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XX Congreso Nacional de Ingeniería Bioquímica IX Congreso Internacional de Ingeniería Bioquímica XIV Jornadas Científicas de Biomedicina y Biotecnología Molecular Veracruz, México 16-18, Marzo 2016 Clave:BMS274ROD20160119. ANÁLISISDELGENHLYPARALADETECCIÓNRÁPIDADELISTERIA MONOCYTOGENES ContrerasMarínLuisIván,RuilobadeLeónSandra,GonzálezLugo Graciela,EspinozaMelladoMa.delRosarioyRodasSuárezOscarR. DIRECCIÓNDELOSAUTORES DepartamentodeMicrobiología.EscuelaNacionaldeCienciasBiológicas,IPN.Prolde CapioyPlandeAyalas/n.Col.CascodeSto.TomásMéxicoD.F.,CP11340 CORREOELECTRÓNICO rodas07@gmail.com INTRODUCCIÓN ambiental, que normalmente sirve para Listeriaesunabacteriaqueseencuentra limitar el crecimiento de bacterias, tales en el ambiente como microorganismo como saprófito, pero es capaz de hacer una fluctuaciones transición a patógeno inmediatamente temperatura(Freitagetal,2009). después de su ingestión por humanos o Una serie de factores de virulencia son animales susceptibles (Freitag et al, producidos por L. monocytogenes para 2009). facilitar el proceso invasivo (Portnoy et Listeriamonocytogeneseslaespecietipo al, 1992; Freitag et al, 2009). Seis de los de entre las ocho especies que factoresdevirulenciaresponsablesdela conformanelgéneroListeria.Lasotras invasión celular de L. monocytogenes especies son L. ivanovii, L. innocua, L. (prfA, plcA, hly, mpl, acta y plcB) están seeligeri, L. welshimeri y L. grayi. Las organizadosenunaisladepatogenicidad especies del género Listeria están de9Kbconocidacomogrupodegenesde ampliamentedistribuidasenelambiente. virulencia Han sido aisladas a partir de suelo, denominada como isla de patogenicidad materia vegetal en descomposición, 1 de Listeria (LIPI-1)(Fig.1)(Vázquez- forraje, aguas negras, agua potable, Bolandetal,2001). iones metálicos, en PrfA el pH sal, y las baja dependiente, isla ensilados, aves de corral, carne fresca y procesada, rastros y portadores asintomáticos animales y humanos (Fenlon, 1999). Se le ha dado particular atención a la capacidad de L. Figura 1. Organización transcripcional y física del grupo de genes de virulencia LIPI-1 de Listeriamonocytogenes.Encolorrojoseaprecia monocytogenes para sobrevivir en las el monocistrón hly; en verde el operón plantas de procesamiento de alimentos, Lecitinasa y en azul el operon prfA-plcA. en las que puede soportar el estrés ModificadodeVázquez-Bolandetal(2001). Mar del Norte No. 5, Col. San Álvaro Azcapotzalco C. P. 02090, México, D. F. Tel. y Fax: 5623 3088 email: colegioibq@hotmail.com, colegioibq@yahoo.com.mx Tabla1.Coleccióndecepasempleadasenel presenteestudio OBJETIVOS AmplificarelgenhlyencepasdeListeria monocytogenes Estandarizarlascondicionesde amplificacióndelgenhly Validarlabúsquedaelgenhlycomo métododeidentificacióndeListeria monocytogenes MATERIALESYMÉTODOS Seestudiaronuntotalde59cepasdeL. monocytogenes, entre las cuales se incluyen aislamientos clínicos, Origen Procedencia Hortalizas Aguade riego Lácteos Cárnicos Jugode naranja Verduras congeladas Casos clínicos Casoclínico Cepade referencia Sonora Sonora Númerode cepas 10 1 DF DF DF 8 4 11 DF 7 Aguascalientes 14 DF ATCC 1 2 de alimentos y agua de riego (Tabla 1). ObtencióndeDNAcromosómico. También se incluyeron en el estudio dos Extracción de DNA cromosómico por testigos:L.monocytogenesATCC19114y medio del Kit PROMEGA. (Schagat et al, 19115asicomocepasdeenerobacterias, 2013): cocos Gram positivos, L. innocua y L. Iniciadoresparaelgenehly. seligeri. Las 57 cepas se sembraron en Los iniciadores probados para la agar Oxford (Difco) para comprobar su amplificación del gen hly de L. pureza y morfología microscópica. A las monocytogenes colonias de dudoso aspecto se les continuación: realizaronlaspruebasdeRojodeMetilo ForwardTGCAAGTCCTAAGACGCCA – Vogues Proskauer, hidrólisis de la Reverse esculinaycatalasa. CACTGCCATCTCCCGTGGTATACTAA y se enlistan a Mar del Norte No. 5, Col. San Álvaro Azcapotzalco C. P. 02090, México, D. F. Tel. y Fax: 5623 3088 email: colegioibq@hotmail.com, colegioibq@yahoo.com.mx Reacción en cadena de la polimerasa las PCR’s se muestran a continuación (PCR) (Tabla 6) Paraelgenhlyseasignaronlassiguientes condicionesyseenlistanacontinuación (Tabla5): Tabla5.CondicionesdelaPCRparalaamplificación delgenhlydelaisladepatogenicidadLIPI–1. Etapa Desnaturalización inicial Temperatura/ tiempo 94°C /5min Desnaturalización 94°C/1min Alineamiento 61.5°C/1min Extensión 72°C/1min Extensiónfinal 72°C/5min Ciclos 1 40 Figura 10. Amplificación del gen hly (117 pb). Carril 1, L. monocytogenes ATCC 19114; carril 2 – 4, cepas: L. monocytogenes aislada de caso clínicos.; carril 5 L seeligeri (control negativo) L.monocytogenes No.De cepas 59 Presenciadel genhly Positivo RESULTADOS Listeriainnocua 1 Negativo Se observó que el método ensayado Listeriaseligeri 1 Negativo Wizard Genomic DNA Purification Kit Escherichiacoli 1 Negativo (PROMEGA TM050), ofreció un buen Salmonellatyphi 1 Negativo Pseudomonas aeruginosa 2 Negativo Sthaphylococcus aureus Streptococcus pneumoniae Streptococcus agalactae BacillussubtilisATCC 6633 1 Negativo 1 Negativo 1 Negativo 1 Negativo 1 rendimiento y pureza. Se evaluaron un total de 59 cepas de L. monocytogenes aisladas de diferentes orígenes y dos cepas de referencia (L. monocytogenes ATCC19114 y 19115) como control positivo y diversas cepas como Cepa control negativo. Los resultados de Mar del Norte No. 5, Col. San Álvaro Azcapotzalco C. P. 02090, México, D. F. Tel. y Fax: 5623 3088 email: colegioibq@hotmail.com, colegioibq@yahoo.com.mx DISCUSIÓN dentrodelacélulaeucariota,talescomo Enel100porcientodelascepasselogró la Listeriolisina S (Shen et al. 2013), amplificar el gen que codifica para una resistencia a antibióticos, internalinas, hemolisina factores antioxidantes (Campbell. 1993; formadora de poros dependiente de colesterol (Schnupf y Croizeetal.1993). Portnoy,2007),cuyafunciónesfavorecer La detección de L. monocytogenes a el proceso de la ruptura del fagosoma opartir de muestras de alimentos o primario,conlaayudadePlcAyPlcB. clínicas es difícil debido a que la biota La Listeriosis en la actualidad puede ser acompañante puede enmascarar el el resultado de complejas interacciones desarrollo del micoorganismo lo cual entre diversos factores que son refrejo puededarresultadosfalsosnegativos.En de los cambios sufridos en el estilo de el presente estudio se desarrolló una vida de los países en transición, como técnica cualitativa de PCR punto final, México. A raíz de que cada día aumenta teniendo una reproducibilida del 100% elconsumodealimentoscongeladosy/o en procesadosenMéxicoyqueloscasosde fenotípicamente Listeriosis en México han aumentado togenes, sustancialmente, aún no existe un inespecíficas con las otras cepas del registro de la incidencia, prevalencia y género Listeria estudiadas del mismo morbi-mortandadparaestaenfermedad. modonoseamplificóconotrasbacterias Debido a esto, las cepas clínicas son un Gram positivas que filogenéticamente caso particular, ya que todas fueron están aisladaspostmotemenneonatos.Laisla concuerda con lo publicado por Barbau- de patogenicidad LIPI-1 es un factor Piednoir et al 2012. Este médodo de importanteparaListeriaperonoelúnico detección puede ser una herramienta que puede favorecer la multiplicación alternativa en la detección rápida de L. las sin cepas como tener relacionadas, identificadas L. monocy- amplificaciones este estudio Mar del Norte No. 5, Col. San Álvaro Azcapotzalco C. P. 02090, México, D. F. Tel. y Fax: 5623 3088 email: colegioibq@hotmail.com, colegioibq@yahoo.com.mx monocytogenes de casos clínicos así H.Marth,ListeriaListeriosisandFoodSafety (2da ed. Págs 30 – 40). New York, N. Y: MarcelDekker,Inc. como en el control de calidad en la industriaalimentaria. 5. Freitag, N., Port, G., & Miner, M. (2009). Listeriamonocytogenes-fromsaprophyteto intracellular pathogen. Natural Reviews of Microbiology,7,623. 6. Portnoy DA, Chakraborty T, Goebel W, CossartP.(1992). Moleculardeterminantsof Listeria monocytogenes pathogenesis. InfectionandImmunity,60,1263-7. 7. Schagat,T.,Wieczorek,D.,Helt,C.,Smith, CONCLUSIONES Seampificóelgenhlyexclusvamenteen cepasdeL.monocytogenes. Seobtuvounamplicónde117pb Larepoducibilidaddelmétdofuedel 100% D.,White,D.yVincent,E.(2013).Comparing REFERENCIASBIBLIOGRÁFICAS ManualandAutomatedGenomicDNA 1. PurificationMethodsforGenotypingArrays. 2. 3. 4. Barbau-Piednoir,E.,Botteldoom,N.,Yde,M., Mahillo,J.,&Rossens,N.2012.Development and validation of qualitative SYBR®Green Real Time PCR for detection and discrimination of Listeria spp and Listeria monocytogenes. Appl. Microbiol. Biotech. 97(9):4021-4037. PromegaCorporation 8. Shen,J.,Rump,L.,Zhang,Y.,Chen,Y.,Wang, X. & Meng, J. (2013). Molecular subtyping and virulence gene analysis of Listeria monocytogenes isolates from food. Food Campbell, PA. (1993). Macrophage-Listeria interactions. En B. S. Zwilling and T. K. Eisenstein (ed.), Macrophage-pathogen interactions. Marcel Dekker Inc., New York, N.Y. 9. Croize, J., Arvieux, J., Berche, P. and Colomb M. G. (1993). Activation of the human complement alternative pathway by Listeria monocytogenes: evidence for direct binding and proteolysis of the C3 component on bacteria. Infection and Immunity. 61:5134– 5139. 10. Vázquez-Boland, J., Kuhn, M., Berche, P., Chakraborty, T., Domínguez-Bernal, G., Goebel,W.(2001).Listeriapathogenesisand molecular virulence determinants. Clinical MicrobiologyReviews,14,584-640. Microbiology,35,58-64. Schnupf, P. y Portnoy, D. A. (2007). Listeriolysin O: A phagosome-specific lysin.. MicrobesandInfection.9:1176-1187. Fenlon, D.R. (1999). Listeria monocytogenes inthenaturalenvironment.EnE.T.RyseryE. Mar del Norte No. 5, Col. San Álvaro Azcapotzalco C. P. 02090, México, D. F. Tel. y Fax: 5623 3088 email: colegioibq@hotmail.com, colegioibq@yahoo.com.mx