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2014 Volumen 6, No 11. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila Biodegradación Anaerobia de Hidrocarburos Aromáticos Contaminantes del Medio Ambiente y Alimentos Anerobic Biodegradation of Aromatic Hydrocarbon Pollutants of the Environment and Food Sandra Luz Villarreal Morales1, Nagamani Balagurusamy2, Raúl Rodríguez Herrera1, Cristóbal Noé Aguilar González1, Jesús Antonio Morlett Chávez1*. 1 Departamento de Investigación en Alimentos, Facultad de Ciencias Químicas, Universidad Autónoma de Coahuila, Unidad Saltillo. Blvd. V. Carranza y J. Cárdenas V., Saltillo, Coahuila. 2 Escuela de Ciencias Biológicas, Universidad Autónoma de Coahuila, Unidad Torreón. *Correo electrónico: morlett17@gmail.com Resumen La biotecnología moderna se centra en el empleo de microorganismos de tipo silvestre o modificados y sus productos que son benéficos para el medio ambiente y la sociedad. Una de esas aplicaciones es el empleo de microorganismos en la remoción de hidrocarburos aromáticos (HA). Los HA están presentes en sitios contaminados que perjudican cultivos agrícolas. Además, este tipo de compuestos pueden formarse durante el procesamiento y cocción de los alimentos. Actualmente, estudios con cultivos puros de microorganismos anaerobios han mostrado la capacidad de estos para remover hidrocarburos monoaromáticos (HMA) y poliaromáticos (HPA). Además, estos estudios han permitido describir genes y enzimas implicadas en la degradación de los HPA y HMA. Algunas de esas enzimas son bencil succinato sintetasa, benzoil CoA ligasa y benzoil CoA reductasa, las cuales participan en la activación y reducción del anillo aromático, respectivamente. Asimismo, se ha observado la presencia de genes homólogos entre los diferentes microorganismos relacionados con la biodegradación anaerobia. Sin embargo, existen compuestos que resisten al ataque de los microorganismos y sus enzimas. En este documento se recopiló información sobre los microorganismos que intervienen en la degradación de compuestos aromáticos, condiciones anaerobias de biodegradación, así como los principales genes que codifican para las enzimas más representativas que intervienen en la degradación anaerobia de estos compuestos. Palabras clave: Hidrocarburos Aromáticos, Bacterias Sulfato Reductoras, Biodegradación Anaerobia, Genes y Enzimas. Abstract The modern biotechnology focuses on the use of wild type or modified microorganisms and their products that are beneficial to the environment and society. One of these applications is the use of the microorganisms in in the removal of aromatic hydrocarbons (HA). The HA are present in contaminated sites that harm crops. Addition these compounds may be formed during processing and cooking food. Currently, studies using pure cultures of anaerobic microorganisms have shown the ability of theses, to remove monoaromatic hydrocarbons (HMA) and polyaromatics (HPA). Also, these studies have allowed describe genes and enzymes involved in the degradation of the HMA and HPA. Some of these enzymes are benzyl succinate synthetase, benzoyl CoA ligase and benzoyl CoA reductasa, which participate in the activation and reduction of aromatic ring respectively. Also, it has been observed the presence of homologous genes between different microorganisms associated with anaerobic biodegradation. However, there are compounds that resist the attack of microorganisms and their enzymes. In this paper we collected information on the microorganisms involved in the degradation of aromatic compounds biodegradation under anaerobic conditions, and the main genes coding for enzymes most representative involved in the anaerobic degradation of these compounds. Keywords: Aromatic Hydrocarbons, Sulfate Reducing Bacteria, Anaerobic Biodegradation, Genes and Enzymes. 28 2014 Volumen 6, No 11. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila INTRODUCCIÓN Contaminación con monoaromáticos hidrocarburos poliaromáticos y Los HMA se encuentran como contaminantes en agua y tierra debido a los accidentes ambientales, como los derrames de gasolina o diesel (Becerril-Caudillo y col., 2008; Morlett-Chávez y col., 2008a). Mientras que, los HPA se forman durante la combustión incompleta de materia orgánica, derrames petroleros y durante la combustión de gasolina o diésel (Cuadro 1) (Becerril Caudillo y col., 2008; Morlett y col., 2008b). Por otro lado, algunos alimentos como vegetales, frutas y cereales cultivados en suelos y ambientes contaminados presentan pequeñas cantidades de HPA (Agudo, 2010; Rubio-Armendariz y col., 2006) y los pescados y mariscos (Alomirah y col., 2011). Además, durante el procesado de alimentos como el secado, cocción, ahumado o la preparación de alimentos como el asado o la fritura, se forman este tipo de compuestos (Alomirah y col., 2011; Ferrares y col., 2008). Los mecanismos de formación de los HPA, durante los procesos de asado y ahumado de alimentos, incluyen: a) pirolisis de la materia orgánica a temperaturas mayor a 200 °C, b) contacto directo de gotas de lípidos en la fuente de calor y c) combustión incompleta del carbón, el tiempo de asado a la parilla, contenido de grasa en el alimento y el uso de salsas de marinado (Alomirah y col., 2011). Cabe señalar, que los HPA de 2-3 anillos son más volátiles que los de 5 anillos, por lo que éstos se han detectado principalmente en alimentos asados o a la parilla (Ferrares y col., 2008). Al respecto, Dost y col., (2012) determinaron la presencia de HPA en aceites comestibles derivados de maíz, girasol y oliva, y en alimentos crudos y asados, como carne de res y truchas. Se encontró que el aceite de maíz presenta 10 veces más el valor permitido de fluorantreno. Mientras que en los alimentos crudos se encontró la presencia de fluoreno, fenantreno y antraceno a bajas concentraciones; posterior al asado, estos alimentos incrementaron 2 o 3 veces la presencia de estos compuestos; mientras que el fluorantreno y pireno se detectaron sólo después del asado (Cuadro 2). Por otro lado, algunas agencias han resaltado el potencial tóxico de los HPA, incluso han señalado a este tipo de compuestos como cancerígeno y teratogénicos (EFSA, 2008). Dentro de los principales HPA carcinógenos y genotóxicos se encuentran: benzo [a] antraceno, criseno, benzo [b] fluoranteno, benzo [k] fluoranteno, benzo [a] pireno, indeno [1,2,3-cd] pireno, dibenzo [a, h] antraceno y el benzo [ghi] perileno, también se han añadido el antraceno, fluoranteno, fenantreno y pireno (EFSA, 2008). Además, se sabe que dichos compuestos pueden permanecer en los ecosistemas por largo tiempo lo cual, también representa efectos negativos para la salud de seres humanos y animales (EFSA 2008). Hasta este punto hemos descrito como los HMA y HPA están presentes en múltiples ecosistemas, incluso en los alimentos. Por tal motivo, algunos investigadores han centrado su atención en la remoción de estos compuestos de sitios contaminados, para tal efecto, se están empleando microorganismos especializados capaces de biodegradar hidrocarburos. La biodegradación de HA se lleva a cabo bajo condiciones aerobias y anaerobias, sin embargo, las condiciones anaerobias son preferidas debido a las condiciones anóxicas que prevalecen en los sedimentos y aguas contaminadas (Lu y col., 2011). Biodegradación anaerobia La biodegradación anaerobia es un proceso alternativo y efectivo para el tratamiento de diferentes residuos orgánicos, incluyendo los HPA. Este proceso se lleva a cabo específicamente por consorcios bacterianos formados por bacterias fermentativas (acidogénicas y acetogénicas), sulfato reductoras (BSR), desnitrificantes y metanogénicas, (Morlett y col., 2008b; Foght, 2008; Annweiler y col., 2002; Heider y Fuchs, 1997; Harwood y Gibson, 1997). En el Cuadro 3 se observan la eficiencia alcanzada por diferentes consorcios microbianos capaces de degradar hidrocarburos bajo condiciones anaerobias. En estudios previos, Musat y col., (2009); Selesi y col., (2010) y Mathava y col., (2011) reportaron la biodegradación del naftaleno, 2-metilnaftaleno y fluoreno mediada por bacterias sulfato reductoras. Además, a partir de diferentes consorcios especializados se han aislado e identificado bacterias sulfato reductoras presentes en los mismos, como Desulfosporosinus meridiei (Robertson y col., 2001) y Desulfovibrio carbonoliphilus (Allen y col., 2008). Recientemente, Guan y col. (2012) aislaron, a partir de sedimentos contaminados con petróleo, bacterias identificadas como Desulfotomaculum sp., Desulfomicrobium sp., Desulfobacter sp. y Desulfobulbus sp (Cuadro 4). A su vez, las enzimas implicadas en las rutas metabólicas asociadas a la reducción del anillo aromático han sido identificadas. El siguiente apartado será dedicado a las enzimas catabólicas relacionadas a la biodegradación anaerobia de los HA. 29 2014 Volumen 6, No 11. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila 30 2014 Volumen 6, No 11. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila 31 2014 Volumen 6, No 11. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila Cuadro 3. Biodegradación anaerobia de hidrocarburos aromáticos por consorcios bacterianos y eficiencia alcanzada Rutas metabólicas 3. La biodegradación anaerobia de HA es un proceso que implica varios pasos, el cual empieza con la activación inicial. Esta activación se lleva a cabo mediante algunas de las siguientes reacciones (Fogth, 2008): 4. 1. 2. Adición de fumarato al compuesto aromático, mediante enzimas para producir un aromático sustituido con succinatos. Metilación de los compuestos aromáticos. Hidroxilación de un sustituyente alquilo a través de una deshidrogenasa en el compuesto aromático. Carboxilación directa del compuesto aromático, que puede representar en realidad una combinación de la metilación seguida de una hidroxilación. Después de la activación inicial de los HMA y HPA son reducidos, mediante dos vías: a) vía del fumarato y b) vía del Benzoil CoA (Morlett y col., 2008b; Foght, 2008; Selesi y col., 2010). 32 2014 Volumen 6, No 11. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila Cuadro 4. Microorganismos aislados a partir de diferentes consorcios y sitios contaminados con HPA y HMA en presencia de diferentes aceptores de electrones. *No determinados A. Vía del Fumarato Después de la activación de los compuestos aromáticos como alquil monoaromáticos (Biegert y col., 1996), HPA (Annweiler y col., 2001) y aromáticos no sustituidos (Safinowski y col., 2006a; Ulrich y col., 2005), por acción de la enzima benzoil succinato sintetasa (Bss) se forma el intermedio central con fumarato como radical (Foght, 2008). Sin embargo, en el caso de la degradación del naftaleno, son necesarias tres diferentes reacciones de activación del compuesto como carboxilación (Zhang y Young, 1997), una metilación (Foght, 2008) y la adición de fumarato (Safinowski y Meckenstock, 2006b). B. Vía Benzoil CoA Una vez que han sido activado los hidrocarburos aromáticos por medio de las enzimas benzoil CoA ligasa (BclL) y benzoil CoA reductasa (BclR), estos compuestos son convertidos en alguno de los productos intermedios centrales del catabolismo. Estos productos intermedios centrales son el benzoato o benzoil CoA, hidroxihidroquinona, floroglucinol y resorcinol, como se aprecia en la Figura 1 (Carmona y col., 2009). Asimismo, estos productos pueden sufrir una reacción de β oxidación o degradar el Benzoil CoA a través de un par de vías conocidas como pimílica y adípica. Posterior a esto se formará acetil CoA, ácidos grasos y pimelil CoA, que serán convertidos a CO2, H2 y CH4 (Heider y Fuchs, 1997; Harwood y Gibson, 1997; Fuchs, 2008; Carmona y col., 2009). A pesar de conocer la rutas metabólicas que se llevan a cabo bajo condiciones anaerobias y las enzimas que participan en ésta, se han propuesto nuevas reacciones enzimáticas relacionadas con la reducción anaerobia del anillo aromático (Fuchs, 2008). Genes y enzimas Con el fin de soportar la propuesta anterior Wischgoll y col., (2005), analizaron la expresión de genes en Geobacter metallireducens inducida con benzoato, estos autores reportaron la expresión de genes bss homólogos a los genes de Thauera aromatica. Sin embargo, no se observó la expresión de los genes relacionados con la reducción del anillo aromático (benzoil coA reductasa/ ligasa). Anteriormente, se había reportado la presencia de genes homólogos en diferentes bacterias. Por ejemplo, los genes badDEFG de Rhodopseudomonas palustris que codifican para la proteína BclR y el gen badA para la enzima BclL; son homólogos a los genes que presenta T. aromatica identificados como bcrCBD para la proteína BclR y bcrA para la enzima BclL (Song y Ward, 2005; Schühle y col., 2003; Egland y col., 1997). Cabe señalar que los genes bcr también se han descrito en cepas del género Magnetospirillum (López-Barragán y col., 2004; Matsunaga y col., 2005; Shinoda y col., 2005; Kawaguchi y col., 33 2014 Volumen 6, No 11. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila Figura 1. Ejemplos de compuestos aromáticos degradados a través de rutas periféricas y principales intermediarios que entraran en el metabolismo central para su posterior degradación. La ruta metabólica se determinará de acuerdo al tipo de metabolismo de la bacteria anaeróbica (Carmona y col., 2009). Figura 2. Comparación de los grupos de genes nms y bsn del catabolismo anaeróbico de 2-metilnaftaleno en el cultivo sulfatoreductor N47 y los genes bss y bbs para la degradación anaerobia del tolueno en Magnetospirillum sp. cepa TS 6, Azoarcus sp. cepa T, T. aromatica cepa K147, T. aromática cepa T1, A. aromaticum cepa EbN1 y G. metallireducens cepa GS15 (Selesi y col., 2010). 34 2014 Volumen 6, No 11. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila Cuadro 2. Microorganismos y genes más representativos que intervienen en la degradación de compuestos aromáticos. Enzimas: benzoil CoA ligasa (BclL), Benzoil CoA reductasa (BclR), Benzoil succinato sintetasa (Bss), Etilbenceno deshidrogenasa (EBD), naftil2-metil-succinato sintetasa (Nms). (Ж)números de acceso de genes homólogos reportados: nmsG YP_158064, nmsD CAO03077, nmsB ABO30981, nmsA CAO72222, nmsC YP_461301, bnsH YP_158071, bnsG YP_158072, bnsF AF173961, bnsE AAU45405, bnsD AAF89839, bnsC AAF89841, bnsB YP_158077, bnsA YP_158078, ncrC AAQ08806, ncrB YP_157403, ncrA CAD21630 y ncrD YP_157401 (Selesi y col., 2010). 2006), los cuales son muy similares a los presentes en T. aromatica. Asimismo, Shinoda y col., (2005), indicaron que en Magnetospirillum se encuentran los operones badDEFG y bssDCABE, los cuales son homólogos a los operones de A. tolulyticus, T. aromatica y R. palustris. Por su parte, Singleton y col. (2009) mencionaron que existen una gran cantidad de organismos que degradan HMA, pero pocos HPA y aunque estos microorganismos contienen genes homólogos entre sí (Figura 2), también, presentan diferencias significativas en sus genomas. En el cuadro 2 se concentran algunos de los genes más representativos que intervienen en la degradación de compuestos aromáticos, así como el microorganismo en el que se han identificado. A manera de resumen podemos mencionar que las enzimas que participan en la degradación anaeróbica de estos 35 2014 Volumen 6, No 11. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila compuestos, intervienen sólo en la degradación de aquellos compuestos que comparten estructuras moleculares similares (Carmona y col., 2009). Sin embargo, debido a la reactividad química baja de tales compuestos, son necesarias varías enzimas especializadas durante la degradación del hidrocarburo aromático; algunas intervienen en la transformación o eliminación de grupos funcionales del compuesto, otras en la reducción o ruptura del anillo aromático, con el propósito de formar compuestos intermediarios centrales más sencillos y por tanto más fáciles de asimilar, a través de diferentes rutas metabólicas microbianas (Carmona y col., 2009; Fogh, 2008; Harwood y Gibson, 1997). La elucidación de las diferentes rutas metabólicas, compuestos intermedios, genes y enzimas claves, que intervienen en la biodegradación de los hidrocarburos aromáticos, puede ayudar a mejorar las estrategias de biorremediación actuales. En particular, las enzimas desempeñan roles importantes en la degradación biológica de los hidrocarburos; ya que al ser conocidas, caracterizadas y purificadas, pueden emplearse directamente en los sitios contaminados con hidrocarburos, unidas a las células bacterianas o inmovilizadas en diferentes materiales como nanopartículas metálicas; además de que pueden utilizarse como biosensores sensibles para detectar y medir la concentración de HMA y HPA en sitios contaminados o como indicadores de la calidad del agua, suelo o algún alimento, al detectar la concentración de hidrocarburos presentes en los mismos (Rao y col., 2014). También al conocer la ruta metabólica delos hidrocarburos puede inducirse la sobrexpresión de algún gen y/o enzima en un microorganismo de interés y así, explotar el metabolito producido en beneficio de la seguridad medioambiental. Así pues, la caracterización de genes y proteínas que intervienen en las distintas rutas anaeróbicas de degradación de compuestos aromáticos en el metabolismo bacteriano, facilitará la comprensión de estos procesos (Carmona y col., 2009); además de proporcionar una gran cantidad de información, que puede ser empleada para mejorar las condiciones de biorremediación de sitios contaminados con hidrocarburos, así como las posibles aplicaciones tecnológicas de las enzimas producidas. CONCLUSIONES El estudio genético y proteómico del catabolismo anaeróbico de los compuestos aromáticos contribuye de manera importante en la comprensión de los aspectos fisiológicos, ecológicos, bioquímicos y de regulación del metabolismo bacteriano implicados en la biodegradación de los mismos; por lo que la caracterización de los genes y enzimas desconocidos que interviene en estos procesos, y algunas herramientas biotecnológicas contribuirán en la mejora de las estrategias de biorremediación, y en la tecnología de tratamientos enzimáticos en alimentos procesados sobreexpuestos a dichos compuestos. AGRADECIMIENTOS S.L.V.M. Agradece a la Universidad Autónoma de Coahuila (UA de C) y al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) por el apoyo financiero para la realización del proyecto número 183204. Así como por la beca otorgada para cursar la Maestría en Ciencia y Tecnología de Alimentos en la UA de C. 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