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Persistencia de virus, bacterias, mohos, levaduras, parásitos, en diferentes formas de utilización de la porcinaza. Proyecto de Tesis Doctoral, Doctorado en Ciencias Agrarias, Universidad de Caldas. Facultad de Ciencias Agropecuarias Estudiante : Oscar Jaime Betancur Hurtado. Comité Tutorial: Director: Francisco Javier Henao Uribe. PhD. Evaluador – Asesor: Jesús Antonio Betancourth, PhD. Evaluador – Asesor: Julián Estrada Alvárez, PhD. 1. Resumen ejecutivo La gran cantidad de porcinaza generada en los procesos intensivos de producción de carne de cerdo, limitan el desarrollo potencial de esta industria en Colombia por: contaminación ambiental asociada con vertimiento irregular en fuentes de agua y por restricciones contempladas en la legislación sanitaria para la utilización de la porcinaza en alimentación animal y en biofertlización. Resolución 2640, (ICA, 2007). Como lo menciona Jiménez (2010) el proceso productivo porcícola afecta el medio ambiente mediato, hasta el punto de generar inconvenientes con la autoridad ambiental, además crea inconvenientes con las personas de predios aledaños a la explotación. En la medida en que se continúe con las mismas prácticas de producción el problema se convierte en uno mayor, debido a la contaminación de aguas cercanas, la generación potencial de olores y la formación de focos de vectores, aspectos que afectan directamente el tema de salubridad. La reutilización de residuos pecuarios constituye una técnica de producción sostenida por una serie de normas que se encaminan a la descontaminación del ambiente, transformándolos en un producto útil, que favorece la recuperación del suelo, como también la salud del hombre y de los animales; son también fuente de nutrientes para animales y ayuda en la recuperación de energía, mediante el aprovechamiento del biogás y de la materia orgánica como materia prima de los procesos de compostaje (Pérez and Villegas, 2009). Es imperativo para el porcicultor convertir la porcinaza en un producto utilizable en diferentes procesos, que a la par con la carne sume al ingreso total y aporte efectivamente a la rentabilidad de la empresa. Castrillón-Quintana et al. (2004), definen la porcinaza como un compuesto que está formado por heces fecales, descamación entérica y orina mezclados con el material utilizado como cama, residuos de alimento, polvo, otras partículas y una cantidad variable de agua proveniente de las labores de lavado y pérdidas desde los bebederos. El uso de fuentes alternativas de alimentación de rumiantes para mitigar los elevados costos de producción que generan los altos precios actuales de alimentos concentrados, han abierto una gran posibilidad a que se considere la utilización de porcinaza como materia prima importante para la elaboración de ensilajes (fermentación en fase sólida), que podrían convertirse en piensos de altísima calidad, con un balance adecuado de nutrientes y que ayudaría en gran medida a la adecuada disposición de este desecho (Estrada et al., 2011a). Según lo reportado por Martinez-Gamba et al. (2001) el uso de la porcinaza mediante: secado, compostado, lombricompuesto, biodigestores, estercoleros, y ensilaje, ha contribuido sustancialmente en los procesos de biorremediación; sin embargo es latente el riesgo de transmisión de microorganismos patógenos. El mayor temor es que muchos de estos agentes patógenos puedan ser compartidos con otras especies animales y aún el hombre, por lo que es importante descartar aquellos que puedan ser transmitidos del cerdo a otras especies a través de alguna de las diferentes formas de utilización de la porcinaza. Dentro de estos agentes patógenos podrían encontrarse: Bacterias como: Salmonella sp., Mycobacterium sp., Brucella sp., Escherichia coli, Leptospira sp., Yersinia sp., y Campylobacter sp. Estas bacterias no siempre están presentes en el estiércol de cerdos, siendo más prevalentes en los cerdos infectados. (Castrillón Quintana et al., 2004). De acuerdo con lo afirmado por Beloeil et al. (2003) existe la hipótesis que la mayor fuente de contaminación por L. monocytogenes corresponde a animales vivos, siendo las granjas porcinas la fuente primaria de Listeria encontrada en las centrales de sacrificio. Se piensa que cerdos portadores sanos son los que introducen L. monocytogenes al interior de este tipo de plantas, como se ha demostrado con técnicas de PCR. La eliminación intestinal es vista como la principal vía de transmisión de este patógeno. El grupo de Ziemer et al. (2010) sostiene que entre los patógenos bacteriales zoonóticos que han sido asociados con porcinaza se incluyen: Bacillus anthracis, Brucella sp., Campylobacter sp., Chlamydia sp., Escherichia coli, Leptospira sp., Listeria monocytogenes, Mycobacterium spp., Salmonella spp., y Yersinia sp. Según el grupo liderado por Mattison et al.( 2007); desde que se conoció que los genes de Norovirus comprenden virus que infectan tanto a humanos como a porcinos, bovinos y roedores, existe la posibilidad de una infección por transmisión zoonótica. En general, esta transmisión se puede dar a través de la cadena alimentaria o por contacto directo con los animales. El grupo de Ziemer et al. (2010) afirma que entre los virus más comunes hallados en cerdos figuran: El Virus Influenza, agente zoonótico que puede ser transmitido fácilmente entre animales y humanos. Virus Hepatitis E (HEV), un virus nuevo estrechamente relacionado genéticamente con el HEV humano, Norovirus porcino ( NoP. Calicivirus entérico) y Rotavirus ( RV-A y RV-C). Alcaíno et al. (1989), determinó que en la porcinaza fresca es común encontrar huevos y larvas de nemátodos como: Choerostrongylais pudendotectus, Metastrongylus apri, y M. salmi, Hyostrongylus rubidus, Physocephalus sexalatus, Asearops strongylina, Ascaris suum, Oesophagostomum dentatum y Oe. longicaudum, Trichuris suis, Strongyloides ransomi y protozoos intestinales como: Isospora suis, Balantidium coli y diversas Coccidias del género Eimeria. Entre los parásitos de mayor importancia desde el punto de vista zoonótico hayados en porcinaza se encuentran: Ascaris suum, los cuales son altamente resistentes a condiciones adversas; Giardia intestinalis, que afecta tanto cerdos jóvenes como adultos y Cryptosporidium spp., parásito intracelular que típicamente infecta células epiteliales del intestino delgado; pero se han reportado infecciones por fuera del tracto intestinal. (Ziemer et al., 2010) Mohos y levaduras como: Aspergillus sp y Candida sp ( Cotrino, 2012). Otros agentes contaminantes eliminados a través de las excretas porcinas pueden ser considerados como riesgo potencial para la salud, tales como: toxinas microbiales, parásitos, virus, arsenicales, antibióticos, drogas, hormonas, coccidiostatos, metales pesados y elementos traza, antihelmínticos y nitrofuranos, que deben ser evaluados críticamente antes de que el estiércol sea utilizado como alimento. (Álvarez y Gutiérrez, 2001). El presente trabajo pretende aclarar el tema de la viabilidad del uso de la porcinaza en diferentes rutas, haciendo énfasis en la inocuidad. La evaluación de la presencia de organismos patógenos, como algunos de los descritos anteriormente, en las diferentes vías de utilización de excretas en alimentación animal y como biofertilizante cobra gran importancia, y constituye actualmente un requisito inevitable. 2. Conformación y trayectoria del equipo de investigadores El grupo de Biotecnología Agraria COL0029577, categoría B, se integró en enero de 2002, es liderado por el Dr. Francisco Javier Henao U., cuenta con 11 investigadores, entre ellos, dos estudiante de maestría, tres de doctorado y un joven investigador. El grupo se articula con otros afines para dar soporte científico a los Programas de Maestría en Sistemas de producción Agropecuaria y de Doctorado en Ciencias Agrarias, y al Instituto de Biotecnología Agropecuaria. Las líneas de investigación del grupo son: Mejoramiento Genético y Biología de Reproducción, Nutrición y Alimentación, Medicina Preventiva y Gestión Ambiental. La presente investigación pertenece a la línea de Nutrición y Alimentación, liderada por Julián Estrada Á., PhD; en esta línea, como producto de los resultados de las investigaciones realizadas, se han publicado tres artículos científicos en revistas nacionales y extranjeras de diferentes categorías, un libro y un capitulo de libro. De los artículos en mención guardan relación con el proyecto los siguientes: Julián Estrada Á., Emilio M. Aranda I., Gastón Pichard D. y Francisco J. Henao U. 2011. Efecto de la fermentación en estado sólido de la porcinaza sobre la persistencia de patógenos en el ensilaje. Boletín Científico. Centro de Museos. Museo de Historia natural. ISSN 0123 – 3068. bol.cient.mus.hist.nat. 15 (2):71–80. Julio Ernesto Vargas S., Julián Estrada Á. 2011. Evaluación de la producción y la calidad nutricional de cinco especies forrajeras (arbustivas y arbóreas) para corte en condiciones de bosque seco tropical. vet.zootec. 5(2):55-67. Julián Estrada Á., Emilio M. Aranda I., Gastón Pichard D. y Francisco J. Henao U. 201?. Ensilaje de caña de azúcar integral enriquecido con porcinaza fresca. Revista MVZ Córdoba. ISSN versión electrónica: 1909-0544. En arbitraje. Julián Estrada Á., 2011. Estrategias de incorporación de porcinaza en ensilajes para suplementación de bovinos. Tesis Doctoral. Universidad de Caldas - Doctorado en Ciencias Agrarias. Julián Estrada Á., 2002. Pastos y forrajes para el trópico Colombiano. Centro editorial, Universidad de Caldas. ISBN: 958-8041-76-7. 511 p. Alejandro Ceballos M., Victoria Rubio B., Julián Estrada Á., 2008. Desequilibrios minerales de bovinos en sistemas silvopastoriles. En: Ganadería del futuro – Investigación para el desarrollo. Eds Murgueitio, Cuartas y Naranjo. ISBN: 978-958-9386-55-2. Fundación Cipav. Cali. Colombia. Pág. 431-450 Las actividades más recientes han sido en: alimentación alternativa de rumiantes con porcinaza ensilada y mediciones de metano como subproducto de la fermentación ruminal. 3. Descripción del proyecto 3.1. Planteamiento de la pregunta o problema de investigación y su justificación La porcinaza podría considerarse como una alternativa viable para la alimentación de Bovinos ( En sus formas fresca, seca o ensilada) así como biofertilizante ( En sus fases líquida y sólida a partir de estercolero, fresca, como lombricompuesto o como efluente del biodigestor), allanando así un camino muy favorable para la adecuada disposición de este desecho y asegurando el control de sus efectos contaminantes, adicional al efecto positivo en ambos sistemas de explotación al generar un ingreso adicional en la porcicultura y abaratar costos de producción en los Bovinos; sin embargo este tipo de subproductos deben garantizar su inocuidad para la especie objetivo a suplementar. Por ello se quiere responder a los siguientes interrogantes: • ¿ Cuál es el riesgo sanitario real derivado de la utilización de la porcinaza como biofertilizante o como alimento? • ¿Cuál es la viabilidad de las metodologías de utilización de la porcinaza tomando como criterio de evaluación la persistencia de virus, bacterias, mohos, levaduras y parásitos ? Este trabajo se orienta a establecer el riesgo real derivado de la persistencia de la carga de patógenos en la porcinaza, usada como alimento y como biofertilizante, de lo cual derivarán consecuencias prácticas en biorremediación, producción porcina, fertilización de cultivos y alimentación animal (Protección ambiental y rendimiento económico). 3.2. Marco Teórico. 3.2.1. Introducción. Según FEDEGAN (2006) uno de los grandes problemas que vive el mundo actualmente es la pobre oferta de alimento para una población que crece cada día más; esto debido quizá, uno a la falta de eficiencia de las cadenas productoras de alimento y otro a los altos costos de producción en especial de las diferentes fuentes de proteína de origen animal. Una de las mayores contribuciones para alimentar a los más de 7 billones de habitantes que se estima existen hoy en el planeta, debe ser el de producir carne de cerdo de excelente calidad a través de las granjas tecnificadas que existen hoy en Europa y alrededor del mundo. (McOrist, 2012) Nuestro país, por su ubicación geográfica excepcional, ofrece grandes oportunidades para el desarrollo de cualquiera de las actividades agropecuarias y es así como los sistemas de producción de Porcinos y Bovinos no solo tienen gran potencial de crecimiento sino que, en las últimas décadas, han tenido un importante desarrollo especialmente en lo que respecta al mejoramiento genético y a la implementación de nuevas tecnologías como : Fertilización in vitro, transferencia de embriones, Inseminación artificial a tiempo fijo, nuevos sistemas de alimentación, mejoramiento de praderas, etc. Colombia cuenta con un total de 114’174.800 hectáreas, de las cuales 50’910.793 hectáreas ( que representan el 45%) posee actividad agropecuaria. El 77% del área se destina a la actividad pecuaria, lo cual muestra un ligero incremento en comparación con años anteriores. Según estos datos, se puede observar que, pese al leve incremento de las áreas destinadas para la actividad pecuaria, aún se mantiene la diferencia entre sistemas productivos agrícolas y pecuarios atribuída a tendencias históricas orientadas al aumento de áreas en pastos para la ganadería, en detrimento de las áreas destinadas para el desarrollo de actividades agrícolas que hoy corresponden solo al 7%, el 16% restante del área, son territorios que corresponden a bosques naturales o áreas en otros usos como infraestructura y vivienda (ENA, 2008) La Ganadería Bovina participa con el 3,6% del PIB total, el 27% del total agropecuario y el 64% del total pecuario (FEDEGAN, 2009). Para el año 2009 la población Bovina nacional se estimaba en 27.359.290 cabezas, un 16% más frente a 23,6 millones de 2008. Del Hato ganadero total el 70% corresponde a producción de carne (19.026.750 cabezas), el 28% a producción doble propósito (7.741.010 cabezas) y el 2.16% a producción de leche (591.530 cabezas); mostrando un importante crecimiento el segmento de producción de carne que en 2008 correspondía al 53%. El Departamento del Meta posee el mayor inventario Bovino con el 10.2 % del total nacional, seguido por Antioquia 9,4%, Casanare con el 8,6% y Córdoba 8,5% ( MapfreCrediseguros Informe sector cárnico, 2010). El consumo per cápita de carne bovina para el año 2009 correspondió a 18.7 kg/ año ( Mapfre-Crediseguros Informe sector cárnico, 2010). Mientras que el consumo de carne de cerdo en Colombia llegó en el 2011 a 5,1 kilos / año. (Porcicultutra colombiana, 2012). Colombia escapa a esta dinámica y mientras en el mundo el consumo per cápita de cerdo al año es de 15 kilos, en nuestro país bordea los 5 kilogramos, de los cuales 4,5 kilos corresponden a carne procedente de animales de granjas tecnificadas. (Espectador.com, 2008) Durante los tres últimos años el sector porcìcola ha crecido positivamente, al finalizar el 2011 se evidenció un aumento de 9.8% frente al 2010. El beneficio formal de porcinos en Colombia en el año 2011 cerró con 2’743.056 cabezas sacrificadas. Fuente Asoporcicultores, (Porcicultutra colombiana, 2012) El sector porcícola ha realizado importantes esfuerzos en términos de desarrollo tecnológico, en mejoramiento genético, óptima infraestructura en granjas, formación técnica y laboral calificada, implementación del programa continuado de estatus sanitario, cumplimiento de alta bioseguridad y desarrollo nutricional en balanceados, entre otros temas, que se conjugan con la exigencia de la resolución ICA 2640 para lograr la certificación y enfocarse en darle un cambio de visión a la Porcicultura Colombiana, para convertirla en la industria de la carne de cerdo, que ofrezca un producto más magro, nutritivo, saludable, confiable y de excelente calidad (Otero, 2010). Las cifras de la Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO) son contundentes. Durante 2007 se consumieron en el mundo 283 millones de toneladas de carne, de las cuales 110,7 millones correspondieron a la de cerdo, 86,2 millones de aves y 66,6 millones al bovino, lo que convierte a la carne de cerdo como la proteína más consumida alrededor del mundo (Olaya, 2011). La producción porcina ha cambiado dramáticamente en las tres últimas décadas, de un modelo pequeño y de subsistencia a operaciones grandes alimentadas con productos concentrados. Esta tendencia hacia operaciones mayores es promovida por reducción en costos de producción y logísticas tanto para productores como para procesadores de carne (Kunz et al., 2009). Una tendencia adicional en producción de carne es la migración de operaciones de producción de países desarrollados a países en desarrollo debido a costos bajos de operación, disponibilidad de alimento, tierra, agua, a la vez que de menores políticas restrictivas en lo ambiental comparado con países Europeos o Estados Unidos.(Kunz et al., 2009). Como podemos ver tanto la producción bovina como la porcina representan dos grandes eslabones de la economía nacional y a su vez son fuentes generadoras de empleo y de alimento, convirtiéndose en importantes áreas que debemos eficientizar. 3.2.2. Porcinaza. La porcinaza se ha convertido en algunos sitios, en un gran contaminante no solo por su olor, sino por la generación de residuos orgánicos en las fuentes de agua. Por otra parte, en la industria porcina se utiliza una alta cantidad de agua para la eliminación de estos desechos, colaborando en la contaminación de dichas fuentes de agua (Porcicultores, 2006) En países como Brasil por ejemplo el almacenamiento de porcinaza líquida y posterior aplicación a la tierra es la práctica predominante de manejo de este desecho al igual que en otras partes del mundo debido a su simplicidad, bajo costo y la posible reducción de costos en la producción agrícola a través del reemplazo de fertilizantes químicos por los nutrientes fecales (Kunz et al., 2009). En algunas zonas de nuestro país, especialmente en Antioquia, acuden a modelos productivos que se identifican con un modelo de producción pecuario “ cerdos-pastos-leche”, en el que los pastos del ganado bovino son fertilizados con estiércol licuado de cerdos. (Ochoa et al., 2000) Ese uso inadecuado de porcinaza se ha identificado como un factor importante de riesgo ambiental para la transmisión de leptospirosis. Es necesario desarrollar tecnologías apropiadas para el tratamiento y manejo de las excretas porcinas mediante el diseño de tanques estercoleros de sedimentación y separación de sólidos o la utilización de biodegradantes para la generación de gas combustible. Con estos sistemas de tratamiento se puede reducir la carga orgánica y biológica contaminante (Ochoa et al., 2000). Para la elección del sistema de tratamiento de la porcinaza, la eficacia para eliminar los nuevos contaminantes emergentes (antibióticos, las moléculas de estrógeno,..), también ha de tenerse en cuenta, pero para eso, también se necesitan datos de investigación. (Bernet and Beline, 2009). El reciclaje de heces de cerdos para la alimentación animal ayuda a reducir la contaminación del medio ambiente cuasada por los sólidos y hace posible el aprovechamiento del alto contenido de nutrientes, disminuyendo los costos de alimentación. Sin embargo, algunos autores han observado que el uso de las heces sin tratamiento aumenta los riesgos a través del reciclaje de los microorganismos patógenos y otros contaminantes (Martínez-Gamba et al., 2001). La Porcinaza tratada contiene niveles sustanciales tanto de microorganismos resistentes como de antimicrobianos ; por tanto la aplicación de porcinaza a las praderas podría contribuir al riesgo para la salud pública asociado con el incremento de la prevalencia de resistencia antimicrobiana en patógenos directamente a través de la transmisión de microorganismos patógenos resistentes a antimicrobianos, e indirectamente, a través de la introducción y selección de genes de resistencia antimicobiana (Zhi et al., 2010). Los resultados de muchos estudios indican que los genes de resistencia a antibióticos se incrementan en abundancia y diversidad en la biota de cerdos que consumen alimentos medicados con antibióticos a dosis subterapéuticas. Algunos genes enriquecidos tales como: aminoglucosido O-fosfotransferasas, confieren resistancia a antibióticos que no fueron administrados en los estudios, demostrando el potencial de selección indirecta de resistencia a antibióticos no utilizados en el alimento. (Looft et al., 2012) Los huevos de parásitos presentes en la porcinaza son muy susceptibles a temperaturas superiores a 30º C y pH cercano a 4 ( Nuñez et al., 1987; Reyes, 1963). Reportados por (Estrada et al., 2011b). Nuñez et al. 1987 encontraron que a 35º c y pH próximo a 4, se inactivan casi todos los huevos de parásitos, a excepción del 78.6% de Ascaris. La persistencia de los huevos de Ascaris es explicada por estos autores por la condición especial de la cutícula de sus huevos (Gonçalves et al., 2008. ) La cryptosporidiosis es una enfermedad zoonótica de distribución mundial, frecuente en animales jóvenes, se caracteriza por ocasionar diarreas en humanos y otros mamíferos, aunque en ocasiones cursa sin manifestaciones clínicas. Se reporta con frecuencia en cerdos y bovinos, siendo las excretas el emjor medio de transmisión de esta patología. (VENTURINI LUCILA et al., 2006) A la fecha, han sido reconocidas 20 especies de Cryptosporidium. Dos han sido encontradas en peces, una en anfibios, dos en reptiles, tres en aves, y doce en mamíferos. Cerca de 61 genotipos de Cryptosporidium con un estado de especies incierto se ha encontrado basados en secuencias de SSUrRNA. El gen gp-60 mostró un alto grado de polimorfismo secuencial entre diferentes aislados de varias especies de Cryptosporidium, de esta forma varios grupos de subtipos y subgenotipos han sido identificados, de los cuales los subtipos de C. parvum IIa y IId se encontraron como zoonóticos, esta información ha sido de gran interés para efectos de Taxonomía, epidemiología, transmisión e información genético- morfológica para cada especie (Plutzer and Karanis, 2009). 3.2.3. Estrategias de mitigación d elos efectos contaminantes de la porcinaza. La biotecnología microbiana entre los años 60 y 70 se centró en la mejora de las condiciones de cultivo de microorganismos (preparación de material crudo y diseño de fermentadores) y en la purificación de productos. La aparición de la tecnología de ADN recombinante cambio la evolución biotecnológica, introduciendo diversos genes a microorganismos, capaces de realizar otras funciones mas complejas de degradación, transformación o síntesis de gran variedad de compuestos (HERNÁNDEZ, 2002). Los microorganismos son capaces de utilizar una gran variedad de compuestos orgánicos, naturales o sintéticos, como fuente de carbono y energía, lo cual implica que disponen de enzimas capaces de degradar casi cualquier sustrato y convertirse en competidores directos con los microorganismos patógenos eliminados en la materia orgánica, siempre y cuando se lleve a cabo un adecuado proceso de eliminación de los residuos orgánicos (inhibición competitiva por sustratos); tal capacidad de degradación de sustratos es comparable con la actividad del sistema inmune de fabricar anticuerpos contra cualquier antígeno nuevo generado (HERNÁNDEZ, 2002) Los desechos generados de las producciones porcinas presentan un elevado potencial contaminante si no se tratan adecuadamente, pero también pueden ser una alternativa energética importante y una fuente de alimento para otras especies, además la incorporación de la porcinaza al suelo contribuye al mejoramiento de las condiciones físico-químicas y biológicas del mismo, así como al mejoramiento de la productividad agrícola (Oliveira, 1993). Las principales fuentes potenciales de patógenos en las granjas son las relacionadas con el manejo del estiércol animal. El adecuado manejo del estiércol puede controlar directamente la carga de patógenos e indirectamente influir en la supervivencia y el transporte de patógenos del suelo a los recursos hídricos a través de la modificación del entorno microbiano (Goss and Richards, 2008.). La infiltración rápida es un proceso efectivo para la remoción de fósforo, metales pesados y aún de organismos patógenos. En instalaciones ubicadas en Phoeniz, Arizona se alcanzó remoción de virus del 99,9%, después de pasar aguas residuales a través de 30 pies ( 10m) de arena a una carga de 300 pies/año ( 100m/año). (Crites and Tehobanoglous, 2000). 3.2.4. Rutas de utilización de la porcinaza en Colombia. En la actualidad en la industria porcina se ha recurrido a diferentes rutas de utilización de la porcinaza como: 3.2.4.1. Compost. El compost es el producto del compostaje. El compostaje es la degradación microbiana de materia orgánica sólida, que involucra respiración aeróbica pasando por una etapa termófila, de la que se obtiene un producto estabilizado, no contaminante y útil, que reduce la masa, el volumen, las posibilidades de contaminación, los olores desagradables, el desarrollo de insectos, y produce la inactivación de patógenos (De Carlo et al., 2001. ). Según Komilis & Tziouvaras, 2009, el Compost se define comúnmente como materia orgánica estabilizada o madurada, un compost de alta calidad debe ser entonces maduro y estable. El compostaje es un proceso biotecnológico aeróbico, por medio del cual diferentes microorganismos degradan inicialmente la materia orgánica en estado sólido en nutrientes más simples, dióxido de carbono y agua. En una segunda etapa conocida como maduración, se forman macromoléculas orgánicas tales como ácidos húmicos produciendo un fertilizante orgánico llamado compost. (Ruggieri et al., 2009) Con el incremento de las explotaciones porcinas, la aplicación continua al suelo de las aguas residuales supone un problema ambiental, especialmente la contaminación de los efluentes hídricos con N y P, así como la contaminación con metano y el olor de las lagunas anaeróbicas. El tratamiento posterior de las aguas residuales puede ayudar a reducir este problema y el compostaje de los sólidos de la porcinaza puede ser una tecnología apropiada (Imbeah, 1998. ). El compostaje como proceso industrial para el tratamiento de los residuos sólidos orgánicos encierra un doble propósito: en primera instancia posibilita la estabilización química y biológica de los residuos, por lo que reduce considerablemente su impacto ambiental como contaminante orgánico. El segundo aspecto importante se refiere a su aplicación agronómica dado que suministra al suelo con vocación agrícola una importante reserva energética, estructura y estabilidad contribuyendo a restituir su valioso componente orgánico (CORANTIOQUIA, 2003. ). Dado que el manejo de desechos ha sido una de las grandes preocupaciones en materia ambiental en las últimas décadas, la estabilización biológica de la fracción orgánica de desechos municipales a una forma estable suficiente para aplicarla sobre el suelo, puede ser posible con tratameintos via aeróbica o anaeróbica; el compost es una de estas alternativas. (Walker et al., 2009). 3.2.4.2. Biodigestor. Un biodigestor es la aplicación tecnológica de la digestión anaeróbica. La misma consiste en una descomposición metanogénica de la materia orgánica, en ausencia de oxígeno, que involucra un grupo de diferentes tipos de microorganismos, para transformar la materia orgánica en biogás (Wilkie, 2005). El material extraído del digestor es rico en nutrientes (amoníaco, fósforo, potasio, y más de una docena de elementos traza), y es un excelente acondicionador del suelo (Tulayakul et al., 2011. ). La generación y uso de biogás como fuente de energía renovable, es una opción con garantía de rentabilidad, pues no sólo resuelve un problema ambiental al momento de reutilizar materia orgánica sino que permite a las instalaciones pecuarias un ahorro económico al volverse autosustentable en energía eléctrica y/o calorífica (Casas et al., 2009.). 3.2.4.3. Porcinaza seca El estiércol seco es estable, relativamente inodoro, y genera muy pocas moscas (Hart, 1964.). Generalmente tiene un contenido de humedad inferior al 30 por ciento (Beck, 2003. ). El estiércol con alta humedad y baja densidad no es adecuado para su uso. La densificación del estiércol seco es el mejor método para disminuir el volumen de estiércol lo que a su vez disminuye los costos de manipulación y almacenamiento (Alemi et al., 2010.). 3.2.4.4. Lombricompuesto. El lombricompuesto es un fertilizante orgánico, biorregulador y corrector del suelo cuya característica fundamental es la bioestabilidad, pues no provee lugar a la fermentación o putrefacción (López et al., 2008. ). Las lombrices se encargan de fraccionar el sustrato orgánico estimulando la actividad microbiana e incrementando las tasas de mineralización, de forma que el residuo orgánico se transforma rápidamente en un substrato humificado cuya textura y tamaño de partícula son mucho más finas que las de los compost termofílicos tradicionales (Domínguez et al., 2010.). 3.2.4.5. Estercolero (fase líquida y fase sólida). El estercolero es una construcción que se diseña para retener estiércol (Pittamiglio, 2004. ). La incorporación o inyección de la fracción líquida del estiércol al suelo disminuye las pérdidas de N, C y S en formas gaseosas. Una forma de mejorar el manejo del estiércol para evitar la pérdida de nutrientes es separar el estiércol fresco en sus fracciones sólida y líquida, e incorporar o inyectar la fracción líquida al suelo o a cualquier otro sustrato en distintos sistemas de producción (Capulín et al., 2001. ). El estiércol sólido se produce normalmente cuando las camas se combinan con el estiércol. El estiércol líquido (más del 90% de agua) se produce cuando casi no se usa cama, y donde a la orina contenida se le agrega agua (West and Turnbull, . 200?. ). 3.2.4.6. Ensilaje El ensilado es un método de conservación de forrajes. Se basa en las bacterias ácido lácticas (BAL) que bajo condiciones anaeróbicas convierten carbohidratos hidrosolubles en ácidos orgánicos, (Filya, 2003. ). El proceso ocurre en dos fases: una inicial aerobia, que ocurre hasta el agotamiento del oxígeno o los carbohidratos solubles presentes en el sustrato, los cuales son convertidos en agua, dióxido de carbono y calor, esta fase es de corta duración. La segunda fase es anaerobia, y en ella los monosacáridos presentes son transformados en etanol, dióxido de carbono, ácido acético y láctico (Garcés et al., 2004.). Al generarse estos ácidos el pH del material ensilado baja a un nivel que inhibe la presencia de microorganismos que inducen la putrefacción (Garcés et al., 2006.). (Silveira and Franco, 2006. ). La porcinaza se ha empleado como fuente de proteína y de minerales en la producción de ensilajes (Campabadal, 2003.), mezclada con plantas forrajeras, como la caña de azúcar (Saccharum officinarum), pobres en estos nutrientes, pero rica en carbohidratos de fácil fermentación (De Lima et al., 2010.) El proceso de ensilaje no mejora la calidad del forraje, solo conserva su valor nutricional como los componentes energéticos y proteícos mediante procesos de fermentación manteniéndolo estable por mucho tiempo (Franco et al., 2005. ). El ensilaje tiene como ventajas el incremento en la aceptabilidad de los animales, baja pérdida de nutrientes, se adapta a muchos sistemas de alimentación existentes, permite el almacenamiento, control de patógenos, es desodorizante, utiliza la fracción solida y líquida del estiércol (Arndt et al., 1979.). FEDEGAN (2006) propone mejorar la carga animal por área, sin perder producción, por ello se han propuesto alternativas de suplementación para la alimentación de rumiantes, encontrando el ensilaje como una de las mejores alternativas. Así lo demuestra Estrada, 2011 en su tesis doctoral quien de manera amplia y profunda, aborda el tema del ensilaje en alimentación de Bovinos, aclarando dudas acerca de la calidad nutricional y sanitaria de las materias primas utilizadas y de los productos obtenidos en el proceso de fermentación; y quien además evaluó el efecto de esta estrategia de alimentación con relación a la generación de metano. 3.3. Objetivos General. Establecer la persistencia de virus, bacterias, mohos, levaduras, y parásitos, en las diferentes formas de utilización de la porcinaza en Colombia, mediante técnicas diagnósticas avanzadas. Específicos. Establecer la presencia en porcinaza fresca y la persistencia en la sdiferentes formas de utilización de la porcinaza en biofertilización y alimentación animal de Parvovirus porcino (PVP), Circovirus porcino tipo I (PCV-I), Circovirus porcino tipo II (PCV –II), Virus del Síndrome Respiratorio Reproductivo Porcino (PRRS), Norovirus porcino ( No -P), Rotavirus porcino, Herpesvirus porcino tipo I o virus de la enfermedad de Aujesky (HP-1). Establecer la presencia en porcinaza fresca y la persistencia en la sdiferentes formas de utilización de la porcinaza en biofertilización y alimentación animal de Salmonella sp., Clostridium sulfito reductor, Staphylococcus tipo coagulasa positivo, Escherichia coli, Clostridium perfringes, Leptospira spp, Brachyspira pilisicoli, Actinobacillus sp. Brucella sp., Listeria monocytogenes, Lawsonia intracelularis, Campylobacter sp., Aspergillus spp., Pasteurella sp., y Candida spp.. Establecer la presencia en porcinaza fresca y la persistencia en las diferentes formas de utilización de la porcinaza en biofertilización y alimentación animal de Trichostrongylus axei, Ascaris suum, Oesophagostomum sp., Hyostrongylus rubidus, Cryptosporidium parvum, Trichuris suis, Balantidium coli, Metastróngylus spp. Giardia intestinalis. 3.4. Metodología propuesta Se realizará un estudio de tipo descriptivo que consta de los siguientes pasos: 3.4.1. Colección de la porcinaza fresca. Para la colección de porcinaza fresca se seleccionarán tres granjas: Una ubicada en el Valle del Cauca de 10.000 animales; una de 2000 animales en el Departamento de Caldas; y una de 300 animales en el Departamento de Risaralda. Las tres granjas deben contar con biodigestor, estercolero, y condiciones adecuadas para el montaje de las demás rutas de utilización. 3.4.2. Montaje de las diferentes formas de utilización de la porcinaza. Con la porcinaza fresca de cada una de las tres fincas seleccionadas se hará el montaje de todas las formas de utilización, a partir de los días 0 y 30 del estudio. 3.4.2.1. Compost: Se procesará una muestra de 1000 kilos con 70% de humedad, preparada de la siguiente manera: 450 Kg de Porcinaza fresca ( de aprox. 80% de humedad), 408 Kg de una gramínea deshidratada ( con aprox. 50% de humedad), 6 Kg de Carbonato de calcio, y 136 litros de agua. La mezcla anterior se mantendrá apilada por 60 días con volteos semanales para asegurar una adecuada oxigenación. Se realizarán muestreos a los 45 y 60 días para el diagnóstico de patógenos. 3.4.2.2. Biodigestor. Se cargará con 5000 litros; de los cuales 1250 Kg corresponderá a porcinaza fresca. Se mantendrá por 30 días o según el cálculo de Tiempo de Retención Hidráulica ( TRH) y se llevará a cabo el muestreo según el TRH. 3.4.2.3. Porcinaza seca. Se extenderán 150 Kg en una marquesina y se expondrán a los rayos del sol durante 5 días. Se hará un muestreo aproximadamente al quinto día (cuando alcance el 24% de Humedad). 3.4.2.4. Lombricultivo. Se utilizarán 50 Kg de porcinaza, y 1 Kilo de Lombriz Roja Californiana (Eisenia foetida) en un lecho de concreto por 90 días. Se realizará un muestreo al término de los mismos, de lombricompuesto y de lombriz cultivada ( Para elaboración de harina de lombriz) 3.4.2.5. Estercolero (fase líquida y fase sólida). Se usará una mezcla de 500 litros compuesta de 150 Kg de porcinaza fresca y 350 litros de agua, almacenada por 3 días. Se hará un muestreo tanto de la fase líquida como de la fase sólida, al tercer día. 3.4.2.6. Ensilaje. Se utilizarán 3 microsilos en PVC cada uno con una capacidad de 2,5 Kg, cargados con Caña de azucar molida integral adicionada de 40% de porcinaza fresca (Estrada et al., 2011). Se llevará a cabo un muestreo a los 15 días. 3.4.3. Diagnóstico de patógenos. Los días 0 y 30 en porcinaza fresca, y en las fechas de muestreo indicadas anteriormente en cada una de las rutas de utilización de la porcinaza, se aplicarán las técnicas de diagnóstico descritas a continuación: 3.4.3.1. Diagnóstico viral. 3.4.3.1.1 Para el diagnóstico de: Parvovirus porcino (PVP), Circovirus porcino tipo I ( PCV – I), Circovirus porcino tipo II ( PCV-II), Rotavirus porcino (RV), Herpesvirus tipo I (HV-I) o virus de la enfermedad de Aujesky, Norovirus porcino ( NoP), se usará la técnica de PCR ( Polymerase chain reaction) convencional, cuyo fundamento es la amplificación de un material genético (ADN) que se encuentra en poca cantidad en la muestra; mediante un termociclador y ciclos consecutivos de desnaturalización del ADN, hibridación de cebadores con el gen diana y la extensión de la nueva molécula creada. (Jiménez et al., 2006). La repetición de los ciclos decenas de veces, duplica cada vez el fragmento de ADN en forma exponencial. Así se logra copiar millones de veces la secuencia de interés, aunque se encuentre entre millones de otras secuencias de ADN. (Rodríguez and Barrera., 2004). 3.4.3.1.2. Para el caso del virus del Sindrome Respiratorio Reproductivo Porcino (PRRS). Se recurrirá a la RT-PCR Anidada ( Nested RT-PCR), la cual consta de dos reacciones de PCR secuenciales, utilizando como templado para la segunda reacción, el producto obtenido de la primera PCR. Christopher – Hennings y Nelson, 1995). 3.4.3.2. Diagnóstico de bacterias mohos y levaduras. 3.4.3.2.1. Para el caso específico de Leptospira spp. Se sembrará un fragmento de la muestra diluida (1:10) en agar EMJH al cual se le agregará 10% de medio de enriqueciemiento, se incubará a 27°C durante 7 a 15 días y se revisará diariamente para observará si hay o no crecimiento en la superficie del medio, de Leptospira spp. La colonia que crezca será visualizada en microscopio de campo oscuro. 3.4.3.2.2. El recuento de mohos y levaduras se hará en agar rosa de bengala adicionado de cloranfenicol, por el método de Marshall (1993). El Agar Rosa de Bengala adicionado con Cloranfenicol se recomienda en los métodos estándar para el aislamiento selectivo y enumeración de levaduras y mohos de los alimentos y el agua (Marshall, 1993.). El agar se desvía del medio acidificado habitual al presentar un pH neutro, el cual con la adición de un agente selectivo tiene éxito en apoyar el crecimiento de hongos y restringir el crecimiento bacteriano. El cloranfenicol se recomienda como el agente selectivo, debido a su estabilidad al calor y amplio espectro antibacteriano (Mislivec et al., 1992. ). 3.4.3.2.3. El Recuento de Coliformes totales y fecales se efectuará en caldo Fluorocult® LMX-Broth, por el método de Ossmer (Ossmer, 1993. ) y Manafi (Manafi, 1996. ), se utilizará el índice del número más probable por gramo de materia seca (NMP/g MS) con un límite de confiabilidad del 99%, (Moreno et al., 2009; Andino y Castillo, 2010). 3.4.3.2.4. El Recuento de gérmenes del género Staphylococcus de tipo coagulasa positivo se efectuará por el método de Baird- Parker (Baird-Parker, 1962); y el método de Vajda. El Agar Baird-Parker es un medio selectivo para el aislamiento e identificación presuntiva de Staphylococcus coagulasa positivos. Este medio se utiliza ampliamente para la detección de Staphylococcus aureus ambientales y clínicas. en alimentos, muestras La selectividad del medio es debido al cloruro de litio y una solución de telurito de potasio, las cuales suprimen el crecimiento de otros organismos distintos de los estafilococos. Los Staphylococcus coagulasa positivos producen colonias de color de gris oscuro a negro debido su capacidad de reducir el telurito a telurio; otros estafilococos que contienen lecitinasa rompen la yema de huevo y crean zonas claras alrededor de las colonias. Una zona opaca de precipitado se puede formar debido a la actividad de la lipasa (Baird-Parker, 1962). 3.4.3.2.5. Para el Recuento genero Salmonella se usará de gérmenes del agar Rambach® sembrado por agotamiento (Ossmer, 1992; Ramback, 1990). El Agar Rambach® es un medio de diagnóstico diferencial para la identificación de las especies de Salmonella en los alimentos y muestras clínicas. Los sustratos nutritivos facilitan la rápida multiplicación de enterobacteriaceas, mientras el desoxicolato de sodio inhibe las bacterias Gram-positivas. Este Agar permite a las especies de Salmonella que se diferencian de forma inequívoca de otras bacterias al formar ácidos del propilenglicol, de modo que, en combinación con un indicador de pH, las colonias toman un color rojo característico. Con el fin de diferenciar coliformes de Salmonella, el medio contiene un cromógeno que indica la presencia de la actividad βgalactosidasa, una característica de coliformes, por lo que las colonias de coliformes toman color azul-verde o azulvioleta. Otras enterobacteriaceas y Gram-negativas, tales como Proteus, Pseudomonas, Shigella, S. typhi y S. paratyphi crecen como colonias incoloras-amarillentas (Ossmer, 1992; Rambach, 1990). 3.4.3.2.6. El Recuento de gérmenes del género Clostridium, de tipo sulfito reductores se realizará por el método de Pascual y Calderón (Pascual et al., 2000.) (ISO 6888 construida por De Buyser (2003); La detección de Clostridium sulfito-reductores, así como su recuento se puede lograr investigando la presencia de formas vegetativas y esporuladas conjuntamente, o exclusivamente las esporuladas. La detección se logra utilizando medios de cultivo en cuya fórmula interviene el sulfito de sodio en los que, por la capacidad de estos microorganismos para reducir la sustancia, se produce sulfuro de hierro al actuar sobre el compuesto de hierro. La presencia de sulfuro de hierro se pone de manifiesto por la aparición del color negro de las colonias. El cultivo de los Clostridium exige una atmósfera exenta de oxígeno (Pascual et al., 2000.). 3.4.3.2.7. Para Listeria monocytogenes se requieren medios como Agar Sangre, Agar tripteina Soya y caldo nutritivo. (con 5 % de sangre ovina para prueba de CAMP). 3.4.3.2.8. Para el género Pasteurella, se empleará cultivo en Agar sangre. 3.4.3.2.9. Para Actinobacillus sp. y Lawsonia intracelularis se empleará PCR convencional. 3.4.3.3. Diagnóstico parasitológico. Se realizará recuento y clasificación de huevos u ooquistes y se expresará el resultado en HPG (huevos por gramo de materia fecal). 3.4.3.3.1. Para Ascaris suum, Trichuris suis, Strongyloides sp., Trichostrongylus sp., Giardia intestinalis, Macracanthorrynchus hirudinaceus; la técnica a emplear será el recuento de huevos en cámara de Mc Máster, por flotación en solución salina saturada (Vélez, 1995); las muestras se analizarán inmediatamente después de su toma. La cámara Mc Master sirve para el conteo de huevos gastrointestinales, y está particularmente diseñada para la estimación cuantitativa del número de huevos de parásitos por gramo de heces. En la cámara se lee una centésima parte por gramo de excremento, es por esto que para obtener el número de huevos por gramo se tiene que usar un factor de corrección de 100 para cada cuadrícula observada. Un resultado negativo no indica que no estén presentes los parásitos. Existen modificaciones de la técnica de McMaster utilizando diferentes soluciones como: la solución saturada de sulfato de zinc y la solución saturada de sal común (NaCl) (Rodríguez et al., 1994). 3.4.3.3.2. Para Cryptosporidium spp. se usará el Método de Ziehl-Neelsen (modificado para observación de coccidias: Cryptosporidium y modificada es la otros). La coloración tinción Ziehl-Neelsen recomendada para la identificación de ooquistes de Cryptosporidium spp. (Henriksen and Pohlenz, 1981), utilizando las cualidades tintoriales de semiácido resistencia de los ooquistes (Salvatella and Eirale, 1996. ). La coloración Ziehl-Neelsen es una coloración diferencial, en la cual un grupo de bacterias son difícilmente coloreables, pero una vez teñidas retienen tan fuertemente el colorante que la acción de los decolorantes es prácticamente nula. La técnica consiste en someter la preparación a la tinción con fuscina fenificada con calentamientos y enfriamientos que garanticen la entrada del colorante al interior de la célula. Luego se decolora con alcohol-ácido; finalmente se añade un colorante de contraste como el azul de metileno. Las bacterias ácido-alcohol resistentes quedan coloreadas de fucsia, mientras que las ácido-alcohol sensibles se tiñen de acuerdo a la contratinción (Palomino, 1995). 3.5. Resultados esperados Se generará información que permitirá disipar dudas en torno a la inocuidad de la porcinaza en cualquiera de las formas de utilización como fuente de alimentación directa para los animales o como bioferilizante. Obtener resultados negativos en las diferentes pruebas diagnósticas a realizar frente a los agentes virales, bacterianos, mohos, levaduras y parasitarios en estudio en las diferentes rutas de utilización de la porcinaza. 3.6. Impactos esperados a partir del uso de los resultados A partir de los resultados obtenidos se espera que se de la tranquilidad en la utilización desde el punto de vista sanitario de porcinaza en las diferentes rutas para alimentación de bovinos y como biofertilizante, y que logre demostrar con todo el soporte científico la inocuidad de este tipo de elementos para que la autoridad local replantee la legislación actual y permita el uso de porcinaza como alternativa de alimentación en el ganado bovino. De esta manera se abaratarían los costos de producción de una importante fuente de alimentación para una población humana que cada día crece más, como lo es la carne bovina. Al utilizar un subproducto de la industria agropecuaria evitamos competencia directa con la producción de alimentos de mayor calidad nutricional y que deberían ser utilizados para la alimentación humana como el trigo, maíz y soya. 3.7. Cronograma de actividades: 4. Presupuesto: Investigadores: $ 25.845.960. Pruebas laboratorio: $ 86.500.000. Gastos de Viajes: $ 10.700.000. Equipos: $ 30.000.000. Valor total del proyecto 5. $ 153.045.960. BIBLIOGRAFÍA Alemi, H., M. H. Kianmehr, and A. M. Borghaee. 2010. Effect of pellet processing of fertilizer on slow-relase nitrogen in soil. Asian Journal of Plant Sciences. 9: 74-80. ÁLVAREZ, S., and E. GUTIÉRREZ. 2001. Engorda de toretes a base de estiércol fresco de cerdo y dos fuentes de fibra en una empresa comercial. . Livestock Research for Rural Development. 13: 4. ANDINO, F., and Y. CASTILLO. 2010. Métodos de detección de contaminación microbiana Microbiología de los alimentos: Un enfoque práctico para la inocuidad alimentaria. . p 46-59. Aquiahuatl, R. M., and C. M. Pérez. 2004. Manual de prácticas de laboratorio de microbiología general. Primera edición. . In: M. Universidad Autónoma Metropolitana (ed.) No. 37. . Arndt, D. L., D. L. Day, and H. E.E. 1979. Processing and Handling of Animal Excreta for Refeeding. . ournal of Animal Science. 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