidación de un monofenol a o-difenol y la subsiguiente oxidación de éste a o-quinona, actividad cresolasa y catecolasa respectivamente. La oxidación del o-difenol a o-quinona finaliza el ciclo (Belitz y Grosh, 2004). La pardeamiento, manzana, variedades. polifenoloxidasa es capaz de catalizar reacciones de oxidación de compuestos polifenólicos en presencia de oxígeno molecular y, la presencia de los compuestos oxidados por la enzima son precursores de las reacciones de pardeamiento que ocurren en los procesos de post-recolección y manipulación de frutas y hortalizas (Ayaz et al., 2007). Estas reacciones pueden ser extraordinariamente rápidas y contribuyen al desarrollo de polímeros coloreados (melaninas) pardos, oscuros, marrones y negros, al reaccionar con aminoácidos, proteínas u otras especies fenólicas. La actividad polifenoloxidásica es uno de los principales factores involucrados en el pardeamiento de manzanas (Amiot et al., 1992). La actividad enzimática y la susceptibilidad al pardeamiento difieren con la Página 1 de 6 variedad de manzana, y a pesar de que se ha estudiado la actividad PPO para muchas variedades de manzanas, no existe información sobre la caracterización cinética de las variedades Caricia, Eva y Princesa. La caracterización de la PPO es necesaria para tener medios más efectivos para controlar el pardeamiento enzimático en frutas, o para comprender mejor el mecanismo de pardeamiento bajo condiciones de almacenamiento. Como el pardeamiento enzimático de manzanas es dependiente del pH, es muy importante conocer el valor de pH óptimo de actividad de la enzima, para su control. A pesar de que la actividad PPO es insignificante al pH natural de la fruta, es suficiente para que ocasione el pardeamiento (Vámos-Vigyázó, 1981). Muchos estudios previos indican que los valores de pH óptimo de la enzima PPO pueden ser diferentes para cada variedad de manzana (Zhou et. al., 1993; Weemaes et. al., 1998; Rocha et al., 1998; Soysal, 2009). Con el objetivo posterior de controlar el pardeamiento enzimático, mediado por la PPO en éstas variedades de manzanas específicas, se llevó a cabo en el presente trabajo la caracterización cinética de la enzima PPO de las variedades Caricia, Eva y Princesa junto con las variedades comerciales Red Delicious y Granny Smith, a través de la determinación del pH óptimo para la actividad máxima de la enzima, los parámetros cinéticos Vm y Km, y la actividad polifenoloxidásica. MATERIALES Y MÉTODOS Material vegetal Se utilizaron frutos provenientes de plantas de manzanos (Malus domestica Borkh) de 5 variedades, dos de reconocida importancia comercial y de alto requerimiento de horas de frío Red Delicious (RD) y Granny Smith (GS) y 3 variedades de cultivos experimentales de bajo requerimiento de horas de frío Caricia (C), Eva (E) y Princesa (P), cultivadas en el Campo Experimental de Cultivos Intensivos y Forestales (CECIF) de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional del Litoral, en la localidad de Esperanza, provincia de Santa Fe (Argentina). Extracción de la PPO Se lavaron las manzanas con agua potable y se escurrieron sobre papel absorbente, luego se eliminó la cáscara, se descorazonaron y se cortaron en octavos. Se pesaron 100 gramos de fruta y se colocaron en buffer fosfato de potasio pH 7,2 junto con 0,375g de polivinilpirrolidona (PVP), de manera de obtener una concentración en el volumen final de extracción de 0,25% de PVP, y 4,5 ml de una solución 1:6 de Triton X-100 de manera de obtener una concentración final de 0,75% en el volumen total de extracción que fue de 150 ml. Luego se homogeneizó con un mixer durante 3 minutos a 4°C y se centrifugó durante 30 minutos a 12000 g con una centrífuga (Mistral 4L) refrigerada a 4°C. El sobrenadante se utilizó como extracto para la determinación de pH òptimo, la actividad enzimática y parámetros cinéticos de las PPO. Determinación del pH óptimo Para determinar el pH óptimo de la enzima PPO de manzana, se evaluó la actividad de la misma en un rango de pH entre 4,5 y 7. Se prepararon soluciones buffer acetato de pHs 4,5; 5,0 y 5,5; y soluciones buffer fosfato de potasio de pHs 6,0; 6,6 y 7,0 (Soysal, 2009). Dichas soluciones se utilizaron como buffer de reacción para determinar la actividad enzimática de la PPO a 405nm manteniendo fija la concentración de sustrato (catecol 50 mM para GS y RD; y 30 mM para C, E y P). Cada mezcla de reacción contenía: 1,5 ml de buffer; 0,15 ml de extracto enzimático; 0,9 ml de agua, y una cantidad específica de catecol 200 mM (0,45 ml para las variedades experimentales y 0,75 ml para las comerciales). Cada reacción se realizó por triplicado. Se graficó la absorbancia en función del tiempo de reacción a temperatura ambiente, determinando las velocidades iniciales (vi) como las pendientes de la parte lineal de cada curva (para cada pH), y luego se graficaron las vi (abs/min) en función del pH, determinándose el valor óptimo de pH para la enzima PPO, como aquel al cual se obtiene la mayor vi de reacción. Página 2 de 6 Determinación de la actividad PPO La actividad de la PPO del extracto de las manzanas fue medida a través del incremento de la absorbancia a temperatura ambiente, con un espectrofotómetro a 405nm, longitud de onda en la cual se observa la aparición del producto de oxidación del catecol, difenol utilizado como sustrato enzimático. Las mezclas de reacción contenían: 1,5 ml de buffer acetato 0,2 M pH 5,5; 0,15 ml de extracto enzimático; la cantidad adecuada de catecol 200 mM para lograr obtener la concentración final deseada de sustrato para cada determinación en el volumen de reacción (5 a 30 mM); completando a 3ml con la cantidad necesaria de agua destilada. Las reacciones se realizaron por triplicado y se utilizó como blanco, la mezcla buffer acetato, agua destilada y extracto enzimático, la cual no desarrolló color durante la realización de ninguno de los ensayos. Las velocidades iniciales (vi) de reacción se calcularon a partir de las pendientes de las partes lineales de las gráficas de absorbancia en función del tiempo para cada concentración de sustrato utilizada. Se definió una unidad de actividad PPO (U) como el incremento en 0,001 unidades de absorbancia por minuto (Zhou et al., 1993; Carbonaro y Mattera, 2001; Dincer et al., 2002). Los resultados fueron expresados también en unidades de actividad PPO (U) por 100 gramos de fruta fresca (Fang et al., 2007), y por mililitro de extracto enzimático (Rocha et al., 1998; Ni Eidhin et al., 2006), bajo condiciones experimentales. Determinación de parámetros cinéticos de la PPO Para la determinación de los parámetros cinéticos, constante de Michaelis-Menten (Km) y velocidad máxima (Vm), se midió la actividad de la PPO a diferentes concentraciones del sustrato catecol (desde 5 a 30 mM) durante 10 minutos de reacción y por triplicado para cada concentración de sustrato. Los valores de Km y Vm de la PPO, de las distintas variedades de manzana, se calcularon utilizando el método de Lineweaver y Burk (1934) en el cuál se grafica la inversa de las velocidades iniciales, en función de la inversa de las concentraciones de catecol utilizadas en cada mezcla de reacción (Soysal, 2009). Análisis estadístico Se aplicó el análisis de la varianza a los resultados obtenidos, y el test de Duncan para la comparación de medias, utilizando el programa estadístico Statgraphic Plus 5.1. RESULTADOS Y DISCUSIÓN pH óptimo de la enzima PPO de cinco variedades de manzanas La actividad máxima en todas las variedades de manzanas se registró a pH 5,5 según puede observarse en las Figura 1. Se ha estudiado el pH óptimo de la enzima PPO, en muchos trabajos de investigación, y el mismo varía para cada variedad de manzana. Es así que se encontró que el pH óptimo para la variedad de manzana Monroe fue 4,6 (Zhou et. al., 1993) utilizando metil-catecol, mientras que para la variedad Golden fue 6 (Weemaes et. al., 1998) utilizando catecol como sustrato. Rocha et al. (1998) determinaron que el pH óptimo la PPO de manzana variedad Starking fue 6,5 utilizando catecol como sustrato enzimático. Soysal (2009) determinó para la variedad Golden Delicious un pH óptimo de 5,5 utilizando metil-catecol como sustrato enzimático, coincidiendo con el valor determinado en nuestro trabajo para todas las variedades de manzanas estudiadas. Página 3 de 6 Vi (abs/min) 0.25 Vi (abs/min) pH óptimo = 5.5 0.20 0.20 0.15 0.15 0.10 Caricia Eva Princesa 0.10 Granny Smith Red Delicious 0.05 pH óptimo = 5.5 0.25 0.05 0.00 0.00 3 4 5 pH 6 7 8 3 4 5 pH 6 7 8 Figura 1. Cambio en la actividad de la enzima PPO de manzanas Granny Smith, Red Delicious, Caricia, Eva y Princesa en función del pH Actividad de la PPO de cinco variedades de manzanas La velocidad a la cual una enzima cataliza una reacción es conocida como actividad enzimática. Esta puede ser medida por la velocidad de formación de productos o desaparición de reactivos en presencia de una cantidad de enzima dada (Guerrero Eraso, 2009). Muchos autores utilizan diversos procedimientos y sustratos dependiendo de la actividad estudiada. El mecanismo detallado de acción es único para cada enzima. Como puede observarse en la Tabla 1, las actividades PPO de cada variedad de manzana difieren muy significativamente (p≤0,01). Red Delicious es la variedad que difiere significativamente del resto presentando la mayor actividad PPO. La actividad PPO de las variedades GS y E en cambio son similares y las de menor valor con respecto al resto de las variedades, siendo E similar también a C. Caricia y Princesa mostraron valores similares de actividad PPO y le siguen en orden decreciente de actividad a Red Delicious. Tabla 1. Actividad de la PPO para cinco variedades de manzanas Variedad vi (abs/min) Act PPO (U) Act PPO (U/100gFF) ActPPO (U/mlE) Caricia 0,0465bc 46,55bc 465,50bc 310,33bc Eva 0,0250ab 25,36ab 253,58ab 169,05ab Granny Smith 0,0170a 17,16a 171,56a 114,37a Princesa 0,0570c 56,82c 568,16c 378,78c Red Delicious 0,0970d 96,78d 967,83d 645,22d Letras diferentes en la misma columna indican diferencias significativas por el test de Duncan (p≤0,05). vi=calculada a partir de catecol 10 mM al pH óptimo de la enzima (5,5); FF=fruta fresca; U=0,001 unidades de absorbancia/min; E=extracto enzimático; Act PPO=actividad polifenoloxidásica Página 4 de 6 Las variedades experimentales C, E y P muestran valores de actividad PPO medios y similares entre ellas, en comparación a las variedades comerciales RD y GS, cuyas actividades PPO se encuentran en el extremo superior e inferior respectivamente. Parámetros cinéticos de la enzima PPO de cinco variedades de manzanas La cinética de oxidación catalizada por la enzima PPO fue estudiada a distintas concentraciones del sustrato (catecol), a pH = 5,5 (pH óptimo de la PPO). Dentro del rango de concentraciones estudiado, la enzima PPO siguió el modelo de Michaelis-Menten. Los parámetros cinéticos Vm y Km, tuvieron diferencias significativas (p≤0,05) entre las distintas variedades de manzana. En la Tabla 2, se puede observar que la variedad con mayor Vm para la enzima PPO fue Red Delicious y a su vez es la enzima con mayor afinidad por el catecol, junto con Eva, debido a que sus Km son las de menor valor. También se puede observar, que RD reaccionó más eficientemente con el sustrato fenólico, teniendo en cuenta que la relacion Vm/Km fue superior a las demás variedades. La variedad GS, fue la de menor Vm junto con E. Además, la relación Vm/Km para GS, que mide la eficiencia de reacción con el sustrato, fue inferior a todas las demás, siguiéndole en orden creciente E, C, P y RD. En cuanto a la afinidad (Km) por el sustrato de la PPO presente en la variedad GS, se puede observar en la Tabla 2 que difiere significativamente de las variedades RD y E. Los valores de Km determinados en este trabajo se encuentran dentro del rango publicado por Nicolas et al. (1994), en el cual se informó que las Km para manzanas se encontrarían entre 5,3 y 140 mM utilizando catecol como sustrato. Soysal (2009) determinó los parámetros cinéticos a 405 nm para la variedad de manzana Golden Delicious, utilizando metilcatecol como sustrato y obtuvo como resultado una Vm = 0,45 abs/min y una Km = 4,76 mM; mientras que Rocha et al. (1998) determinaron valores de 0,52 abs/min y 0,18 x 10 -3 mM para la variedad Starking respectivamente, utilizando catecol como sustrato y midiendo la absorbancia a una longitud de onda de 420nm. Gasull y Becerra (2006) obtuvieron para la variedad Red Delicious un valor de Km = 232,8 mM, superior al encontrado en el presente. Tabla 2. Parámetros cinéticos para cinco variedades de manzanas Variedad Vm (abs/min) Km (mM) Vm/Km Caricia 0,195ab 37,03ab 0,0055b Eva 0,070a 13,80a 0,0050b Granny Smith 0,090a 42,74b 0,0022a Princesa 0,185ab 20,38ab 0,0090c Red Delicious 0,245b 15,27a 0,0160d Letras diferentes en la misma columna indican diferencias significativas por el test de Duncan (p≤0,05). Valores determinados utilizando catecol 10 mM al pH óptimo de la enzima (5,5); Vm=velocidad máxima; Km=constante de Michaelis-Menten CONCLUSIONES Para todas las variedades de manzanas se determinó que el pH óptimo de la enzima PPO fue de 5,5. La actividad de la PPO fue significativamente diferente dependiendo de la variedad de manzana (p≤0,01), siendo Red Delicious la que presenta mayor actividad, siguiéndole en orden decreciente Princesa, Caricia, Eva y por último Granny Smith. Los parámetros cinéticos (Vm y Km) tuvieron diferencias significativas (p≤0,05) entre las diferentes variedades de manzanas. La PPO de RD presentó el mayor valor de Vm, y la mayor eficiencia de reacción con el sustrato, debido a que la relación de Vm/Km fue la mayor de todas las variedades estudiadas. En cuanto a los valores de Km de la PPO presentes en RD y E, fueron significativamente menores (mayor afinidad por el catecol) del determinado para la PPO de GS. La PPO de GS y E presentaron los menores valores de Vm. La eficiencia de reacción con el sustrato (relación de Vm/Km) fue menor para Granny Smith, siguiéndole en orden creciente de eficiencia las variedades Eva, Caricia, Princesa y Red Delicious. Página 5 de 6 AGRADECIMIENTOS Trabajo realizado con fondos de la Universidad Nacional del Litoral a través de la programación CAI+D Proyecto 12/Q103. Se agradece al Dr. Norberto Gariglio (Cátedra de Cultivos Intensivos - FCA – UNL) por la provisión de manzanas variedades Caricia, Eva y Princesa. BIBLIOGRAFÍA Amiot, M. J.; Tacchini, M.; Aubert, S. y Nicolas, J. (1992). Phenolic composition and browning susceptibility of various apple cultivars at maturity. Journal of Food Science, 57(4):958-962. Ayaz, F. A.; Demir, O.; Torun, H.; Kolcuoglu, Y. y Colak, A. (2008). Characterization of polyphenoloxidase (PPO) and total phenolic contents in medlar (Mespilus germanica L.) fruit during ripening and over ripening. Food Chemistry, 106:291298. Belitz, H. D. y Grosh, W. (2004). Química de los Alimentos. Ed: Acribia S.A., Zaragoza, 105-172. Carbonaro, M. y Mattera, M. (2001). Polyphenoloxidase activity and polyphenol levels in organically and conventionally grown peach (Prunus persica L., cv. Regina Bianca) and pear (Pyrus communis L., cv. Williams). Food Chemistry 72:419-424. Dincer, B.; Colak, A.; Aydin, N.; Kadioglu, A. y Güner, S. (2002). Characterization of polyphenoloxidase from medlar fruits (Mespilus germanica L., Rosaceae). Food Chemistry, 77:1-7. Fang, Z.; Zhang, M.; Sun, Y. y Sun, J. (2007). Polyphenol oxidase from bayberry (Myrica rubra Sieb. et Zucc.) and its role in anthocyanin degradation. Food Chemistry 103:268-273. Gassul, E.; Becerra, D. (2006). Caracterización de Polifenoloxidasa Extraída de Pera (cv. Packam´s Triumph) y Manzana (cv. Red Delicious). Inf. Tecnol., 17 (6), p.69-74. Guerrero Eraso, C. A. (2009). Inhibicion de la actividad enzimatica de la polifenol oxidasa extraída del banano (Cavendish Valery) mediante sistemas bifásicos acuosos con isoespintanol y ácido ascórbico. Tesis de Maestria en Ciencia y Tecnología de Alimentos, Facultad de Ciencias Agropecuarias Universidad Nacional de Colombia, Medellín, pp 91. Lineweaver, H. y Burk, D. (1934). The determination of enzyme dissociation constant. Journal of American Chemist´s Society, 56: 658-661. Nicolas, J.; Richard-Forget, F.; Goupy, P.; Amiot, M. J. y Aubert, S. (1994). Enzimatic browning reactions in apple and apple products. Critical Reviews in Food Sciences and Nutrition, 34:109-157. Ni Eidhin, D. M.; Murphy, E. y O´Beirne, D. (2006). Polyphenol Oxidase from Apple (Malus domestica Borkh. Cv Bramley´s Seedling): Purification Strategies and Caracterization. Journal of Food Science 71:51-58. Rocha, A. M. C. N.; Cano, M. P.; Galeazzi M. A. M. y Morais A. M. M. B. (1998). Characterization of Starking Apple Polyphenoloxidase. Journal of the Science of Food and Agriculture, 77:527-534. Soysal, Ç. (2009). Effects of green tea extract on Golden Delicious apple polyphenoloxidase and it´s browning. Journal of Food Biochemistry, 33:134-148. Vámos-Vigyázó, L. (1981). Polyphenol oxidase and peroxidase in fruits and vegetables. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 9:49-127. Weemaes, C. A.; Ludikhuyze, L. R.; Van Den Broeck, I.; Hendrickx, M. E. Y Tobback, P. P. (1998). Activity, electrophoretic characteristics and heat inactivation of polyphenol oxidases from apples, avocados, grapes, pears and plums. Lebensm. Wiss. Technology, 31:44-49. Zhou, P.; Smith, N. L. y Lee, C. Y. (1993). Potential purification and some properties of Monroe apple peel polyphenol oxidase. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 41:532-536. Página 6 de 6