Download 01. Presentación general del Ejercicio de - (GEP
Document related concepts
no text concepts found
Transcript
ghep-isfg EJERCICIO 2014 GRUPO DE HABLA ESPAÑOLA Y PORTUGUESA GRUPO ESPANHOL E PORTUGUÊS DA ISFG “ESTUDIO DE POLIMORFISMOS DE ADN EN MANCHAS DE SANGRE Y OTRAS MUESTRAS BIOLÓGICAS” KORO FERNÁNDEZ OLIVA COORDINADORA DEL EJERCICIO INSTITUTO NACIONAL DE TOXICOLOGÍA Y CIENCIAS FORENSES SERVICIO DE GARANTÍA DE CALIDAD DEL DEPARTAMENTO DE MADRID Estructura y contenido del NIVEL BÁSICO Ejercicio Composición del ejercicio NIVEL BÁSICO •Módulo de parentesco •Módulo forense ESTUDIO PRÁCTICO M1,M2,M3 ESTUDIO PRÁCTICO M4, M5 ESTUDIO TEÓRICO ESTUDIO TEÓRICO Cálculo IRB Cálculo LR NIVEL BÁSICO: Módulo de parentesco práctico Análisis genético M2 M1 Saliva M3 Sangre Saliva NIVEL BÁSICO: Módulo de parentesco teórico Calcular el índice de relación biológica de los supuestos abuelos respecto del hijo, conociendo a la madre biológica. Indicar los valores de LR parciales para cada ? marcador y el valor de LR total. Programas informáticos empleados o cálculo manual NIVEL BÁSICO: Módulo forense práctico I Análisis genético M4 ¿MEZCLA DE FLUÍDOS? ¿NATURALEZA DE LOS FLUÍDOS? ¿M1,M2,M3 CONTRIBUYENTES DE M4? NIVEL BÁSICO: Módulo forense práctico II Análisis genético M5 Vello sin contaminación NIVEL BÁSICO: Módulo forense teórico Homicidio: Indubitada sospechoso y de la victima cotejo con restos de sangre =perfil del sospechoso Cálculo de las frecuencias genotípicas y la frecuencia esperada del perfil Cálculo de la razón de máxima verosimilitud (LR) Programa informático o fórmulas empleadas Expresión de resultados correctos/incorrectos Composición del ejercicio NIVEL AVANZADO •Módulo de parentesco Desafío teórico de parentesco Cálculo LR •Módulo forense Estudio práctico M6, M7, M8 Desafío teórico Cálculo LR NIVEL AVANZADO: Desafío de parentesco • Cálculo de los valores de LR parciales para 9 marcadores (Likelihood ratio) para cada una de las hijas. - Indicar las hipótesis utilizadas - Indicar la población utilizada (España/Quito) • Programa informático o fórmulas empleadas NIVEL AVANZADO: Módulo forense práctico M6 M8 Análisis genético Naturaleza de los fluidos Nº contribuyentes ¿M1,M2,M3 Contribuyentes? ¿Contribución no humana en M7? M7 NIVEL AVANZADO: Desafío forense Agresión Sexual y muerte Vínculo biológico Número de contribuyentes Alelos del EFG considerados para cálculo LR ¿S1 y S2 compatibles con el perfil del EFG? Otras hipótesis para el cálculo de la LR Programa informático y/o fórmulas empleadas PREPARACIÓN DE MUESTRAS PREPARACIÓN DE MUESTRAS I TOMA DE MUESTRAS DONANTE: 11/01-13 /01/2014 Conservación en frío o congelada hasta su utilización PREPARACIÓN DE ÍTEMS: 16/01-30/01/2014 Condiciones Ropa protectora:gorro, bata, guantes, mascarilla Limpieza de superficies Material desechable y estéril PREPARACIÓN DE MUESTRAS II: homogenización HOMOGENIZACIÓN MUESTRA DEL DONANTE HOMOGENIZACIÓN ANTES DE LA DISPENSACIÓN (Frecuencia, dependiente de la naturaleza del fluído ) DISPENSACIÓN HOMOGENEA PERSONAL CUALIFICADO SUPERVISIÓN PREPARACIÓN DE MUESTRAS III:dispensación M1: 100 µl saliva varón Hisopo M2: 100 µl Saliva mujer M3: 100 µl Sangre mujer Papel Whatman PREPARACIÓN DE MUESTRAS III:dispensación M4: 50 µl Mezcla saliva/sangre 2:1 (v/v) Varón/Mujer Servilleta M5: 3 Vellos varón PREPARACIÓN DE MUESTRAS IV:dispensación M6: 4 µl Sangre de varón Hilo dental M7: 24 µl Mezcla sangre/saliva 4:1 (v/v) Vaca Brava/Varón Hisopo de nylon M8: 50 µl Mezcla saliva/semen 4:1 (v/v) Mujer/Varón tela PREPARACIÓN DE MUESTRAS V:secado y envasado 1 muestra por día: secado hasta el día siguiente Adecuación, Etiquetado y Envasado ENVIO DE MUESTRAS -DOCUMENTACION -MODO DE ENVÍO DOCUMENTACIÓN Nº laboratorio y nº precinto -CARTA Fecha límite: 12/05/2014 Resumen instrucciones: formulario online, envío de formulario cumplimentado y firmado registros -INSTRUCCIONES - FORMULARIO/S +ANEXO MODO DE ENVÍO RESTO DE LOS PAISES ARGENTINA BRASIL COSTA RICA MÉXICO PROBLEMAS ADUANAS, “EXTRAVÍO”,ERROR ENVÍO CONSULTAS Envíos -Recepción en embajadas -Análisis a realizar -Problemas para entrar -Grabación de datos Formulario Resultados Nuevo Formulario -Problemas con archivo Excell -Frecuencia Quito /España -error en la frecuencia de 1 marcador Quito -confusión cálculo IRB -Fecha límite -Modo envío registros -Dirección envío -Recepción correcta -problemas con M1 Datos generales de la participación de los laboratorios NÚMERO Y TIPO DE PARTICIPANTES I NÚMERO DE PARTICIPANTES público 2013 privado TIPO DE PARTICIPANTES II N=119 NC=15 50 OTROS ORG. JUSTICIA 26 ORG. UNIVERSIDAD 22 JUST + UNIV 2 13 UNIV + HOSP JUST + HOSP 1 1 4 ORG. SEGURIDAD ORG. HOSPITAL ACREDITACIÓN Y LABORATORIOS Acreditación 60 51 ISO/IEC 17025:2005 45 ISO:15189:2007 50 34 Acreditados 40 No acreditados número de 30 laboratorios En vías 20 10 No contesta 4 CAP (EEUU), PALC (Brasil) PROGRAMAS DE ACREDITACIÓN GUBERNAMENTALES 0 Certificación ISO 9001:2008 Controles de calidad ACTIVIDAD Y CASUÍSTICA DEL LABORATORIO P+F P+F+Otros P 44 18 41 P+Otros Forense 14 F +Otros Otros NC 2 2 2 3 Identificación (restos óseos,menores,desaparecidos),adopciones irregulares, diagnóstico clínico y genético, farmacogenética, g. de poblaciones, g. animal, genética molecular humana, banco ADN, análisis citogenético, tipaje, antropología, agroalimentación, origen geográfico Nº laboratorios Nº máximo de casos = 38.000 Nºmínimo de casos=2 Nº máximo de casos = 26.000 Nºmínimo de casos= 2 < 100 100-500 500-1000 >1000 DISTRIBUCIÓN DE LA PARTICIPACIÓN EN MÓDULOS Y NIVELES 140 134 120 100 79 80 82 57 Módulo Parentesco Módulo Forense 60 40 20 0 Nivel básico Nivel avanzado METODOLOGÍA PRELIMINARES EXTRACCIÓN PURIFICACIÓN CUANTIFICACIÓN AMPLIFICACIÓN* DETECCIÓN *(ADN mit) PURIFICACIÓN SECUENCIACIÓN PURIFICACIÓN METODOLOGÍA TÉCNICAS PRELIMINARES NIVEL BASICO I 58/72 laboratorios realizan alguna prueba preliminar N=56 METODOLOGÍA TÉCNICAS PRELIMINARES NIVEL BASICO II N=55 METODOLOGÍA TÉCNICAS PRELIMINARES NIVEL BASICO III N=41 METODOLOGÍA: EXTRACCIÓN NIVEL BÁSICO Nº laboratorios 25 Ítems REFERENCIA M1, M2, M3 20 15 10 5 0 Or g án ic a Ch ele x Q Ot IA ro am s p FT A 3 “salting out” M ax we ll Pr ep Fi le DN r A IQ EZ 1 1 NaOH+calor 2 robot Magnapure 4 protocolos directos 3 otras columnas de sílice 2 métodos propios METODOLOGÍA: EXTRACCIÓN NIVEL BÁSICO Ítems FORENSES 45% 40% 35% 30% Orgánica 25% QIAamp 20% EZ1 Otros DNA IQ Maxwell Chelex QIAamp M5 Orgánica M4 PrepFiler 15% Chelex 10% PrepFiler 5% 0% Maxwell DNA IQ Otros EZ1 Otros: Wizard, Magnapure,Masterpure, Invisorb spin columns,DNAeasyblood, DNA IQ METODOLOGÍA: PURIFICACIÓN NIVEL BÁSICO 4% 2% 1% REFERENCIA 22% 6% M1, M2, M3 11% Incluída en la extracción No se realiza Amicon Precipitación Microcon 54% QIAamp FTA FORENSES 3% M4 6% 7% 12% 4% 13% M5 15% 12% 20% 46% 26% 35% METODOLOGÍA: CUANTIFICACIÓN NIVEL BÁSICO Quantifiler trio * Otros Plexor HY Fluorimetría M5 Espectrofotometría M4 M1-M3 Quantifiler Human Quantifiler duo No se cuantifica 0 5 10 15 20 25 % laboratorios 30 35 40 45 Otros: Agarosa, PCR Real time, Nanodrop Quantiplex, *Almeida et al (2011), Efficient DNA extraction from hair shafts. FSI. Genetic Supplement series, 3, e319-e320 METODOLOGÍA: NIVEL AVANZADO EXTRACCIÓN -El principal método de extracción es la extracción orgánica seguida de prepfiler -60% de los laboratorios realizaron lisis diferencial PURIFICACIÓN -El principal método de purificación mediante ultrafiltración :Amicon y Microcon CUANTIFICACIÓN -El 80% de los laboratorios cuantifica específicamente ADN humano. Disminuye el número de labs que cuantifican ADN total. -Sólo el 8% no cuantifica 54 MARCADORES Nº laboratorios Kits marcadores STRs STR FF ID L NA SE 21 plu s PP 1 NG MS 6 Id ele en ct ti f il e r p lus PP Fu s s Glo io n ba lF i le r ID dir ec t PP 21 NG M PP 17 ES X PP 17 ES I Mi ni f il e r Ve ri f ile In r ve sti PP ga 18 to D r I In In Dp ve ve s lex ti g sti at ga or to In r I SE ve Dp sti lex ga to HD r E SS pl e x PP 21 HS PP 16 ES I PP 16 ES X Id en ti f il e r METODOLOGÍA:AMPLIFICACIÓN A-STR NIVEL BÁSICO 25 20 15 10 5 0 EUROPA CENTRO Y SUDAMÉRICA -6 laboratorios con primers propios para marcadores STR -8 laboratorios con primers propios complementando a los kits METODOLOGÍA: AMPLIFICACIÓN Cromosomas sexuales 25 MARCADORES Kits marcadores X-STR e Y-STR CrY 35 30 25 20 15 10 5 12 R X -S T A rg us X ig at or In ve st In ve st ig at or A rg us Y1 2 PP Y PP Y2 3 ile r 0 Yf Cr X Nº laboratorios 26 MARCADORES EUROPA CENTRO Y SUDAMÉRICA -5 Laboratorios utilizaron sólo primers propios y 1 como complemento a los kit de CrY -4 Laboratorios utilizaron sólo primers propios y 4 como complemento a los kit de CrX AMPLIFICACIÓN NIVEL AVANZADO -El kit más empleado es Identifiler plus -Aumento de los nuevos sistemas que incluyen 21 marcadores -Sólo un laboratorio que utiliza primers propios como complemento de los kits. (STRs autosómicos y Y-STR) -Máximo número de kits de marcadores STR autosómicos empleados =6 -El kit más empleado para YSTR fue Yfiler. Aumento del uso de kits de mayor poder de discriminación PPY23. Plataformas ABI 3% 23% 25% 310 2% 3100 3130/3130xl 3500/3500xl 3730 47% METODOLOGÍA: DETECCIÓN MEGABACE 1 GEL NITRATO PLATA 1 ALF 1 FMBIOII 1 METODOLOGÍA MITOCONDRIAL I REGIONES AMPLIFICADAS HV1+HV2 100% HV3 D-Loop 28% 38% Purificación productos PCR Otros: Illustra Microspin, PCR purification kit (Norgen), Precipitación alcohólica modificada 60 51% ExoSAP 50 Otros 40 30 20 Microcon 17% Qiaquick 13% Minelute 11% 4% 10 0 QUÍMICA DE SECUENCIACIÓN BigDye v1.1 30% BigDye v3.1 70% Microspin 2% 2% Wizard METODOLOGÍA MITOCONDRIAL II Purificación reacciones de extensión 4% 9% Digestión SAP+precipitación DyeEx 17% CENTRI-SEP 30% Precipitación alcohólica 40% Otros 0 10 20 30 40 50 Otros: BigDyeXTerminator, placas Sephadex, ZR DNA Sequencing clean up kit,precipitación +EDTA, precipitación según FREGEL et al (2010),digestión SAP+Centri-Sep Software de edición 11% 6% SeqScape Otros Sequencher 19% 64% Bioedit Otros: DNA Star, Mutation Surveyor v4.09, Sequencing Analysis, Geneious, lectura directa ASIGNACIÓN VALORES CONSENSO. EVALUACIÓN Valor asignado: obtenido por consenso o puede ser un valor de referencia Valor consenso Resultado concordante emitido por al menos el 70% de los participantes, siempre que haya una participación mínima de 5 laboratorios Valor de referencia: valor conocido C: Coincide con el valor de referencia consenso D: Errores en el tipaje, pérdidas o ganancias alélicas, cambio de muestra, etc. N: Discrepancias debidas al uso de una nomenclatura o un formato diferentes a los especificados en las instrucciones. T: Errores de transcripción en la cumplimentación del formulario. Para la evaluación de los datos teóricos se consideran correctos aquellos resultados que coincidan plenamente con el valor de referencia o discrepen de él únicamente en el último decimal de los exigidos. Se consideran valores aceptables (A) los resultados que estén dentro del intervalo: valor de referencia ± 5%. COMENTARIOS FORMULARIO -REVISIÓN ANTES DE APERTURA -MEJOR FORMATO -AUTOMATIZACIÓN INTRODUCCIÓN DATOS -DIFICULTAD LENGUAJE EJERCICIO -ENUNCIADO DE LOS TEÓRICOS -NOMENCLATURA A UTILIZAR -HIPÓTESIS TEÓRICO BÁSICO +/-REVISIÓN EVALUACIÓN MEZCLAS -ENVÍO RESULTADOS CORREO ELECTRÓNICO SUGERENCIAS -INCLUIR MUESTRAS ÓSEAS -INCLUIR CÁLCULOS MEZCLAS EN TEÓRICO BÁSICO -INCLUIR PATERNIDAD CON MARCADORES SEXUALES EN TEÓRICO BÁSICO -SEGUIR INCLUYENDO VALORACIÓN PROBABILISTICA DE LA PRUEBA -DESAFÍO: 2 HERMANOS Y LA MADRE COMENTARIOS, SUGERENCIAS Y APELACIONES intcf.eiadn@mju.es Servicio Garantía de Calidad Servicio Biología