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América Latina: Desarrollo de capacidad multi-país en cumplimiento del Protocolo de Cartagena en Bioseguridad (COLOMBIA, PERU, COSTA RICA, BRASIL) 1. Informe técnico final de subproyectos NOMBRE DEL PROYECTO Flujo de genes entre clones cultivados de yuca y sus parientes silvestres del genero Manihot, en Colombia NOMBRE DEL INVESTIGADOR PRINCIPAL Luisa Fernanda Fory NOMBRE DE LA INSTITUCIÓN QUE DESARROLLA EL PROYECTO CIAT JUSTIFICACIÓN La yuca pertenece al género Manihot y posee tanto especies cultivadas como silvestres. El género contiene 98 especies silvestres ampliamente distribuidas (Rogger y Appan, 1973). Manihot esculenta Crantz es la yuca cultivada en América, Asia y África. Se han llegado a caracterizar mediante SSR hasta 1600 accesiones de yuca cultivada y variedades locales algunos sobre diversidad estudios están recopilados en la revisión realizada por Ferguson et al. (2012). No obstante pocos estudios han estudiado la diversidad de las especies silvestres (Roa et al., 2000 y Bocanegra et al., 2010). Gracias a la genotipificación por secuenciación se ha completado el 98 % de secuencias codificantes del genoma total de yuca (Prochnik et al., 2012), el IITA esta secuenciando genes de resistencia en diferentes especies silvestres de Manihot (Ferguson et al., 2012). Y recientemente el CIAT y el Instituto de Genómica de Pekín, planean secuenciar más de 5000 genotipos de yuca incluyendo razas locales o criollas con el objetivo de acelerar el mejoramiento en el cultivo yuca. Diferentes eventos de transformación se están produciendo a nivel mundial ya sea para incrementar la calidad nutricional, resistencia a enfermedades y el análisis de secuencias promotores para incrementar la expresión de genes. El escalamiento a gran escala en la evaluación de plantas transformantes a permitido que centros como El CIAT y “Donald Danforth science” pueden manejar más 3500 líneas de plantas transgénicas con 50 construcciones en poco tiempo (Taylor et al., 2012). Con el convenio de 2 diversidad biológica se pone de manifiesto la creación del protocolo de Cartagena, el cual se centra principalmente en la regulación, transferencia y manipulación de los organismos genéticamente modificados (OGM), estableciéndose de este modo pautas para la evaluación de riesgo de los organismos genéticamente modificados. Ante una prominente liberación de yuca transgénica es necesario establecer los delineamientos básicos para evitar o minimizar el flujo de genes. El flujo de genes es un fenómeno natural en el cual ocurre un movimiento de la información de padres a hijos, en el caso de yuca la polinización es ayudada por insectos y las características pueden transferirse a través del polen y la semilla. Para desarrollar un análisis de riesgo equilibrado, justo con la demanda de sostenibilidad productiva para este cultivo de subsistencia se deben tener en cuenta varios aspectos como: el conocimiento de las especies silvestres, el flujo de genes entre yuca cultivadas y su especies relacionadas, distancias de separación, así como conocer son las consecuencias de una introgresión en poblaciones nativas y como influye el movimiento de semillas en el flujo de genes. Esta información debe ser generada y/o actualizada empleando las herramientas científicas que se tiene hoy en día ante la demanda de los reguladores y tomadores de decisión competentes, poniendo a disposición información y herramientas claves para ayudar a implementar el Protocolo de Cartagena sobre Bioseguridad. DESCRIPCION DEL SUBPROYECTO El objetivo general de este proyecto es el fortalecimiento de la capacidad técnica mediante la generación de conocimiento para el desarrollo de guías o lineamientos en bioseguridad encaminados a la evaluación de riesgo de tipo ambiental. La información obtenida en esta investigación es necesaria para estudiar la dinámica de flujo e introgresión y mide de una manera ex ante la supervivencia de eventos potenciales de cruzamiento. Además genera una serie de metodologías que pueden ser utilizadas para otros ensayos de dispersión de semilla en yuca, identificación de poblaciones silvestres de yuca, supervivencia de plantas voluntarias originadas de semilla sexual. OBJETIVOS Producto 1. Conocer la distribución de especies silvestres de yuca en Colombia, y actualizar las bases de datos establecidas e identificar y predecir las zonas coexistencia del cultivo y de sus parientes silvestres. Producto 2. Caracterizar molecularmente de especies silvestres a través de marcadores basados en secuencias simples repetidas (SSR), polimorfismo de simple nucleótido (SNPs) y secuencias de cloroplasto e identificación de marcadores específicos para especies silvestres. Producto 3. Determinar las tasas de hibridación mediante marcadores tipo SSR y SNPs usando una línea de yuca androestéril cultivada y un mutante libre de amilosa. Producto 4. Metodología de evaluación de la supervivencia de plantas voluntarias en campos comerciales. 3 MÉTODOS Producto 1. Distribución e identificación de áreas potenciales de coexistencia. La distribución potencial de las especies silvestres de Manihot fue realizada utilizando 1016 registros tomados de las bases de datos electrónicas del CIAT, Embrapa y GBIF. Distribuciones potenciales fueron modeladas utilizando el programas de MAXENT (Phillips et al., 2006), el cual utiliza 19 variables bioclimáticas de BIOCLIM (Busby, 1991), y algoritmos de máxima entropía. La información de mapas de coexistencia fueron obtenidos mediante el solapamiento de los mapa de riqueza y los datos de siembra obtenidos de MapSaM (You et al., 2000). Los mapas de distribución y acceso de carreteras fueron utilizadas en las expediciones a los 12 departamentos de Colombia. Los registros y fotografías del género Manihot pueden ser consultados en la herramienta llamada Manihot-EcoMap la cual se encuentra en la web: http://spatanweb.ciat.cgiar.org:8008/biosafety/web/ y http://spatanweb.ciat.cgiar.org/ManihotEcoMap/. Producto 2. Análisis molecular de especies silvestres. El ADN de 629 accesiones silvestres y cultivadas fue aislado mediante DNeasy® Plant Mini Kit y el protocolo de Dellapo rta (1983). El análisis molecular fue realizado usando 7 SSR y 3 EST altamente polimórficos (Mba et al., 2001; López et al., 2007; Raji et al., 2009). La visualización de los fragmentos amplificados fue realizada mediante electroforesis de geles de poliacrilamida al 6%, y tinción con nitrato plata siguiendo los protocolos descritos Bassam et al., (1991). Los tamaños de los alelos se determinaron visualmente por comparación con el marcador de tamaño molecular estándar 10 pb (Invitrogen®). Con el fin de conocer la estructura poblacional los datos fueron analizados a través de los análisis de correspondencia múltiple ACM (SAS, 1989) y Structure (Pritchard et al., 2000). El índice de diferenciación genética entre las poblaciones FSts, estimando su importancia en 10000 permutaciones, Nm número de inmigrantes entre poblaciones, número de alelos privados fueron calculados usando programas como Arlequin (Schneider et al., 2000), Genepop (Raymond and Rousset, 1995) y SAS (1989). Adicionalmente se calculó la identidad y distancia genética de Nei (1978). Usando las secuencias reportadas por Olsen y Schaal (1999) y Chacón et al. (2008), se diseñaron marcadores moleculares útiles en diferenciación de especies silvestres. La distribución de especies silvestres y su análisis molecular fue llevada a cabo en acuerdo entre el Instituto de investigación Biológicas Alexander von Humboldt y el CIAT. Producto 3. Tasas de hibridación entre variedades de yuca cultivada. Todas las plantas fueron propagadas in vitro (Roca, 1984) y endurecidas en invernadero durante dos meses, posteriormente fueron trasplantadas en una hectárea de campo, el donador de polen HMC1 fue sembrado en forma de cruz y los receptores de polen en los cuatro cuadrantes formados; dos cuadrantes con una variedad criolla androestéril (algodona MCOL 1522) utilizada por la industria por su alto contenido de almidón y dos cuadrantes con una variedad sin amilosa (conocida como genotipo Waxy), originada mediante una mutación natural. Los mutantes Waxy no expresan la proteína funcional codificada por el gen GBSSI (en inglés “granule bound starch synthase”), gen involucrado en síntesis de almidón.Los marcadores tipo SSR y SNPs putativamente asociados en la mutación en el gen GBSSI fueron utilizados para validar la tasa de flujo de genes en el clon libre de almidón. El gen GBSSI, esta involucrado en síntesis de almidón (Salehuzzaman et al., 1983). Los frutos del clon androestéril fueron contabilizados como producto de la polinización cruzada debido a la ausencia de polen en este clon. La estación meteorológica del CIAT registro datos de temperatura, humedad relativa y velocidad del viento durante el periodo de floración. La floración fue registrada una vez al mes durante seis meses del cultivo y el número de flores masculinas y femeninas fue contabilizado durante la máxima floración del donador y el receptor . Como controles fueron utilizados; plantas enmasculado e 4 híbridos artificiales. El análisis de los datos fue realizado utilizando el paquete estadístico SAS (1989) y el software RstudioTM. Diseño de marcadores. En este estudio se diseñaron diferentes marcadores sobre la deleción en el exón 6 del GBSSI previamente reportadas por el grupo de genética de yuca (CIAT, 2006) usando el programa SNAPER (Drenkar et al., 2000). Al comparar la secuencia mutada en el exón 6 con la secuencia obtenida del GeneBank X74160 (Salehuzzaman et al., 1983). La deleción en este sitio de una citosina origina la formación de un codón de parada en la proteína mutada (Waxy), lo que podría ocasionar que no se produzca una proteína normal de 608 aa (X74160) si no una proteína truncada 298 aa. También fueron diseñados otros primeres sobre otras regiones que presentaban cambio de nucleótidos (GC por AT), los cuales presentaban cambios de argininas por histidina Producto 4. La supervivencia de plantas voluntarias fue registrada en lotes comerciales que presentaron al menos dos ciclos de siembra del cultivo en las zonas del Valle del Cauca, Cauca y Costa Atlántica. Lotes y plantas fueron previamente georeferenciadas mediante: GPS, GeoExplorer 3 (Trimble) acorde Pujol et al. (2005). La evaluación de la supervivencia de plantas fue realizada antes y después de la limpieza de los lotes. Diferentes variables morfológicas como altura de planta, diámetro del tallo y peso de la raíz fueron medidas durante la floración y cosecha de plantas voluntarias (EMBRAPA, 1998). RESULTADOS Y DISCUSIÓN Producto 1. Conocimiento de las especies silvestres. Se realizaron cuatro expediciones a 12 departamentos y fueron observadas tres de las cuatro especies silvestres reportadas para Colombia. Manihot brachyloba Jacq es un arbusto tipo liana de 7 metros de altura, tallo liso con abundante látex, hojas generalmente de tres lóbulos, flores blancas en el exterior y rojizas en el interior, fruto globoso no alado. Las poblaciones silvestres están distribuida principalmente en el centro, oriente y occidente del país y se encuentran sobre la vegetación secundaria. Las poblaciones fueron encontradas entre 10 a 800 msnm a orillas de los ríos en lugares sombríos, en suelos con alto contenido de materia orgánica. Manihot carthagenensis Jacq. Müll Arg es un arbusto de hasta 12 m de alto tallo, ceroso, hojas con lóbulos pandurados, flores de color blanco amarillento, fruto globoso. Las poblaciones están distribuidas principalmente en la costa Atlántica Colombiana se encuentran expuestas al sol en bosques xerofíticos entre los 8 y 523 msnm. Manihot tristis Müll. Von Arg es un árbol hasta 6 metros de altura con pocas hojas en sus ramas tallo ceroso. Hojas con lóbulos delgados de diferentes formas (enteros lóbulo o pandurado), debido a que las visitas fueron realizadas en el periodo de verano ninguno de las plantas observadas presentaron flores y frutos. Las poblaciones son endémicas y se encuentran en el oriente Colombiano y fueron encontradas entre los 68 y 193 msnm, expuestas a alta radiación solar en afloramientos rocosos del Vichada. Es necesario validar taxonómicamente los caracteres morfológicos de esta especie, dado que presenta alta variación en la morfología de sus hojas y existen tres subespecies de M. tristis distinguidas por la unión del peciolo a la base de la hoja. Las tres especies encontradas de Manihot presentan una amplia adaptación ya que algunas especies pueden tolerar sequia y/o altas precipitaciones, estas especies habitan en suelo ácido con altas 5 concentraciones a Aluminio (AI), bajas concentraciones de Zinc (Zn), Fosforo, Calcio (Ca), Cobre (Cu) y Potasio (K) elementos esenciales para el crecientito del cultivo de yuca. Se identificaron dos zonas de coexistencia o simpatría de las especies M. carthagenensis y M. brachyloba en los departamentos de Atlántico y Antioquia respectivamente, donde individuos silvestres encontraban cerca de plantas cultivados de yuca, las cuales son utilizadas para consumo local para pequeños agricultores que moran cerca a las carreteras. Estas observaciones no implican la existencia de cruzamiento entre cultivo y silvestres ya que no son muy relacionadas con la yuca, además pueden existir barreras de ploidia y se desconocen estudios sobre su fenología en condiciones naturales (Allen et al., 2001). Se generaron diferentes modelos con las coordenadas geográficas de las especies silvestres, Utilizando el estadístico AUC (área under the curve) estimados a partir de ROC (Receiver operating characteristics) para la predicción de los modelos. Mediante estos análisis se obtuvieron mejores ajustes en los modelos de distribución potencial para las M. carthagenensis y M. brachyloba y M. tristis (0.99). Siguiendo estos modelos de distribución potencial de las especies se logró la identificación de nuevas zonas donde habitan las especies silvestres. Adicionalmente se creó una herramienta llamada Manihot-EcoMap que contiene 1470 registros de especies de Manihot silvestres y cultivadas obtenidas de base de datos como CIAT, Embrapa y GBIF herbarios y expediciones botánicas. Así como los mapas de distribución y la distribución potencial de las especies silvestres colectadas recopilación de 406 fotos de herbario. EcoMap pueden ser utilizadas por los tomadores de decisiones para definir criterios de regulación, ante la eventual siembra de yuca genéticamente modificada en zonas cercanas a hábitats de especies silvestres, con el fin de prevenir el potencial flujo génico. Producto 2. Caracterización de la diversidad genética de especies silvestres. Un total de 281 alelos fueron observados para los 10 loci amplificados en las 681 accesiones de los cuales 176 alelos (62.6%) corresponden a especies silvestres. Los marcadores tipo microsatélites ssry164 y ssry161 presentaron el mayor porcentaje de heterocigotos (38.35 y 35.89 %). La población de M. brachyloba registró el mayor numero de alelos promedio por locus (12) y la heterocigocidad esperada He =0.6022 heterocigocidad observada Ho = 0.2471, mientras las población de M. carthagenensis registró 7.8 alelos y He = 0.4501 y Ho = 0.2115. El menor número de alelos (4.7) fue identificado en M. tristis, especie que presento valores de He= 0.3532 y Ho = 0.2797. Estos valores sustentan el cruzamiento alógamo de las plantas de yuca y la gran variabilidad dada por la reproducción por semilla (Nassar, 2008). Alta heterocigocidad esperadas y observadas (0.538 a 0.7353) han sido reportadas en trabajos realizados por Rojas et al. (2011) y Fregene et al. (2003), quienes sustentan estos valores debido al sistema de reproducción alogamo, y a las prácticas culturales de quema y siembra utilizadas por los agricultores amerindios, quienes favorecían la incorporación de plantas voluntarias. La población silvestre que presentó mayor número de alelos fue M. carthagenensis con 20 alelos privados o en baja frecuencia (0.05-0.89) mientras que las poblaciones M. brachyloba y M. tristis presentaron 10 y 7 alelos privados respectivamente y sus frecuencias oscilaron (0.01- 0.63). Estos resultados confirman la existencia de tres acervos distintos y los alelos específicos pueden ser utilizados para estudios de clasificación de germoplasma y estudios de introgresión ya que estos caracteres no están influenciados por las diferentes condiciones ambientales donde habitan las especies colectadas. Las poblaciones de M. carthagenensis colectadas en Antioquia (A), Magdalena (M) y Guajira (G) fueron significativamente diferentes entre sí (Population pairwise Fst G-A= 0.2764; Fst M-G= 0.3610; Fst M-G = 0.1616; 6 p>0.001) y presentaron un alto número de inmigrantes (Nm A-G = 1.3088; Nm M-A = 0.8847; Nm M-G =2.5932 con un Nm total = 1.002). Las siete poblaciones de M. brachyloba fueron diferentes entre si (Villavicencio, Antioquia, Caldas, Choco, Cundinamarca, Casanare y Vichada. El Fst osciló entre 0.13468 (Villavicencio y Cundinamarca) y 0,67011 (Caldas y Vichada). El número de inmigrantes corregido para estas poblaciones fue menor que el registrado con M. carthagenensis (Nm = 0.4938) y osciló entre 3.2140 (poblaciones Villavicencio y Cundinamarca) y 0.2461 (Caldas y Vichada). Lo cual indica que es posible intercambiar información dentro de las mismas especies entre las poblaciones más cercanas de M. carthagenensis y M. brachyloba. De otro lado los criollos fueron altamente diversos ya que presentaron el mayor número de alelos promedio (16), alelos privados (26), el mayor número inmigrantes (1,6565) He = 0.6901 y Ho = 05112. La alta variación puede ser debida al cruzamientos entre ellos, la variabilidad genética incorporada a través plantas voluntarias o al cruzamiento con especies silvestres.`Las poblaciones silvestres y criollas cultivadas fueron altamente diversas genéticamente, la varianza molecular AMOVA sugirió una variación de 61.38 % dentro de las poblaciones silvestres/criollos y del 38.62 % entre las poblaciones. Esto significa que todas las poblaciones son diferentes dentro de ellas a nivel genético aunque algunos individuos pueden tener genotipos similares a otras poblaciones. Estructura genética de las especies colectadas. Los análisis “Structure” y correspondencia múltiple confirmaron (ACM) el estatus taxonómico de las tres especies silvestres colectadas. En el ACM el 93.6 % de la variación (RsQ) explicó la formación de tres grupos principalmente (M. brachyloba subdividida en dos grupos de acuerdo a su distribución en el occidente y oriente Colombiano, M. carthagenensis, Manihot cf. tristis) Figura 1 A). En “Structure” (k=6, 10.000) seis grupos principalmente fueron formados: M. brachyloba, subdividía en dos grupos de acuerdo a su distribución geográfica en el Grupo 1) se asociaron muestras colectadas en Antioquia (47), Choco (24), Meta (31), Cundinamarca (19) y Caldas (24); Grupo 2) corresponden a M. brachyloba de Casanare (10), Vichada (16); Grupo 3) M. carthagenensis colectados en Antioquia (42), Magdalena (33) y la Guajira (20). Grupo 4). Criollos colectados el año 2008 en Casanare (41), Vaupés (55), Amazonia (18). Grupo 5. Criollos colectados obtenidos principalmente de la Unidad de recursos genéticos del CIAT (URG) colectados en los años 70 y 80. Grupo 6. M. tristis (48) colectada en el vichada (datos no mostrados). Similares resultados fueron obtenidos por Roa et al., (2000) al caracterizar 66 accesiones silvestres utilizando marcadores moleculares tipo SSR y AFLPs. Relación de M. esculenta con otras especies del género Manihot. Al incluir otros géneros cercanos a la yuca cultivada dentro del análisis se puede evidenciar los grupos silvestres brachyloba (BRA), M. carthagenensis (CTH) y Manihot cf. tristis (TRIS-Col) conservan su identidad taxonómica pero la especie cultivada M. esculenta se asocia genéticamente con las dos subespecies que presentaron poca diferenciación morfológica con la yuca cultivada (M. esculenta subsp flabellifolia y M. esculenta subsp. peruviana, grupo FLA-ESC-PER, Figura 1B). Estas presentaron los más altos indicies de identidad genética con el cultivo I = 0.726 y 0.724 respectivamente. El mayor éxito en la producción de híbridos (35%) se produce cuando se utilizan M. subs flabellifolia y la yuca cultivada. De esta manera se sustenta que el origen de la yuca cultivada proviene especialmente de la subespecie M. esculenta subsp flabellifolia (Roa et al., 2000; Olsen and Schaal, 1999). Las muestras de M. tristis, fue separada en dos grupos en el primero se agruparon individuos M. cf. tristis colectados en Vichada Colombia (Tris Col, Figura 1) y las accesiones originarias del Brasil URG (grupo Tris B), las cuales se asociaron con M. esculenta y M. esculenta sub peruviana (Fregene et al.,1994). De otro lado M. brachyloba y M. carthagenensis fueron las especies más distantes del cultivo y presentaron menores índices de identidad de Nei (1978) (I = 0.282 y 0.167 respectivamente. 7 Grupo 1 Dim3 M. Brachyloba (BRA) 4.04 Grupo 3 M. carthagenensis (CTH) 2.40 0.76 -1.24 -0.89 1.60 Grupo 2 Grupo 4 0.64 M. tristis (TRIS COL) Dim1 1.41 0.08 Dim2 -0.32 -1.28 2.73 1 BRA 2 BRA 3 CTH 4 TRIS COL 5. ESC 7. TRI B 6. ESC-FLA-PER Figura 1. A) Análisis de correspondencia múltiple de las accesiones silvestres colectadas. B) Análisis al incluir otras especies silvestres mediante el programa Structure. Cada Color representa un grupo diferente. Producto 3. Tasas de hibridación entre variedades de yuca cultivada. Variables climáticas, floración y biología reproductiva. Los clones fueron sembrados en Julio de 2010 y los datos meteorológicos fueron tomados hasta Septiembre 2011. Las plantas cultivadas presentaron características de floración, vigor y viabilidad de polen adecuadas para permitir un solapamiento en la apertura floral. Los meses de Agosto y Marzo del año 2011 fueron los meses que presentaron mayor temperatura y radiación solar. Las plantas empezaron a florecer durante el mes de Septiembre y la floración fue interrumpida durante los meses de Noviembre y Diciembre donde se presentó un incremento en la precipitación de 331. 5 mm y 145 mm respectivamente comparado con el promedio registrados de los 31 años anteriores (107.5 mm y 70.4 mm). En abril también también se presentaron altas precipitaciones (201.8 mm). No obstante a pesar del fuerte invierno se produjo solapamiento (26%) entre las flores femeninas del recetor y las masculinas del donador. La viabilidad del polen fue alta para los clones HMC1 (85,2%) y Waxy (96.3%), mientras que el clon androestéril no registró polen viable, permitiendo la formación de fruto por polen externo. La presencia de polen en el donador fue favorecida por la relación de 7:1 entre flores masculinas y femeninas. El solapamiento temporal en la floración y apertura floral ocurrió entre 11:00 a 15:00 horas y el principal visitante floral fue la abeja común Apis mellifera. Similares observaciones fueron realizadas por Silva et al. (2001) y por el grupo de Brasil dirigido por Carlos Ledo. 8 Humedad Radiación Precipitación Radiación Figura 2B Figura 2A Distancia (m) Distancia (m) Figura 2C Figura 2D Figura 2. A) diseño de campo utilizado en rojo se muestra HMC1 y en verde los receptores androestéril y clon libre de amilosa. B). Análisis de componentes principales de las variables ambientales. En rojos se muestran los meses con mayor radiación solar, humedad y precipitación. C) Número de plantas con frutos en el clon androestéril y D). Número de plantas con híbridos detectados por SSRy164. Figura 2B. 9 Tasas de cruzamiento. En el clon androestéril se contabilizaron 20662 frutos y solo el 2.8% de la semilla germinó debido a la alta esterilidad del clon. Durante la evaluación de flujo se observaron frutos hasta los 40 metros de distancia desde el donador HMC1 hacia el receptor androesteril y tasas de cruzamiento 14% al 2 % se registraron a 1 y 41 metros de distancia. Estos resultados fueron modelados utilizando curvas de nivel programa SAS, en donde se observa el número de frutos disminuyó a medida que se incrementó la distancia (Figuras 2A). El ADN de 580 plantas androesteriles fue amplificado con el marcador tipo SSRY164, los resultados obtenidos confirmaron la naturaleza híbrida en el 35.2% de las plantas F1, las cuales se registraron a lo largo de 40 metros. Los individuos que no presentaron plantas adyacentes en los espacios libres (10, 20 y 30 m) fueron las plantas más desarrolladas con el mayor número de frutos e híbridos por planta ya que no presentaron competencia con otras plantas (Figura 2B). En el clon libre de amilosa, 1486 frutos fueron colectados, y presentaron una mayor viabilidad de semillas (58%). Un total de 1750 plantas fueron sembradas y están siendo evaluadas mediante SNPs y SSR, hasta el momento se han registraron tasas que oscilan entre el 6.21 y 7.66 % respectivamente (483 plantas evaluadas). De los 40 híbridos 25 fueron identificados mediante SSR y SNPs; 10 sólo por SSR y 4 por SNPs, es decir el 75% de los híbridos fueron identificados por los SNPs y el 87,5% por los SSR. La diferencia en el número de heterocigotos identificados puede ser atribuida por la naturaleza bialelica de SNPs, mientras los microsatélites son de naturaleza multialelicos. Como era de esperarse los controles emasculados presentaron mayores tasas de cruzamiento 14 % y se comportaron como una línea androestéril. En progreso se encuentra la evaluación de 1150 plantas. La expresión del fenotipo Waxy será confirmada mediante la tinción de yodo. Estos resultados indican que debe incrementar la distancia desde la fuente de polen para garantizar aislamiento reproductivo ya que la distancia reportada por Kawano et al. (1980) y Álvarez y Daza (1985) no son suficientes para evitar el flujo de polen. Álvarez y Daza (1985) rastreando el polen con polvos fluorescentes reportaron tasas entre el 6 a 22 % en distancias menores a los 18 metros. Mientras que altas tasas, superiores al 60% de cruzamiento han sido identificadas siguiendo la coloración y la forma de las hojas (Kawano et al., 1980; Silva et al., 2003). Debido a esta sobrestimación es importante validar las distancias de siembra con marcadores moleculares. El uso de estos marcadores SNPs pueden ser utilizados en programas de mejoramiento ya que permite identificar el 75-85% de los híbridos formados en una F1. Otros cambios en el gen GBS I pueden analizarse siguiendo la metodología descrita en este estudio. Producto 4. La supervivencia de plantas voluntarias Una adopción y supervivencia menor del 1 % de plantas voluntarias fue registrada al evaluar 45088 plantas en 22.4 ha de cultivo comercial de yuca, resultado que indica que el agricultor comercial no selecciona las plantas voluntarias para la próxima cosecha. El seguimiento de 549 plantas voluntarias en cultivos de yuca en lotes comerciales del Cauca, Valle del Cauca, Costa Atlántico evidenció un bajo nivel de contaminación por semilla voluntaria ya que el 92.3% de estas plantas fueron eliminadas por selección natural o durante procesos de limpieza y solo el 0.36 % de plantas fue seleccionado por el agricultor después de la cosecha. Similares resultados fueron obtenidos por Pujol et al. (2005) en lotes en descansos en los cuales se había dejado de sembrar yuca. La mayoría de plantas voluntarias encontradas, fueron plantas segregantes con bajo vigor y altura con variabilidad en el contenido de ácido cianhídrico y materia orgánica, en comparación con las plantas provenientes de clones seleccionados, características que les da bajas probabilidad de competir con el cultivo 10 CONCLUSIONES Producto 1 y 2. Mediante el uso de GIS se establecieron modelos de distribución potencial y real de las especies silvestres que permitieron identificar zonas probables de coexistencia y maximizar recursos en la identificación de especies silvestres. En ningún momento se debe generalizar la aplicación de estos modelos basados en probabilidades y se debe tener la cruzabilidad de la especie con el cultivo, la biología reproductiva, factores climáticos y antropológicos. Se deben continuar con las expediciones especialmente en el Choco, zona altamente endémica que alberga gran diversidad. Se deben calcular los índices de perdida de biodiversidad, caracterización del nicho ecológico y establecer indicadores o cambios de diversidad. Los marcadores tipos SSR permitieron discriminar los cuatro grupos taxonómicos utilizados en el análisis de diversidad, sin embargo es necesario incluir en el análisis mas poblaciones de M. tristis y encontrar poblaciones de otras especies del genero Manihot. También es necesario determinar como la diversidad esta espacialmente distribuida a través de las poblaciones dentro de cada especie usando programas como DEMEtics, DAPC, Barrier, también se debe correlacionar las distancias genéticas con las geográficas mediante el test de Mantel Producto 3 y 4. Para generar procedimientos adecuados de evaluación de riesgo ambiental, es necesario tener en cuenta: la característica a evaluar, la capacidad reproductiva y los parámetros de floración y biología reproductiva. También es importante considerar que el flujo no se produce de una manera homogénea dentro del campo, diferencias en las características en el suelo pueden influir en el desarrollo de la planta. Se recomienda realizar este ensayo en diferentes condiciones ambientales con otros clones cultivados, donde los clones estén distribuidos aleatoriamente dentro del campo. En el caso de yuca es necesario tener un conocimiento del cultivo previo. Es difícil realizar ensayos con una planta altamente heterocigota, que tiene baja tasa de reproducción por semilla sexual y que principalmente se reproduce por estacas para mantener la integridad genética. Las evaluaciones de flujo se deben abordar de manera holística donde se involucre el establecimiento de distancias de siembra y estudio de los silvestres y se estudien el comportamiento de las semillas sexual, además también se debe conocer el impacto que pude tener la introducción de un gen(s) poblaciones locales. Desde es punto de vista se podría seguir estudiando los híbridos obtenidos en este estudio en las siguientes generaciones. Es necesario cuantificar el flujo de genes aunque el sistema de propagación sea por estacas y diferenciarlo de los eventos de presencia accidental dados por la mezcla de estacas. Se deben utilizar diferentes marcadores moleculares para confirmar la presencia de flujo de genes. Es necesario comenzar a implementar en campo algunos modelos para la evaluación de flujo de genes y plantas voluntarias como GeneSys and MAPOD®. En la yuca existen 1190 SNP, que podrían potencialmente utilizados para la evaluación de flujo de gene. Una tasa de adopción menor al 1% fue encontradas al evaluar 22.4 ha de cultivo comercial. Este resultado indica que el agricultor no selecciona las plantas para la próxima cosecha. La metodología de evaluación de plantas voluntarias fue transferida al Brasil y se esta realizando en la región noreste centro y sur de Brasil. 11 BIBLIOGRAFÍA Álvarez A, Daza, P. 1985. Dinámica de la polinización natural en yuca (Manihot esculenta Crantz) y sus implicaciones en el mejoramiento genético del cultivo. Tesis Universidad Nacional de Colombia. Palmira. 58 p. Allem A., Mendes R., Salomão A. and Burle, M. 2001. The primary gene pool of cassava (Manihot esculenta subsp esculenta Crantz, Euphorbiaceae). Euphytica 120: 127–132. Bassam B., Caetano G. and Gresshoff, P. 1991. Fast and sensitive silver staining of DNA in polyacrilamide gels. Analytical Biochemistry 190: 80-83. Busby J., Margules C. and Austin M. 1991. Nature conservation: cost effective biological surveys and data analysis. BIOCLIM: 64–68. Bocanegra S. José L., Villafañe P. Carolina, Moreno V. Rodrigo, Torres M. Lorena, Velásquez R. Alicia, Fory Luisa, Gallego Gerardo. 2010. Caracterización genética de especies silvestres y cultivares de yuca (Manihot sp.), recolectados en la Amazonia y Orinoquia colombianas. En: Fortalecimiento de capacidades para la Implementación del Protocolo de Cartagena en Colombia. Sector Ambiente- / Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt; Orjuela-R. M.A. y Moreno V. R. (comp.). Bogotá D.C.: Colombia. Ministerio de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial; Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. 2010. 71 p. Chacón J., Madriñán S., Debouck D., Rodríguez, F. and J. Tohme. 2008. Phylogenetic patterns in the genus Manihot (Euphorbiaceae) inferred from analyses of nuclear and chloroplast DNA regions. Molecular Phylogenetic and Evolution 49: 260–267. Dellaporta S., Wood J. and Hicks J. 1983. A plant DNA minipreparation: version II. Plant Molecular Biology Reporter 1:19. Drenkar E., Richter B., Rozen S., Stutius L., Angell N., Mindrinos M., Cho R., Oefner P, Davis R. and Ausubel F. 2000. A simple procedure for the analysis of single nucleotide polymorphisms facilitates map-based cloning in Arabidopsis. Plant Physiology 124: 1483-1492. EMBRAPA, 1998. Descritores morfológicos e agronómicos para a caracterizacao de mandioca (Manihot esculenta Crantz) Documentos # 78. 33 p. Ferguson M., Rabbi, K, Melaku, G. and Becerra López-Lavalle L. and Okogbenin E. 2012. Molecular Markers and Their Application to Cassava. Breeding: Past, Present and Future Tropical Plant Biol 5:95–109. Fregene M., Vargas J., Ikea J., Angel F., Tohme J., Asiedu R., Akoroda M. and Roca, W. 1994. Variability of chloroplast DNA and nuclear ribosomal DNA in cassava (Manihot esculenta Crantz) and its wild relatives. Theor. Appl. Genet. 89: 719-727. Fregene M., Suarez M., Mkumbira J., Kulembeka H., Ndedya E., Kulaya A., Mitchel S., Gullberg U., Rosling H., Dixon A. Kresovich, S. 2001. Simple Sequence Repeat (SSR) Diversity of Cassava (Crantz) Landraces: Genetic Structure in a Predominately Asexually Propagated Crop Theor Appl Genet. 102: 21-31. Kawano K. 1980. Cassava. Hybridization of Crops Plants. W. R. Fehr y H. H. Hadley. Madison, WI, ASA: 225-233. 12 López C., Quesada-Ocampo L., Bohórquez A., Duque C, Vargas J., Tohme J. and Verdier, V. 2007. Mapping EST-derived SSRs and ESTs involved in resistance to bacterial blight in Manihot esculenta. Genome 50:1078-1088. Mba, R., Stephenson P., Edwards K., Melzer S., Nkumbira J., Gullberg U., Apel K., Gale M., Tohme, J. and Fregene, M. 2001. Simple sequence repeat (SSR) markers survey of the cassava (Manihot esculenta Crantz) genome: towards an SSRbased molecular genetics map of cassava. Theor Appl Genet 102:21-31. Meireles da Silva R., Bandel G., Fernandes M., Soderer P. 2001. Biología reproductiva de etnovariedades de mandioca. Scientia Agricola 58:101-107. Silva R., Bandel G., Martin P. 2003. Mating system in an experimental garden composed of cassava (Manihot esculenta Crantz) etnovarieties. Euphytica 134: 127-135. Olsen K. and B. A. Schaal. 1999. Evidence on the origin of cassava: phylogeography of Manihot esculenta. Proceedings of the National Academy of Sciences. USA 96: 5586–5591. Phillips S., Anderson R. and Schapire R. 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modeling 190: 231-259. Pujol B, David P. and Mckey D. 2005. Microevolution in agricultural environments: how a traditional Amerindian farming practice favors hetrozygosity in cassava (Manihot esculenta Crantz, Euphorbiaceae). Ecology Letters. 8: 138-147. Prochnik S., Marri P., Desany B., Rabinowicz P., Kodira C., Mohiuddin M., Rodriguez F., Fauquet C., Tohme J., Harkins T., Rokhsar D. and Rounsley S. 2012. The Cassava Genome: Current Progress, Future Directions. Tropical Plant Biol. 5:88–94. Pritchard J, Stephens M. and Donnelly P. 2000. Inference of population structure using multilocus genotype data. Genetics. 155: 945-959. Raji A., Anderson J., Kolade O., Ugwu C., Dixon A., Ingelbrecht I. 2009. Gene-based microsatellites for cassava (Manihot esculenta Crantz): prevalence, polymorphisms and cross-taxa utility. BMC Plant Biol 9:118. Raymond M. and Rousset F. 1995. GENEPOP (version 1.2): population genetics software for exact tests J. Heredity, 86: 248-249. Roa C. Chavarriaga-aguirre P., Duque M., Maya M., Bonierbale M,, Iglesias, C. and Tohme J. 2000. Cross species amplification of cassava (Manihot esculenta) (Euphorbiaceae) microsatellites. Allelic polymorphism and degree of relationship. American Journal of Botany 11: 1647–1655. Roca, W. 1984. M. Cassava. In: Sharp W. R., Evans D., Ammirato P., Yamada Y., eds. Handbook of plant cell culture, vol. 2: Crop species. New York: MacMillan Publishing Co. 269-301. Rogers D. and Appan S. 1973. Flora Neotropica Monograph. No. 13. Manihot Manihotoides (Euphorbiaceae). New York, Hafner Press. 272 p. Rojas M., Correa A. and Siritunga D. 2011. Molecular differentiation and diversity of cassava (Manihot esculenta) taken 13 from 162 locations across Puerto Rico and assessed with microsatellite markers. AoB Plants 2011. http:/aobplants.oxfordjournals.org/. 1-13 pag. SAS, I.I. 1989. SAS/STAT. User Guide, Version 6, Fourth edition, Volumen 2. Cary, N.C: S.A.S. Institute Inc. p 864. Schneider S., Roessli D., Excoffier L. 2000. Arlequin: software for population genetics data analysis User manual ver 2.000. Genetics and Biometry Lab, Dept. of Anthropology, University of Geneva; Geneva: Salehuzzaman S. Jacobsern E. and Visser R.1983. Isolation and characterization of a cDNA encoding granule-bound starch synthase in cassava (Manihot esculenta Crantz) and its antisense expression in potato. Plant Mol Biol. 23: 947-62. Taylor N., Gaitán-Solís S., Moll T., Trauterman B., Jones T., Pranjal A., Trembley C., Abernathy Vince., Corbin D. and Fauquet C. 2012. A High-throughput platform for the production and analysis of transgenic Cassava (Manihot esculenta) Plants. Tropical Plant Biol 5: 127–139. 2. Cuadro resumen de cumplimiento de objetivos comprometidos en el subproyecto y productos obtenidos Área Temática: Flujo de genes Investigador Principal: Luisa Fory Institución: CIAT Título Subproyecto: Flujo de genes entre clones cultivados de yuca y sus parientes silvestres y otras especies silvestres de Manihot en colombia Fecha de inicio Programada Efectiva Fecha de finalización Programada Efectiva Indicadores de resultados por actividad (Productos obtenidos) Comprometidos Obtenidos a la fecha Objetivo 1. Identificación predicción y verificación de zonas potenciales de coexistencia entre el cultivo de yuca y las especies silvestres usando GIS Actividad 1 Distribución potencial Actividad 2 Identificación de zonas de Mayo/2009 .Mayo/2009 Mayo/2009 Mayo/2009 Julio 2010 Agosto 2010 Visitas herbarios Cuatro salidas de Campo Agosto 2010 Septiembre 2011 Dos zonas de coexistencia identificadas Herbarios visitados Mapas de distribución Salida de campo realizadas Zonas de coexistencia identificadas Validación del modelo en 14 coexistencia cuatro salidas de campo realizadas Base de datos interactiva Agregar líneas si se requiere Objetivo 2 Caracterización molecular de especies silvestres mediante SSR Agosto Actividad 1. /2009 Septiembre Septiembre Evaluación de /2009 /2009 marcadores Actividad 2 Estudio de diversidad Análisis moleculares Bases de datos 1470 registros en web Julio de 2012 Octubre/2009 Enero/2009 Diciembre /2010 Diciembre /2011 Evaluación de 100 SSR yEST 7 SSR nucleares seleccionados 3 EST Cuatros especies caracterizadas 681 accesiones caracterizadas 2012 Dos marcadores putativos para identificar especies silvestres Identificación de Tres marcadores putativos para marcadores 2009 2009 2010 2012 Identificación de marcadores rastreas líneas con bajo específicos contenido de almidón 91 alelos privados o en baja frecuencia Objetivo 3 Determinar la tasa de hibridación entre variedades de yuca cultivada bajo condiciones controladas usando una línea androestéril y mutantes de amilasa. Actividad 1 Abril del Abril del Propagación del Abril de 2009 Julio 2010 5700 plantas multiplicadas Plantas multiplicadas 2009 2010 material Actividad 2 Abril del Julio de Multiplicación y 2011 2011 Ensayo establecido Invierno daño el ensayo 2009 2010 cruces Actividad 3 15 Siembra en campo del ensayo 2011 2011 2011 2011 Ensayo establecido y marcadores identificados Ensayo establecido Cosecha de fruto Rescate de embriones Evaluación de 1000 plantas con marcadores SSR y SNPs Extracción de ADN 1300 plantas (en proceso de evaluación) Evaluación de flujo. Siembra en invernadero y 2012 2012 2300 plantas sembradas evaluación en laboratorio. Objetivo 4. Evaluación de plantas voluntarias Octubre Diciembre Actividad 1 Metodología establecida /2008 /2011 Objetivo 4 Capacitación Carlos Ledo y varios Marzo 2011 investigadores del CIAT Capacitación Metodología de evaluación de grupo de Costa Marzo 2012 híbridos resistentes a IMI Rica establecida (1) Tesis de pregrado (2) Dos 2010 2012 Tesis en progreso de escritura estudiantes de pasantía Capacitación y Taller, cursos internacionales 2009 2012 divulgación realizados, páginas web Observaciones (factores que afectaron la implementación, El prolongado invierno y problemas de orden público afectaron el desarrollo de los ensayos en campo sugerencias para futuro, lecciones aprendidas) 16